Содержание

эвглена зелёная относится к типу:1.инфузории.2.саркодовые.3.споровики.

Задание 1 Выберите один правильный ответ из предложенных. 1 Растения зелёные, так как в клетках содержат: а. белок в. хлорофилл б. крахмал г. воду 2 И … сторически сложившуюся совокупность всех растений называют: а. царством в. растительностью б. флорой г. видом. 3 Какое растение относится к цветковым? а. вишня в. сосна б. морская капуста г. плаун. 4 Пигмент зелёного цвета – хлорофилл находится в: а) ядре; в) хлоропластах; б) цитоплазме; г) вакуолях. 5 Растения, не имеющие органов, называются а. высшими в. споровыми б. низшими г. семенными. 6 Какое растение размножается спорами? а. мох в. рис б. лиственница г. кукуруза. 7 Какой процесс протекает в зелёных листьях растений? а. размножение в. развитие б. фотосинтез г. рост. 8 Какое растение имеет корень? а. водоросль б. мох в. сосна 9 Что входит в состав побега? а) стебель, лист, почка в) стебель, цветок б) корень, стебель г) корень, лист, почка

Перед вами на люстрації паразит П’явка медична визначте систематичну належність до форми паразитизму цієї тварини за ступенем адаптації до паразитично … го способу життя просторовими відносинами взаєминами в часі. назвіть основні дотації до паразитизму

Помогите!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!

как учёные борятся с терновыми венцами?​

Лейкоциттер туралы кызыкты малимет​

Прочитайте текст «Транспорт веществ и выделение у круглых червей» и вставьте пропущенные слова.Транспорт веществ у круглых червей происходит от клетки … к клетке с помощью………..,заполняющей полость тела. Вытянутое тело небольшого размера позволяет легко передавать питательные вещества от………… к другим клеткам.Функцию выделения в теле круглых червей выполняет………….железа, сходная с пламенными клетками…………..червей.​

Кремнеземовий панцир характерний дляА:евглениБ:хламідомонадиВ:навікулиГ:хлорели​

Укажите клитыны Гобок у яких э джгутик​

Сталу форму тіла евглени зеленої забезпечує?​

Надлишок води з організму евглени зеленої виводить?Допоможіть​

тип саркожгутиконосцы. Класс саркодовые задание


ЗАНЯТИЕ 2-3. ПОДЦАРСТВО ПРОСТЕЙШИЕ
ТЕМА: ТИП САРКОЖГУТИКОНОСЦЫ. КЛАСС САРКОДОВЫЕ
Задание 1. Рассмотрите рисунок и ответьте на вопросы

  1. Что обозначено на рисунке цифрами 1-7?

  2. Какие органоиды отвечают за движение амебы?

  3. Какой органоид ответственен за пищеварение?

  4. Какой органоид выполняет функцию выделения из клетки воды с растворенными в ней вредными веществами?

  5. К какому типу и классу относится амеба?

Задание 2. Вставьте пропущенные слова

Класс Саркодовые


  1. Амеба обыкновенная относится к типу…., классу …...

  2. Размеры амебы обыкновенной
    ….


  3. Передвигается амеба с помощью ….

  4. Дышит амеба растворенным в воде кислородом, который про­никает в ее цитоплазму через ….

  5. Избыток воды выводится из тела амебы с помощью ….

  6. В неблагоприятных условиях амеба образует ….

  7. Размножение у амебы ….

  8. Свойство всех живых организмов отвечать на действия раздражителей — света, тепла, химических веществ — называется ….

  9. Осадочные породы образованы раковинками ….

  10. Дизентерийная амеба паразитирует в ….

ТЕМА: КЛАСС ЖГУТИКОНОСЦЫ
Задание 3. Рассмотрите рисунок и ответьте на вопросы


  1. Что обозначено на рисунке цифрами 1-7?

  2. С помощью какого органоида эвглена зеленая способна передвигаться?

  3. Какими двумя способами питается эвглена?

  4. С помощью какого органоида эвглена определяет освещенность?

  5. К какому типу и классу относится эвглена?

Задание 4. Укажите верные варианты ответов

Выберите признаки, характерные для амебы (a) и эвглены зеле­ной (б).



    1. Тело покрыто плотной клеточной оболочкой, позволяющей со­хранить постоянную форму тела.

    2. Форма тела непостоянная.

    3. Передвигается при помощи ложноножек.

    4. Передвигается при помощи жгутиков.

    5. На свету питается автотрофно, за счет фотосинтеза.

    6. Характерно только гетеротрофное питание.

    7. Есть сократительная вакуоль.

    8. Сократительных вакуолей нет.

    9. Имеет клеточный рот и клеточную глотку.

    10. Переваривание пищи происходит в пищеварительных вакуолях.

    11. Имеет хлоропласты.

    12. Имеет светочувствительный глазок.

Задание5. Рассмотрите рисунок и ответьте на вопросы


  1. Что обозначено на рисунке цифрами?

  1. С помощью каких органоидов движется инфузория туфелька?

  2. Через какой органоид инфузория туфелька поглощает питательные вещества?

  3. Через какой органоид инфузория туфелька выводит непереваренные вещества?

  4. Сколько сократительных вакуолей у инфузории туфельки?

  5. Сколько ядер у инфузории туфельки?

  6. К какому типу одноклеточных животных относится инфузория туфелька?

Задание 6. Укажите верные варианты ответов

Эвглена зеленая, инфузория туфелька

Выберите признаки, характерные для эвглены зеленой (а) и ин­фузории туфельки (б).



  1. Тело покрыто плотной клеточной оболочкой, позволяющей со­хранить постоянную форму тела.

  2. Форма тела непостоянная.

  3. Передвигается при помощи ложноножек.

  4. Имеет около 20 хлоропластов.

  5. Имеет стигму.

  6. Имеет трихоцисты.

  7. Передвигается при помощи многочисленных ресничек.

  8. Передвигается при помощи жгутиков.

  9. Питается готовыми органическими веществами и (или) с по­мощью фотосинтез.

  10. Способна питаться только готовыми органическими веще­ствами.

  11. Органоиды, отвечающие за выведение вредных веществ и воды, — две сократительные вакуоли.

  12. В цитоплазме одно ядро.

  13. В цитоплазме два ядра.

  14. Имеет хлоропласты и светочувствительный глазок.

  15. Непереваренные остатки выводит через порошицу.

Задание 7. Верны ли данные утверждения

(да, нет)?

Инфузория туфелька


  1. Большое ядро инфузории участвует в половом процессе.

  2. Малое ядро инфузории отвечает за обмен веществ: питание, дыхание, выделение.

  3. Инфузория туфелька способна к автотрофному и гетеротроф­ному питанию.

  4. Передвижение инфузории происходит за счет ресничек.

  5. Трихоцисты — это стрекательные клетки инфузории.

  6. Дыхание инфузории осуществляется всей поверхностью тела.

  7. Инфузория имеет светочувствительный глазок — стигму.

  8. Выделение у инфузории осуществляется с помощью двух сократительных вакуолей.

  9. Размножение инфузории происходит за счет продольного деления пополам.

  10. При половом процессе происходит увеличение числа инфузорий.

Достарыңызбен бөлісу:

Проверочная работа по теме «Подцарство Простейшие»

Проверочная работа по теме «Подцарство Простейшие»

 

Цель: проверить усвоение учебного материала и уровень знаний и умений обучающихся по теме «Подцарство Простейшие» (глава 3).

Данная работа составлена в двух вариантах к учебнику В.М. Константинова, В.Г. Бабенко, В.С. Кучменко «Биология. 7 класс». Имеются модельные ответы и критерии для оценивания ответа.

Проверочная работа может быть использована:

— на уроке биологии для текущего контроля знаний и умений обучающихся в 7 классе;

— при подготовке к ОГЭ по биологии.

 

Источник:

•        Учебник В.М. Константинова, В.Г. Бабенко, В.С. Кучменко «Биология. 7 класс», Москва, «Вентана-Граф», 2019, стр. 31-46.

 

Автор: Бобырь Елена Владимировна, учитель биологии и химии.

 

Проверочная работа по теме «Подцарство Простейшие»

1 вариант

 

Задание 1. Выберите один верный ответ из четырех возможных.

 

1. К автогетеротрофному питанию способна:

А) инфузория-туфелька     

Б) амеба обыкновенная      

В) эвглена зеленая     

Г) радиолярия

 

2. Передвигается при помощи ложноножек:

А) вольвокс       

Б) амеба обыкновенная        

В) инфузория-сувойка      

Г) эвглена зеленая

 

3. К типу Эвгленовые не относится:

А) гониум           

Б) вольвокс           

В) бодо           

Г) фораминифера

 

4. Два ядра имеет в клетке:

А) инфузория-туфелька     

Б) амеба обыкновенная      

В) эвглена зеленая     

Г) вольвокс

 

5. Вредные вещества и избыток воды выделяются из организмы амебы через

А) порошицу    

Б) поверхность тела     

В) сократительную вакуоль       

Г) пищеварительную вакуоль

 

Задание 2. Выберите три верных ответа из шести возможных.

 

К паразитическим простейшим относятся:

А) лямблии          

Б) малярийный плазмодий         

В) инфузория стентор

Г) вольвокс          

Д) эвглена зеленая                     

 Е) инфузория баландий

 

Задание 3. Какие утверждения верны? Отметьте в каждой позиции «да» или «нет».

 

1. При неблагоприятных условиях амеба образует цисту.

2. Половой процесс конъюгация характерен для эвглены зеленой.

3. Вольвокс – это представитель колониальных жгутиковых.

4. Амеба, как и все животные, обладает раздражимостью.

5. Лямблии – это возбудители тяжелой болезни малярии.

 

 

Проверочная работа по теме «Подцарство Простейшие»

2 вариант

 

Задание 1. Выберите один верный ответ из четырех возможных.

 

1. Наличие хлоропластов в клетке характерно для:

А) инфузории-туфельки     

Б) амебы обыкновенной      

В) малярийного плазмодия  

Г) эвглены зеленой

 

2. Передвигается при помощи ресничек:

А) вольвокс       

Б) амеба обыкновенная        

В) инфузория-туфелька     

Г) эвглена зеленая

 

3. К типу Инфузории не относится:

А) вольвокс           

Б) бурсария           

В) стилонихия           

Г) сувойка

 

4. Клеточный рот и клеточную глотку имеет:

А) инфузория-туфелька     

Б) амеба обыкновенная      

В) эвглена зеленая     

Г) вольвокс

 

5. Непереваренные остатки пищи у инфузории-туфельки удаляются из организма через:

А) пищеварительную вакуоль    

Б) поверхность тела     

В) сократительную вакуоль       

Г) порошицу

 

Задание 2. Выберите три верных ответа из шести возможных.

 

К паразитическим простейшим относятся:

А) трипаносома          

Б) вольвокс                           

В) инфузория баландий

Г) лямблия                  

Д) эвглена зеленая              

Е) инфузория бурсария

 

Задание 3. Какие утверждения верны? Отметьте в каждой позиции «да» или «нет».

 

1. Сонную болезнь вызывают трипаносомы.

2. Инфузории-туфельки размножаются делением надвое поперек тела.

3. Для амебы обыкновенной характерно миксотрофное питание.

4. Малярийный плазмодий относится к типу Споровики.

5. Амеба имеет постоянную форму тела.

 

 

Ответы к проверочной работе по теме «Подцарство Простейшие»

 

1 вариант

2 вариант

 

Задание 1.

1. В

2. Б

3. Г

4. А

5. В

 

 

Задание 1.

1. Г

2. В

3. А

4. А

5. Г

 

Задание 2.

АБЕ

 

Задание 2.

АВГ

 

 

Задание 3.

1. да

2. нет

3. да

4. да

5. нет

 

 

Задание 3.

1. да

2. да

3. нет

4. да

5. нет

 

 КРИТЕРИИ ДЛЯ ОЦЕНИВАНИЯ ОТВЕТА

 

Задание 1.

Каждый верный ответ на вопросы 1-5 оценивается одним баллом.

 

Задание 2.

2 балла – нет ошибок; 1 балл – допущена одна ошибка; 0 баллов – допущено две и более ошибки, или ответ отсутствует.

 

Задание 3.

Каждый верный ответ на вопросы 1-5 оценивается одним баллом.

 

Максимальный балл – 12.

 

Количество правильных ответов

Оценка

12

«5»

11-9

«4»

8-6

«3»

5 и меньше

«2»

 
Проверочная работа по теме «Подцарство Простейшие»
DOCX / 19.82 Кб

Контрольная работа по теме: «Простейшие» 7 класс | Тест по биологии (7 класс) на тему:

Муниципальное бюджетное общеобразовательное учреждение

Кочетовская средняя общеобразовательная школа

Изосимовский филиал

Контрольная работа

по теме: «Простейшие»

7 класс

        

  Учитель: Мартынова Т.А.

Изосимово


В — 1

Задание 1.

Впишите пропущенные слова

Амеба обыкновенная относится к царству (________________), типу (________________), классу(________________).

Задание 2.

1. Кто из ученых впервые описал простейших:

а) Аристотель б) Линней в) Левенгук г) Ломоносов

2. Как называют органоид амебы обыкновенной, в котором происходит переваривание пищи?

а) циста;                                                         в) пищевая вакуоль;

б) порошица;                                                г) пищеварительная вакуоль.

3. Какое вещество придает эвглене зеленой зеленый цвет?

а)  крахмал;                                                 в) вода;

б)  хлорофилл;                                            г) жир.

4. Через какой органоид инфузория-туфелька выбрасывает неперевариваемые остатки пищи?

а) глотка;                                                    в) порошица;

б) ротовое отверстие;                            г) сократительная вакуоль.

5. Какое простейшее передвигается с помощью одного жгутика?

а)   амеба обыкновенная;                    в) вольвокс;

б)   эвглена зеленая;                             г) инфузория-туфелька.

6. Какое простейшее всегда содержит две сократительные вакуоли?

а)   амеба обыкновенная;                    в) вольвокс;

б)   эвглена зеленая;                             г) инфузория-туфелька.

7. Какое простейшее имеет светочувствительный глазок, помогающий передвигаться к свету?

а)   амеба обыкновенная;                    в) вольвокс;

б)   эвглена зеленая;                             г) инфузория-туфелька.

8. Какое из простейших является паразитом?

а)   амеба дизентерийная;                  в) вольвокс;

б)   эвглена зеленая;                             г) инфузория-туфелька.

9. Какое из простейших имеет два ядра (большое и малое)?

а)   амеба обыкновенная;                    в) вольвокс;

б)   эвглена зеленая;                             г) инфузория-туфелька.

10. Органоидами движения инфузории туфельки являются:

а) ложноножки

б) жгутики в) реснички

Задание 3.

 Установите соответствие между объектами и процессами.

 

1. Установите соответствие между функцией органоида и его видом.

Функция органоида:                      Вид органоида:

А) передвижение;                         1. реснички

Б) пищеварение;                           2. ядро

В) размножение;                          3. Пищеварительная вакуоль

2. Установите соответствие между средой обитания и видом простейшего.

Среда обитания:                                           Вид простейшего:

А) пресный водоем;                                      1. Амеба дизентерийная

Б) соленый водоем;                                      2. Эвглена зеленая

В) организм;                                                   3. Радиолярии                                

 

Задание 4.

 Дайте развернутый ответ на вопросы.

1. Дайте характеристику процессу выделения на примере инфузории-туфельки.

2. Почему эвглену зеленую считают и растением и животным?

Задание 5.

Строение эвглены зеленой

Изучите рисунок и сделайте к нему подписи

 

 

Задание 6*.

Отметьте знаками «+» или «-« присутствие или отсутствие названного органоида  в клетке простейших

№ п/п

Органоиды

Амеба обыкновенная

Эвглена зеленая

Инфузория — туфелька

1

Цитоплазма

2

Оболочка

3

Ядро большое

4

Ядро малое

5

Ложноножки

6

Глазок

7

Жгутик

8

Реснички

9

Порошица

10

Пищеварительная вакуоль

11

Сократительная вакуоль

12

Предротовая воронка

13

Глотка

В — 2

Задание 1.

Впишите пропущенные слова

Эвглена зеленая относится к царству (________________), типу (________________), классу(________________).

Задание 2.

1. Тело простейших состоит из:

а) одной клетки б) двух клеток в) неклеточные формы жизни г) многоклеточные

2. В какой момент амеба обыкновенная превращается в цисту?

а) перед делением;                                                                   в) при чрезмерном размножении;

б) перед накоплением питательных веществ;                   г) при неблагоприятных условиях.

3. На каком органоиде эвглены зеленой происходит процесс фотосинтеза?

а)  жгутик;                                                 в) светочувствительный глазок;

б)  хлоропласт;                                         г) ядро.

4. Через какой органоид инфузория-туфелька поглощает пищу?

а) глотка;                                                    в) порошица;

б) предротовая воронка;                            г) сократительная вакуоль.

5. Какое простейшее передвигается с помощью ресничек?

а)   амеба обыкновенная;                    в) вольвокс;

б)   эвглена зеленая;                             г) инфузория-туфелька.

6. Какое из простейших не является паразитом?

а)   амеба дизентерийная;                  в) лямблии;

б)   эвглена зеленая;                             г) трихомонада .

7. Какое из простейших образует ложноножки?

а)   амеба обыкновенная;                    в) вольвокс;

б)   эвглена зеленая;                             г) инфузория-туфелька.

8. Сколько ядер имеет эвглена зеленая?

а)   4;                             в) 1;

б)   2;                             г) 3.

9. Какое простейшее имеет жгутик?

а)   амеба обыкновенная;                    в) вольвокс;

б)   эвглена зеленая;                             г) инфузория-туфелька.

10. Участок тела амебы обыкновенной, где происходит выделение непереваренных остатков пищи наружу?

а)   ротовое отверстие;                                                  в) порошица;

б)   любое мести поверхности тела;                             г) сократительная вакуоль.

Задание 3.

 Установите соответствие между объектами и процессами.

1. Установите соответствие между функцией органоида и его видом.

Функция органоида:                      Вид органоида:

А) передвижение;                          1. жгутик

Б) дыхание;                                    2. Сократительная вакуоль

В) выделение;                                3. Всей поверхностью тела

2. Установите соответствие между средой обитания и видом простейшего.

Среда обитания:                                           Вид простейшего:

А) пресный водоем;                                      1. Лямблии

Б) соленый водоем;                                       2. Амеба обыкновенная

В) организм;                                                   3.Фораминеферы

Задание 4.

Дайте развернутый ответ на вопросы.

1. Дайте характеристику процессу размножения на примере инфузории-туфельки.

2. Опишите процесс дыхания простейших.

Задание 5.

Строение эвглены зеленой

Изучите рисунок и сделайте к нему подписи

 

Задание 6*.

Отметьте знаками «+» или «-« присутствие или отсутствие названного органоида  в клетке простейших

№ п/п

Органоиды

Амеба обыкновенная

Эвглена зеленая

Инфузория — туфелька

1

Цитоплазма

2

Оболочка

3

Ядро большое

4

Ядро малое

5

Ложноножки

6

Глазок

7

Жгутик

8

Реснички

9

Порошица

10

Пищеварительная вакуоль

11

Сократительная вакуоль

12

Предротовая воронка

13

Глотка

 

 

-: Ламарк

-: Дарвин

-: Бюффон

-: Линней

-: Кювье

Основным таксоном в современной систематике животных является

-: тип

-: класс

-: отряд

-: семейство

-: вид

Высшим таксоном в современной систематике животных является

-: класс

-: тип

-: отряд

-: семейство

-: вид

Изучает многообразие организмов и объединяет их в группы на основе родства

-: морфология

-: экология

-: физиология

-: систематика

-: анатомия

Раздел 2. Зоология.

1. Подцарство Простейшие

Органоидами движения всего или большей части жизненного цикла саркодовых являются

-: жгутики

-: реснички

-: псевдоподии

-: мионемы

-: параподии

Среди одноклеточных непостоянную форму тела имеет

-: эвглена

-: балантидий

-: трипаносома

-: туфелька

-: амеба

Переваривание пищи у амебы происходит в

-: пищеварительной вакуоле

-: цитоплазме

-: ядре

-: сократительной вакуоле

-: псевдоподиях

Фагоцитоз является способом питания у

-: лейшмании

-: инфузории- туфельки

-: амебы

-: балантидия

-: трипаносомы

В отличие от амебы у эвглены есть

-: ядро

-: хлоропласты

-: цитоплазма

-: митохондрии

-: сократительная вакуоль

  1. I

Миксотрофный тип питания характерен для

-: амебы

-: инфузории-туфельки

-: радиолярии

-: лейшмании

-: эвглены

К колониальным простейшим относится

-: амеба

-: эвглена

-: вольвокс

-: грегарина

-: трипаносома

Кокцидии относятся к типу

-: Саркожгутиковые

-: Микроспоридии

-: Книдоспоридии

-: Споровики

-: Ресничные

Трипанозома относится к типу

-: Саркожгутиковые

-: Споровики

-: Ресничные

-: Микроспоридии

-: Книдоспоридии

Малярийный плазмодий относится к типу

-: Саркожгутиковые

-: Ресничные

-: Микроспоридии

-: Споровики

-: Книдоспоридии

Многократное деление ядра и увеличение в объеме цитоплазмы споровиков – это

-: гаметогония

-: шизогония

-: спорогония

-: изогамия

-: анизогамия

Бесполое размножение у споровиков происходит путем

-: митоза

-: амитоза

-: почкования

-: спорогонии

-: шизогонии

Спорогония у кокцидий происходит в

-: клетках печени

-: внешней среды

-: эритроцитах крови

-: эпителии кишечника

-: слюнных железах

Среди одноклеточных животных наиболее высокоорганизованными являются представители типа

-: Саркожгутиковые

-: Споровики

-: Микроспоридии

-: Ресничные

-: Книдоспоридии

Место удаления непереваренных остатков пищи (порошицу) имеет

-: амеба обыкновенная

-: инфузория-туфелька

-: эвглена зеленая

-: малярийный плазмодий

-: лейшмания тропическая

Временное сближение двух инфузорий для обмена ядерным содержимым с последующим расхождением- это

-: копуляция

-: оплодотворение

-: конъюгация

-: гаметогония

-: спорогония

К паразитическим саркодовым относится

-: малярийный плазмодий

-: балантидий

-: дизентерийная амеба

-: лейшмания

-: трипанозома

К паразитическим жгутиковым относится

-: трипанозома

-: дизентерийная амеба

-: малярийный плазмодий

-: балантидий

-: эймерия

К паразитическим инфузориям относится

-: дизентерийная амеба

-: малярийный плазмодий

-: балантидий

-: эймерия

-: лейшмания

Возбудителем «случной болезни» является

-: лейшмания тропическая

-: малярийный плазмодий

-: трихомонада влагалищная

-: трипанозома лошадиная

-: амеба дизентерийная

21

Возбудителем «сонной болезни» является

-: лейшмания тропическая

-: малярийный плазмодий

-: трипанозома африканская

-: трихомонада влагалищная

-: амеба дизентерийная

22

В сбраживании клетчатки в рубце жвачных животных участвуют

-: раковинные амебы

-: зеленые жгутиковые

-: кровяные споровики

-: паразитические жгутиковые

-: панцирные инфузории

23

Шаровидные колонии образует

-: эвглена

-: вольвокс

-: пандорина

-: трипанозома

-: лейшмания

24

Ундулирующую мембрану имеет

-: амеба дизентерийная

-: амеба обыкновенная

-: трипанозома лошадиная

-: эвглена зеленая

-: малярийный плазмодий

25

Спорогония у малярийного плазмодия происходит в

-: кишечнике комара

-: внешней среде

-: печени человека

-:эритроцитах

-:кишечнике человека

26

Органоиды передвижения отсутствует у

-: амебы

-: эвглены

-: кокцидии

-: инфузории-туфельки

-: лейшмании

27

Среди одноклеточных животных наиболее высокоорганизованными являются представители типа

-: саркожгутиковые

-: споровики

-: ресничные

-: микроспоридии

-: книдоспоридии

28

Присутствие в клетке по меньшей мере двух качественно разных ядер характерно для

-: саркожгутиковых

-: споровиков

-: ресничных

-: книдоспоридий

-: микроспоридий

30

Две сократительные вакуоли с приводящими каналами имеет

-: амеба обыкновенная

-: эвглена зеленая

-: инфузория -туфелька

-: малярийный плазмодий

-: лейшмания тропическая

31

У инфузорий регулирует обмен веществ и имеет полиплоидный набор хромосом

-: микронуклеус

-: макронуклеус

-: порошица

-: пищеварительная вакуоль

-: сократительная вакуоль

32

К паразитическим жгутиковым относится

-: дизентерийная амеба

-: малярийный плазмодий

-: балантидий

-: эймерия

-: трипанозома

33

К споровикам относится

-: дизентерийная амеба

-: трихомонада

— : балантидий

-: эймерия

-: лейшмания

34

Внутриклеточными паразитами с/х животных являются

-: гемоспоридии

-: грегарины

-: микроспоридии

-: книдоспоридии

-: кокцидии

35

Самый сложный жизненный цикл с четким чередованием бесполого и полового способов размножения характерен для

-: саркожгутиковых

-: споровиков

-: ресничных

-: фитомастигин

-: зоомастигин

36

У балантидия органоиды передвижения

-: псевдоподии

-: жгутики

-: реснички

-: отсутствуют

-: парапоподии

37

Фагоцитоз осуществляется с помощью

-: ресничек

-: жгутиков

-: псевдоподий

-: мионем

-: параподий

38

Фагоцитоз- это способ

-: размножения

-: выделения

-: дыхания

-: питания

-: передвижения

39

Анимальный способ питания имеет

-: амеба дизентерийная

-: малярийный плазмодий

-: трихомонада влагалищная

-: лейшмания тропическая

-: инфузория- туфелька

40

Осмотический способ питания имеет

-: амеба обыкновенная

-: малярийный плазмодий

-: инфузория- туфелька

-: эвглена зеленая

-: панцирная инфузория

41

Панцирные инфузории обитают в

-: пресных водоемах

-: соленых морях

-: рубце жвачных

-: желудке хищников

-: крови рыб

42

Два жгутика имеет

-: эвглена

-: трипанозома

-: лямблия

-: вольвокс

-: лейшмания

43

Жгутик имеет

-: амеба дизентерийная

-: амеба обыкновенная

-: трипанозома лошадиная

-: эвглена зеленая

-: малярийный плазмодий

44

Пищеварительные вакуоли отсутствуют у

-: амебы обыкновенной

-: раковинной амебы

-: инфузории- туфельки

-: панцирных инфузорий

-: трипанозомы лошадиной

№ 45

Бесполое размножение путем деления клетки пополам вдоль происходит у

-: амебы обыкновенной

-: эвглены зеленой

-: инфузории- туфельки

-: малярийного плазмодия

-: панцирной инфузории

46

Клеточный рот имеет

-: амеба обыкновенная

-: инфузория- туфелька

-: малярийный плазмодий

-: трихомонада влагалищная

-: лейшмания тропическая

47

Порошицу имеют

-: саркодовые

-: жгутиковые

-: инфузории

-: споровики

-: микроспоридии

48

Трихоцисты имеет

-: амеба обыкновенная

-: инфузория- туфелька

-: малярийный плазмодий

-: трихомонада влагалищная

-: лейшмания тропическая

49

Ответная реакция простейших на раздражение проявляется в виде

-: рефлекса

-: таксисиса

-: инцистирования

-: деления

-: тропизма

50

Регуляторную функцию у простейших выполняет

-: пищеварительная вакуоль

-: порошица

-: сократительная вакуоль

-: ядро

-: трихоцисты

Задания для проверки знаний учащихся по биологии по теме «Простейшие»; 7 класс — Оценка знаний учащихся — Биология и экология

Задания для проверки знаний учащихся 7 класса по биологии. Тема «Простейшие»

Фунтова Ирина Геннадьевна

Учитель биологии

МБОУ «СОШ №3 с УИОП им. Г. Панфилова»

Анжеро-Судженского городского округа

Задания для самостоятельной работы учащихся 7 класса по биологии.

Тема «Простейшие»

Задание 1. Дополните таблицу, отметив знаком «+» наличие у каждого животного соответствующего органоида.

Одноклеточные животные

Органоиды

Одноклеточное животное

Амеба обыкновенная

Эвглена зеленая

Инфузория-туфелька

Оболочка

Цитоплазма

Жгутик

Реснички

Пищеварительная вакуоль

Сократительная вакуоль

Ротовое отверстие

Хлоропласты

Ядро

Ложноножки

Задание 2. Выберите один верный ответ

  1. Эвглена зеленая передвигается с помощью:

А) жгутика

Б) ресничек

В) ложноножек

Г) щетинок

2. Сократительная вакуоль инфузории – это органоид:

А) выделения

Б) размножения

В) пищеварения

Г) дыхания

3. В половом процессе инфузорий основную роль играет:

А) малое ядро

Б) большое ядро

В) оба ядра

Г) цитоплазма

4. К фотосинтезу способна:

А) инфузория – бурсания

Б) амеба дизентерийная

В) эвглена зеленая

Г) лямблия кишечная

Задание 3. Подберите цифры, которыми ниже обозначены организмы, относящиеся к следующим биологическим группам: А – паразиты; Б – хозяева; В – переносчики паразита.

Организмы:

  1. животное, которое обитает в организме другого животного или человека, принося ему вред;

  2. животное, которое переносит паразита от одного животного или человека к другому;

  3. организм, на котором обитает другое животное, приносящее вред первому;

  4. малярийный комар;

  5. человек;

  6. малярийный плазмодий;

  7. дизентерийная амеба;

  8. лямблия.

1

2

3

4

5

6

7

8

Задание 4. Закончите фразы: (в тетрадь записать ТОЛЬКО пропущенное слово)

  1. Органоидами движения инфузорий являются ______________________________________________

  2. Амебы размножаются __________________________________________________________________

  3. Амебы переживают неблагоприятные условия среды в форме_________________________________

  4. Амеба является животным, так как питается _______________________________________________

  5. Амеба относится к типу __________, инфузория к типу ____________, а лямблия к типу__________

  6. Паразитические простейшие, такие как малярийный плазмодий относятся к типу ________________

  7. Миксотрофное питание характерно для ___________________________________________________

  8. Мел образован _________________________________.

Задание 5. В организме термитов, активно питающихся древесиной, поселяются жгутиковые простейшие, а в них в свою очередь живут бактерии. Какая связь между этими фактами?

Ответы:

Задание 1.

Органоиды

Одноклеточное животное

Амеба обыкновенная

Эвглена зеленая

Инфузория-туфелька

Оболочка

+

+

+

Цитоплазма

+

+

+

Жгутик

+

Реснички

+

Пищеварительная вакуоль

+

+

+

Сократительная вакуоль

+

+

+

Ротовое отверстие

+

Хлоропласты

+

Ядро

+

+

++

Ложноножки

+

Задание 2.

  1. Эвглена зеленая передвигается с помощью:

А) жгутика В) ложноножек

Б) ресничек Г) щетинок

2. Сократительная вакуоль инфузории – это органоид:

А) выделения В) пищеварения

Б) размножения Г) дыхания

3. В половом процессе инфузорий основную роль играет:

А) малое ядро В) оба ядра

Б) большое ядро Г) цитоплазма

4. К фотосинтезу способна:

А) инфузория – бурсания В) эвглена зеленая

Б) амеба дизентерийная Г) лямблия кишечная

Задание 3.

1

2

3

4

5

6

7

8

А

В

Б

В

Б

А

А

А

Задание 4.

  1. реснички

  2. делением

  3. цисты

  4. гетеротрофно (готовыми органическими соединениями)

  5. саркодовые, инфузории, жгутиконосцы

  6. споровики

  7. эвглены зеленой

  8. раковинами формаминефер

Задание 5.

Жгутиконосцы, живущие в организме термитов, разлагают клетчатку, переводя ее в легкоусвояющиеся формы. Бактерии также облегчают переваривание клетчатки, используя готовые органические вещества, полученные от деятельности простейших.

Список использованных источников:

  1. Учебное пособие: Трайтак Д.И., Суматохин С.В.. Биология 7 класс. М., Мнемозина, 2009

  1. Суматохин С.В. Биология. Животные. 7 класс: метод. Пособие. – М.: Мнемозина, 2011

  1. Лернер Г.И. Биология. Тема «Животные» (7-8 классы): подготовка к ЕГЭ. Контрольные и самостоятельные работы. – М.: Эксмо, 2007

Задания для проверки знаний учащихся 7 класса по биологии. Тема «Простейшие»

Фунтова Ирина Геннадьевна

Учитель биологии

МБОУ «СОШ №3 с УИОП им. Г. Панфилова»

Анжеро-Судженского городского округа

Саркомастигофоры простейшие животные

К типу Саркомастигофоры относится группа простейших животных, отличительной чертой которых является особенность передвижения с помощью непостоянных выростов цитоплазмы (ложноножек, или псевдоподий) либо жгутиков. Представители Саркомастигофор, в большинстве случаев, ведут свободный образ жизни, некоторые из них паразитируют в организме животных или человека. Места обитания свободноживущих форм – моря и пресные водоемы, увлажненная почва. В тип Саркомастигофоры включены два класса: саркодовые и жгутиковые. Около 18 тысяч видов простейших объединяет этот тип. Характерные представители класса саркодовых – это фораминиферы, радиолярии, амёба обыкновенная, амёба дизентерийная. К классу жгутиконосцев относятся эвглена зелёная, лямблии, трипаносома, вольвокс.

Несмотря на то, что строение всех Саркомастигофор относительно простое, по внешнему виду они чрезвычайно разнообразны. Это связано с наличием скелетных образований, которые у некоторых представителей типа имеют сложное строение и достигают совершенства. Огромное количество видов известны в наши дни, благодаря их ископаемым останкам, так как скелеты многих саркодовых хорошо сохраняются даже на протяжении длительного времени. Тело (клетка) Саркомастигофор покрыта снаружи элементарной мембраной. Под ней расположена цитоплазма с различными включениями.

Внутри клетки саркодовых имеется сократительная вакуоль, регулирующая осмотическое давление внутри тела особи, и пищеварительные вакуоли, содержащие частицы пищи. Внешний и внутренний слои цитоплазмы саркодовых имеют разную вязкость, благодаря чему осуществляется образование ложноножек (псевдоподий) для захвата пищи и передвижения. Особенностью представителей класса жгутиковых типа Саркомастигофор является то, что они имеют постоянную форму тела, а передвигаются посредством одного или нескольких жгутиков. В цитоплазме клеток некоторых жгутиковых содержится светочувствительный глазок и хлорофилл, что позволяет им переходить к автотрофному питанию, синтезируя органические вещества из неорганических. Для некоторых из них характерно миксотрофное питание в отсутствие доступа солнечного света, когда они питаются готовыми органическими веществами, растворенными в воде. Размножение Саркомастигофор бесполое, происходит продольным делением клеток пополам. У некоторых видов возможно осуществление полового способа размножения путем слияния гамет.

Среди Саркомастигофор много паразитических видов. Из класса саркодовых амёба дизентерийная способна провоцировать развитие такого заболевания, как дизентерия. Среди жгутиковых широко распространена лямблия, вызывающая лямблиоз. Такие представители этого класса, как лейшмания и трипаносома вызывают у человека, сответственно, лейшманиоз и африканскую сонную болезнь.

Статьи по теме:

1. Саркодовые
2. Жгутиковые

Simple English Wikipedia, бесплатная энциклопедия

Euglenozoa — крупный тип жгутиковых простейших. Они являются частью таксона мусорных корзин, известного как простейшие, у которого было много явно разных протистов.

Euglenozoa включает множество распространенных свободноживущих видов и некоторых важных паразитов, некоторые из которых инфицируют людей. Существует две основные подгруппы: Euglenoidea «euglenids» и Kinetoplastea «кинетопластиды». [1] Эвгленозоа одноклеточные, в основном размером около 15-40 мкм, хотя некоторые эвглениды достигают длины до 500 мкм.

У большинства Euglenozoa два жгутика расположены параллельно друг другу и образуют кармановидную структуру. У некоторых есть цитостом или рот, используемый для поедания бактерий или других мелких организмов. Это поддерживается микротрубочкой из оснований жгутиков; два других канальца поддерживают дорсальную и вентральную поверхности клетки. [2]

Некоторые другие эвгленозоа питаются за счет абсорбции, и многие эвглениды имеют хлоропласты и поэтому получают энергию за счет фотосинтеза. Эти хлоропласты окружены тремя мембранами и содержат хлорофиллы A и C , а также другие пигменты [1] , поэтому они, вероятно, произошли от пигментов пойманных зеленых водорослей.Размножение происходит только путем деления клеток. Во время митоза ядерная мембрана остается неповрежденной, а внутри нее образуются микротрубочки веретена. [2]

Группа характеризуется ультраструктурой жгутиков. В дополнение к нормальным поддерживающим микротрубочкам каждая содержит стержень (называемый параксонемальный ), который имеет трубчатую структуру в одном жгутике и решетчатую структуру в другом. [3]

Эугленозоа обычно считаются монофилетическими.Они родственны Percolozoa; эти двое имеют митохондрии с дисковыми отделениями, которые встречаются только в нескольких других группах. [4] Оба, вероятно, принадлежат к более крупной группе эукариот, называемой Excavata. [5] Эта группировка подверглась сомнению. [6]

  1. 1,0 1,1 Кавальер-Смит Т. 1981. «Царства эукариот: семь или девять?». Биосистемы . 14 (3–4): 461–481. DOI: 10.1016 / 0303-2647 (81)
  2. -2.PMID 7337818.
  3. 2,0 2,1 Паттерсон, Дэвид Дж. 1999. «Разнообразие эукариот». Американский натуралист . 154 (S4): S96 – S124. DOI: 10,1086 / 303287. PMID 10527921.
  4. Simpson A.G.B. 1997. «Идентификация и состав Euglenozoa». Archiv für Protistenkunde . 148 : 318–328.
  5. ↑ Baldauf S.L; Роджер А.Дж.; Венк-Зиферт И. и Дулиттл В. Форд 2000.Филогения эукариот на уровне царства, основанная на комбинированных данных о белках. Наука 290 (5493): 972–977. [1]
  6. Симпсон, Аластер Г. 2003. «Цитоскелетная организация, филогенетическое сходство и систематика в спорном таксоне Excavata (Eukaryota)». Международный журнал систематической и эволюционной микробиологии . 53 (Pt 6): 1759–1777. DOI: 10.1099 / ijs.0.02578-0. PMID 14657103.
  7. Кавальер-Смит Т 2009.Царства Protozoa и Chromista и эозойный корень эукариотического дерева. «Архивная копия». Биол Письмо . 6 (3): 342–5. DOI: 10.1098 / RSBL.2009.0948. PMC 2880060. PMID 20031978. Архивировано 20 мая 2020 года. Проверено 22 января 2013. CS1 maint: заархивированная копия как заголовок (ссылка)

Эвгленофицин продуцируется как минимум в шести видах эвгленоидных водорослей и шести из семи штаммов Euglena sanguinea

Вредные водоросли. Авторская рукопись; доступно в PMC 2018 1 марта.

Опубликован в окончательной редакции как:

PMCID: PMC5380236

NIHMSID: NIHMS851371

Пол В. Зимба

1 Центр прибрежных исследований, Christi A&M University Corpus Christi, 6300 Техас 78412, США

И-Шуо Хуанг

1 Центр прибрежных исследований Техасского университета A&M Corpus Christi, 6300 Ocean Drive, Corpus Christi, TX 78412, USA

Danielle Gutierrez

1 Центр прибрежных исследований , Texas A&M University Corpus Christi, 6300 Ocean Drive, Corpus Christi, TX 78412, USA

2 Исследовательский центр масс-спектрометрии и Департамент биохимии, Университет Вандербильта, 9160 Медицинский исследовательский корпус III, 465 21st Avenue South, Нашвилл, Теннесси 37240-7916 США

Woongghi Shin

3 Департамент биологии, Национальный университет Чунгнам, Тэджон 305-764, Южная Корея

Мэтью С. .Беннетт

4 Биология растений, Университет штата Мичиган, 612 Wilson Rd., S-138 Лаборатории биологии растений, Ист-Лансинг, Мичиган 48824 США

1 Центр прибрежных исследований, Техасский университет A&M Corpus Christi, 6300 Ocean Drive , Corpus Christi, TX 78412, USA

2 Исследовательский центр масс-спектрометрии и Департамент биохимии, Университет Вандербильта, 9160 Медицинский исследовательский корпус III, 465 21st Avenue South, Нэшвилл, TN 37240-7916 США

3 Департамент биологии, Национальный университет Чунгнам, Тэджон 305-764, Южная Корея

4 Биология растений, Университет штата Мичиган, 612 Wilson Rd., S-138 лаборатории биологии растений, Ист-Лансинг, штат Мичиган 48824, США

* Автор для корреспонденции Тел .: + 1-361-825-2768; Факс: + 1-361-825-2770

5 Текущий адрес: на пенсии

Окончательная отредактированная версия этой статьи издателем доступна на сайте «Вредные водоросли». См. Другие статьи в PMC, в которых цитируется опубликованная статья.

Abstract

Euglena sanguinea , как известно, продуцирует алкалоидный токсин эвгленофицин и, как известно, вызывает гибель рыб и подавляет рост тканей млекопитающих и культур микроводорослей.Анализ более 30 видов эвгленоидов на предмет накопления эвгленофицина выявил шесть дополнительных видов, продуцирующих токсин; и шесть из семи штаммов E. sanguinea продуцировали токсин. Филогенетическая оценка этих видов подтвердила, что большинство таксонов относились к Euglenaceae, тогда как способность к синтезу, по-видимому, была потеряна в ветвях Phacus, Eutreptiella и Discoplastis .

Ключевые слова: водоросли, эвглена, эвгленофицин, вредоносное цветение водорослей, токсин

1.Введение

В настоящее время известные пресноводные водоросли, продуцирующие токсины, включают цианобактерии (обзор см. В Smith et al., 2008), гаптофиты (Ulitzer and Shilo, 1966; Skelbred et al., 2011), Dinophyceans (Hashimoto et al., 1968; Rengefors и Legrand, 2001) и по крайней мере один вид Euglenophyceae (Zimba et al., 2010). Открытие нового для науки токсина, продуцируемого эвгленоидами, было неожиданным: этот вид был впервые описан в 1830 году, и, хотя в предыдущих отчетах не было идентифицировано эвгленоидных токсинов, имеется единственный отчет о некоторой смертности рыб при совместном культивировании с E.sanguinea (Xavier et al., 1991).

Класс Euglenophyceae включает разнообразный набор фотосинтетических и нефотосинтетических таксонов (Buetow, 1968; Wolowski, 2002). Отличительные характеристики включают хранение углеводов в виде парамилона (Ciugulea and Triemer, 2010), который имеет связи β-1,3, которые отличаются от альфа-связей, обнаруженных в крахмале высших растений, и подвижность в водной толще со жгутиками, а также в пресной воде и внутри нее. и эстуарные отложения посредством метаболизма (Kingston, 1999 a, b; Arroyo et al.2012). Идентификация таксонов эвгленоидов требует наблюдения за конфигурацией полосок пленки, формой хлоропластов, расположением и количеством, наличием и формой пиреноидов, в дополнение к определению длины / ширины и формы. Конкретные различия на уровне семьи включают отсутствие клеточной стенки и пигментации, а также диетические потребности в витаминах (Buetow, 1968; Ciugulea and Triemer, 2010). Эвгленоиды встречаются повсюду в устьях рек, с наибольшим обилием в умеренных водах осенью (Marshall et al., 2005, Manna et al. 2010).

Эвгленофицин структурно очень похож на алкалоид соленопсин, яд, содержащийся в огненных муравьях (). Яд огненных муравьев вызывает некротическую активность в месте укуса (Adrouny et al., 1959), обладает гемолитическими свойствами, не разлагается через 1 час при 100 ° C (Jouvenaz et al., 1972), подавляет рост широкой ряд бактерий (Blum et al. 1958 1960) и является фитотоксичным / ингибирующим действием в отношении листьев фасоли (Blum and Callahan, 1960). Зимба и др. (2004) сообщили о гибели рыбы в системах пресноводной аквакультуры, включая сома, полосатого окуня, тилапии и овчарки, в результате воздействия эвгленофицина.Эвгленофицин подавлял рост тканевых клеток в линиях раковых клеток млекопитающих; он также подавляет рост фитопланктона (Wahome et al., 2015; Zimba et al., 2010, 2016). Токсин стабилен более 30 дней при -80 ° C (Gutierrez et al., 2013) и является ингибитором ферментов, связанных с образованием кровеносных сосудов (ангиогенез-VEGF, Ang-2) в миллимолярных концентрациях (Zimba et al., 2016). ).

Структура соленопсина (яд огненного муравья, вверху) и эвгленофицина (внизу).

Штаммовые вариации по многим признакам, включая продукцию токсинов и токсичность, очевидны для всех цианобактерий и водорослей (Rapala, 1998; Doblin et al., 2000; Буркхолдер и Глиберт, 2006; Zapomapomêv et al., 2008; Бахварофф и др., 2009; Skjelbred et al., 2011). Вариации токсина с точки зрения скорости продуцирования, эффективности различных изоформ токсина и влияния условий окружающей среды, пожалуй, лучше всего известны у cyanobacterium Microcystis aeruginosa (как с нетоксичными, так и с токсичными штаммами, которые могут продуцировать в 10 раз более высокие концентрации токсина при выбранная температура, питательные вещества или условия освещения). Известно более 90 изоформ микроцистина, при этом активность токсина LD 50 различается в 6 раз (Chorus, 2001).Лабораторное культивирование обычно снижает образование вторичных продуктов, в том числе соединений с неприятным запахом (Zimba, pers. Obs.) И накопление токсинов. Мутации или ответы на лечение антибиотиками могут объяснить потерю продукции токсина PSP в одном штамме Alexandrium (Martins et al., 2004), при этом условия культивирования, вероятно, выбираются в сторону от образования токсина в одноалгальной культуре.

Это исследование оценило, продуцируют ли несколько штаммов E. sanguinea и других видов фотосинтезирующих эвгленоидов токсин эвгленофицина.Наша цель состояла в том, чтобы лучше понять, широко ли продукция токсинов у эвгленоидов распространена среди всех семейств эвгленоидов или сгруппирована внутри определенных семейств. Для оценки биологического значения накопления токсина использовали подсчет клеток в культурах для нормализации концентрации токсина. Мониторинг множественных реакций (MRM) соотношения квалификаторов к количественным ионам и концентрации токсина в клетках использовался в качестве консервативного метода для различения штаммов и видов, продуцирующих эвгленофицин.

2.Материалы и методы

E. sanguinea и другие клональные изоляты эвгленоидов () были получены из коллекций культур и других фикологов, с дополнительными штаммами, выделенными из проб воды, собранных авторами, а также из проб, предоставленных аквакультурными хозяйствами и специалистами по контролю качества воды; все культуры выращивали в среде AF6 (Andersen, 2005). Условия культивирования включали 22 ° C и цикл 1410 L: D с использованием 45 мкмоль PAR с использованием «холодно-белого» и аквариумного (дальнего красного) флуоресцентного света.Культуры выращивали до средней экспоненциальной фазы и собирали фильтрацией (<15 фунтов на квадратный дюйм) с использованием фильтров GF / C с пористостью 1,2 мкм (Whatman Corporation, Maidestone, England). Фильтры хранили при -80 ° C до экстракции токсина (время выдержки <7 дней). Образцы, использованные для количественного определения клеток, сохраняли с использованием забуференного формалина (конечный объем 2%).

Таблица 1

Список видов эвгленоидов, оцененных на предмет продукции эвгленофицина.

attors { {«text»: «JQ281804», «term_id»: «388267639», «term_text»: «JQ281804»}} JQ281804 TX Zimba ) 9022 Karnkowski et Linton 0 SAG 1226-1c 902 27 UTEX 1284 «, «term_id»: «10441653», «term_text»: «AF1«}} AF1 ent «attrs»: {«text»: «DQ397670», «term_id»: «8

75″, «term_text»: «DQ397670»}} DQ397670

-nucleotide «,» attrs «: {» text «:» DQ140131 «,» term_id «:» 75281153 «,» term_text «:» DQ140131 «}} DQ140131
Протестированные виды Authority Идентификатор штамма Идентификатор GenBank
Colacium mucronatum тип Bourrelly -nucleotide «,» attrs «: {» text «:» AJ532440 «,» term_id «:» 29466139 «,» term_text «:» AJ532440 «}} AJ532440
Cryptoglena

930 pigra
CCAP 1212/1 {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «AJ532437», «term_id»: «29466136», «term_text»: «AJ532437»}} AJ532437
Discoplastis spathiryncha (Skuja) Triemer SAG 1221-12 {«type»: «entrez-nucleotide», «attrs»: {«text»: «AJ «term_id»: «29466153», «term_text»: «AJ532454»}} AJ532454
Euglena des es Ehrenberg SAG 1224-19b {«type»: «entrez-nucleotide», «attrs»: {«text»: «AJ532409», «term_id»: «29466108», «term_text»: » AJ532409 «}} AJ532409
Euglena gracilis Klebs SAG 1224-5 / 15 {» type «:» entrez-nucleotide «, text» attrs: » «M12677», «term_id»: «167996», «term_text»: «M12677»}} M12677
Euglena granulata (Klebs) Schmidtz OR 5 OR тип : «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «AJ532422», «term_id»: «29466121», «term_text»: «AJ532422»}} AJ532422
Euglena

099 lacini

Pringsheim SAG 1224-31 {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «AJ532420», «term_id»: «29466119», «term_text»: «AJ532420» }} AJ532420
Эвглена laciniata Pringsheim MI 32 {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «DQ140158», «term_id»: «75286038», «term_text»: «DQ140158 «}} DQ140158
Euglena mutabilis Schmitz CCMP 2916 {» type «:» entrez-нуклеотид «,» attrs «: {» text404 «,» AJ532 » term_id «:» 29466103 «,» term_text «:» AJ532404 «}} AJ532404
Euglena rubra Hardy MI 103 нет 900 Braslavska-Spectorova SAG 1224-22 {«type»: «entrez-nucleotide», «attrs»: {«text»: «AJ532406», «term_id»: «29466105», «term_text»: «AJ532406»}} AJ532406
Euglena sanguinea Ehrenberg SAG 1224-30 {«тип. e «:» entrez-нуклеотид «,» attrs «: {» text «:» JQ281806 «,» term_id «:» 388267641 «,» term_text «:» JQ281806 «}} JQ281806
Euglena sanguinea Ehrenberg Zimba- NC Нет
Euglena sanguinea Ehrenberg Triemer-Argentina
Euglena sanguinea Henderson {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «JQ281805», «term_id»: «388267640», «term_text»: «JQ281805»}} JQ281805
Euglena sociabilis Dangeard ACOI 920 {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «EU750715», «term_id»: «20896 8955 «,» term_text «:» EU750715 «}} EU750715
Euglena stellata Mainx UTEX 372 {» type «:» entrez-nucleotide «, {» type «:» entrez-nucleotide «, { «text»: «AF150936», «term_id»: «6175604», «term_text»: «AF150936»}} AF150936
Euglena undulata S.Като MI 03 {«type»: «entrez-nucleotide», «attrs»: {«text»: «DQ140148», «term_id»: «75283705», «term_text»: «DQ140148»}} DQ140148
Euglena viridis (OFMüller) Ehrenberg ATCC PRA110 {«type»: «entrez-nucleotide», «attrs»: {«text»: «AY523036id» «:» 46488640 «,» term_text «:» AY523036 «}} AY523036
Euglenaformis проксимальный Bennett et Triemer SAG 1224-11a ent {» тип ядра «,» attrs «: {» text «:» AJ532440 «,» term_id «:» 29466139 «,» term_text «:» AJ532440 «}} AJ532440
Euglenaria (Main anabaena UTEX 373 {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «AF242548», «term_id»: «7341335», «term_text»: «AF242548»}} AF242548
Эвгленария anabaena (Mainx) Karnkowski et Linton Triemer NJ 05 {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «DQ140155», «term_id»: » 75284681 «,» term_text «:» DQ140155 «}} DQ140155
Euglenaria clavata Skuja (Karnkowski et Linton) SAG 1224-32 SAG 1224-32 «,» attrs «: {» text «:» AJ532436 «,» term_id «:» 29466135 «,» term_text «:» AJ532436 «}} AJ532436
Eutreptia viridis 7 {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «AJ532395», «term_id»: «29466094», «term_text»: «AJ532395»}} AJ532395
Eutreptiella braarudii Throndsen CCMP 1594 {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «DQ249879», «term_id»: » , «term_text» : «DQ249879»}} DQ249879
Lepocinclis acus (OF Muller) Maren et Melkonian UTEX LB 1316 {«type»: «entrez-» nuclers «,» ядер » {«текст»: «AF152104», «term_id»: «6175611», «term_text»: «AF152104»}} AF152104
Лепоцинклис яйцеклетка (Эренберг 1230- Леммерберг) 8 {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «AF110419», «term_id»: «4164019», «term_text»: «AF110419»}} AF110419
Lepocinclis spirogyroides (Ehrenberg) Marin et Melkonian SAG 1224-10b {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «AJ532464», «term» : «29466164», «term_text»: «AJ532464»}} AJ532464
Monomorphina aenigmatica (Drézepolski) Nudelman et Triemer {«type»: «entrez-nucleotide», «attrs»: {«text»: «AF1
Monomorphina parapyrum Kim, Triemer et Shin UTEX 2354 {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «AF112874», «term_id»: «5231236», «term_text»: «AF112874»}} AF112874
Phacus orbicularis Hübner emend Zakryś et Kosmala ACOI 996
Phacus pleuronectes (OF Müjinller) SAG1261-3b {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «DQ397669», «term_id»: «8

74″, «term_text»: «DQ397669»}} DQ397669

Phacus smulkowskianus (Zakryś) W.-H.Kusber SAG 58.81 {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«text»: «AJ532467», «term_id»: «29466167», «term_text»: «AJ532467»} } AJ532467
Strombomonas acuminata Deflandre Triemer NJ, S716 {«type»: «entrez-нуклеотид», «attrs»: {«текст»: term_id «:» 194368899 «,» term_text «:» EU624029 «}} EU624029
Strombomonas borystheniensis (Roll) Papova Triemer NJ, S10
Strombomonas 9002 ovalis 90 Playfair) Deflandre Triemer NJ, S115 {«type»: «entrez-nucleotide», «attrs»: {«text»: «DQ140133», «term_id»: «75281374», «term_text»: «DQ140133» }} DQ140133
9 0099 Trachelomonas abrupta Sdwirenko emend.Delfandre Triemer NJ, 801 {«type»: «entrez-nucleotide», «attrs»: {«text»: «DQ140134», «term_id»: «75281473», «term_text»: «DQ140134»}} DQ140134
Trachelomonas ellipsodalis Singh Triemer NJ, ST1 {«type»: «entrez-nucleotide», «attrs_13id»: {«text» «:» 75281522 «,» term_text «:» DQ140135 «}} DQ140135
Trachelomonas lefévrei Deflandre SAG 1283-10 ent { «attrs»: {«text»: «DQ140136», «term_id»: «75281600», «term_text»: «DQ140136»}} DQ140136

Подсчет клеток проводили на инвертированном микроскопе Wild M5 при 150-600 × увеличение, как первоначально описано Utermöhl (1958).Перед подсчетом образцы помещали в камеры на> 2 ч, а затем подсчитывали с использованием ≥10 случайных полей и минимального количества клеток в 200, как рекомендовано Венриком (1978). Чистоту культуры подтверждали во время подсчета клеток, и отстойные камеры сканировали перед подсчетом, чтобы гарантировать отстаивание и случайное распределение.

Эвгленофицин был идентифицирован и количественно определен с помощью тандемной масс-спектрометрии с жидкостной хроматографией (ЖХ-МСМС) с использованием ВЭЖХ Agilent серии 1200 в сочетании с тройным квадрупольным масс-спектрометром Agilent 6410 (Agilent Technologies, Wilmington DE), оборудованным пикогенератором азота # NM30LA (Peak Scientific, Inc.Биллерика, Массачусетс). Образцы сначала экстрагировали с использованием 80% MeOH в течение 6 часов при 4 ° C, осветляли с помощью фильтров 0,2 мкм, затем выдерживали при 8 ° C до того, как 10 мкл были введены через автоматический пробоотборник на Luna C18 (2) 150 × 3 мм, 3 Колонка с размером частиц мкм (Phenomenex Corporation, Торранс, Калифорния), поддерживаемая при 40 ° C. Аналиты разделяли с использованием скорости потока 400 мкл / мин в течение 17-минутного градиента. Условия поддерживались: 10% подвижной фазы B (100% ацетонитрила, 0,1% муравьиной кислоты), 90% подвижной фазы A (90% воды, 10% ацетонитрила, 0.1% муравьиной кислоты) в течение 2 минут, затем увеличивалась с 10 до 90% B за 6 минут, выдерживалась при 90% B в течение 3 минут и возвращалась к 10% B через 2 минуты, после чего исходные условия сохранялись в течение 4 минут перед до следующей инъекции. Тройной квадруполь работал с источником ионизации электрораспылением в режиме положительных ионов в режиме MRM (Gutierrez et al. 2013). Эвгленофицин был обнаружен как ион [M + H-H 2 O] + при m / z 288,3. Ионы продукта, отслеживаемые при диссоциации, вызванной столкновением, были m / z 97.2, 110.2 и 136.2. Самый распространенный ион продукта, 110,2, использовали для количественного определения.

Данные масс-спектрометрии анализировали с помощью программного обеспечения Agilent MassHunter Qualitative Analysis (версия B.03.01). Для каждого образца площади пиков ионов продукта определялись с использованием опции интегратора МС / МС. Количество эугленофицина в каждом образце определяли, сравнивая площадь пика иона m / z 110,2 со стандартной кривой, полученной анализом 1-50 нг / мкл очищенного эвгленофицина.Также определяли отношение площади пика квалифицирующего иона к количественному иону (97,2 / 110,2 и 136,2 / 110,2). Для каждой культуры продуцирование эвгленофицина было нормализовано по количеству клеток, чтобы учесть различия в плотности культур.

Филогенетический анализ использовался для оценки продукции токсинов в Euglenophyceae. Всего 30 видов были проанализированы на накопление токсинов путем сбора культур с поздней экспоненциальной стадией (центрифугирование при 1000 об / мин), как описано ранее (Zimba et al., 2016). Филогенетический анализ был выполнен с использованием последовательностей ДНК SSU рДНК (18S), доступных в GenBank.Последовательности сравнивали друг с другом и анализировали 1741 консервативный сайт между таксонами. Байесовский анализ был выполнен с помощью Mr. Bayes 3.2.3 (Ronquist and Huelsenbeck, 2003), с моделью (GTR + I + Γ) и априорными значениями, определенными с помощью jModeltest 2.1.3 (Darriba et al., 2012): Prset statefreqpr = dirichlet (0,2134,0,2894,0,2784,0,2188) shapepr = экспоненциальная (0,7430) pinvarpr = равномерная (0,1). Использовались четыре цепи Маркова по 1 000 000 поколений в каждой цепи, и деревья сохранялись каждые 100 поколений, а первые 2 000 деревьев отбрасывались.Дерево консенсуса большинства правил было создано из оставшихся деревьев, и сходимость была подтверждена с помощью команды «sump».

3. Результаты

Всего было приобретено / культивировано семь изолятов E. sanguinea ; однако один из изолятов Дании не выжил. Для всех штаммов среднее накопление токсина составило 57 фг эугленофицина / клетка (диапазон 1,8-397 фг / клетка-см). С момента начала мониторинга эвгленофицина в 2010 году в культурах снизилось производство токсинов примерно на 25% (данные не показаны).Отношение квалификатора к количеству ионов эвгленофицина в E. sanguinea составляло 0,257 (SD = 0,02) для ионов 136,2 / 110,2 и 0,859 (SD = 0,05) для ионов 97,2 / 110,2. Поскольку это первый вид, у которого была определена продукция токсина, эти соотношения использовались для скрининга других культур эвгленоидов на присутствие токсина, предполагая, что значения должны находиться в пределах 95% доверительной полосы и превышать 5 фг / клетку. Это значение было выбрано для определения штаммов, которые продуцировали правильную структуру и продуцировали токсин в достаточно большой концентрации, чтобы оказывать биологическое воздействие.Виды, продуцирующие> 5 фг / клетку эвгленофицина, включали отдельных представителей родов Lepocinclus, Trachelomonas, Stombomonas, , два вида — Euglenaria, и три вида — Euglena (включая sanguinea ) — см. Семь видов продуцировали эвгленофицин на уровне, превышающем 5 фг / клетку, в дополнение к E. sanguinea . Накопленный токсин варьировал от 1,8 до 39700 фг / клетку. Два таксона, Euglena socialis и E. sanguinea, накапливали эвгленофицин на уровнях в 100 и 1000 раз выше, чем у других Euglenaceae.Большинство таксонов, продуцирующих токсины, было обнаружено у Euglenaceae, но ни одного не было обнаружено у предков Eutreptiales или Phacaceae.

Накопление токсина в 7 штаммах Euglena sanguinea . Концентрация эвгленофицина, нормализованная на клеточную основу (фг / клетку). Значения представляют собой средние значения (n ≥ 3, указано стандартное отклонение.

Концентрация связанного с клетками эвгленофицина у видов, имеющих правильный квалификатор к количественному соотношению ионов. Концентрация эвгленофицина в фг / клетку (n> 3), указано стандартное отклонение.

4. Обсуждение

Это исследование следует рассматривать как оценку минимального содержания токсина для восьми таксонов, идентифицированных как накапливающие эвгленофицин (), поскольку растворенная фракция не была включена в оценки. Обычно менее 20% внутриклеточного токсина высвобождается внеклеточно в E. sanguinea до позднего экспоненциального / старения по сравнению с ранними экспоненциальными культурами (Zimba, pers. Obs.). Два основных токсин-продуцирующих вида эвгленоидов ( E. socialis и sanguinea ) накапливали в 100 и 1000 раз больше эвгленофицина, чем другие таксоны, с концентрациями, аналогичными диапазонам, указанным для таксонов, продуцирующих микроцистин (Vezie et al. al., 1998; Кардинаал и Виссер, 2005). Мы не разделили четыре потенциальных изомера этого соединения в положениях C2 и C6 — эти соединения, вероятно, имеют разную токсичность (см. Zimba et al. 2010).

Наше решение сообщать об уровнях токсина для каждой клетки имеет решающее значение для начала определения пороговых значений (юридических и биологических), связанных с токсичным цветением эвгленоидов, и для установления отношений между продуцирующими токсины организмами, специфичными для этой линии растений, которая в настоящее время не имеет специфического биомаркера, помогающего его идентифицировать ( e.g., диагностических каротиноидов или пути синтеза), проблема также обнаруживается при разделении других токсичных и нетоксичных штаммов (Jähnichen et al., 2008; Salmasco et al., 2014). Кроме того, использование нескольких соотношений ионов квалификатора к количественному определителю имеет решающее значение для обеспечения правильной идентификации токсина, как это наблюдается с помощью анализов ELISA микроцистина, идентифицирующих части молекулы микроцистина или при расщеплении микроцистина для измерения доли Adda для связанного токсина и предполагая максимальное токсичность изоформы наивысшей токсичности (Kurmayer et al., 2004). Поскольку для синтеза эвгленофицина потребуется ~ 11 согласованных шагов, включая синтез пиперидинового кольца и участие NPKS (, Zimba et al., 2010), мутации генов, ответственных за ферменты, необходимые для такого сложного пути синтеза, включающего образование полиенов и множественные изомеризации, могли бы объяснить широко распространенные потеря способности к синтезу токсинов.

Добавление эвгленофицина в геном эвгленоидов произошло спустя много времени после образования семейства Eutreptiaceae и полностью потеряно у Phacaceae ().Хотя ни один из таксонов Phacaceae не содержал токсина, почти каждый род Euglenaceae имеет хотя бы один таксон с присутствующим токсином. Единственными исключениями являются Euglenaformis Proxima и Colacium mucronatum . В обоих случаях роды бедны таксонами, и был измерен только один вид. Возможно, оба рода потеряли способность синтезировать это соединение. Euglenaformis также интересен тем, что он является базальным по отношению к остальным Euglenaceae и может указывать на то, что комплекс генов токсина был приобретен после отделения этого рода от остальных Euglenaceae.В остальном потеря способности к синтезу широко распространена среди Euglenaceae. Никаких оценок бесцветных эвгленоидов не проводилось, что указывает на необходимость дальнейшей филогенетической работы, чтобы более полно охарактеризовать выработку токсинов в этой загадочной группе микроводорослей.

Мы идентифицировали появление эвгленофицина во время цветения эвгленоидов, которые включали смешанные сообщества эвгленоидов ( E. sanguinea, E. deses, и Lepocinclus acus ). Цветение было обнаружено в 17 штатах США, причем цветение встречается в прудах, озерах, реках и эстуариях.Доля продукции токсина, относящаяся к каждому токсину, не была определена в этих случаях цветения, однако гибель рыб происходила в этих случаях цветения, когда концентрация растворенного эвгленофицина превышала 70 нг / мл. Эти уровни аналогичны уровням, впервые выявленным в случаях смертности полосатого окуня и сома в Северной и Южной Америке (Zimba et al. 2004).

Ранее обозреватели спрашивали, как могло случиться, что производство токсинов у Euglenophyceae не обнаруживалось в течение более 100 лет (Zimba et al.2010). После более чем 11-летней работы авторов по изучению полевых и лабораторных культур кажется вероятным, что чрезмерно обобщенное восприятие эвгленоидов как преимущественно планктонных привело к тому, что выработка токсинов бентосными популяциями была упущена. Клетки образуют покоящиеся временные цисты из-за потери жгутиков, а затем опускаются на поверхность осадка (Graham et al., 2016). Клетки могут активно расти на стадии пальмеллоида со скоростью, эквивалентной планктонным клеткам, в течение значительной части своей жизни, что свидетельствует о существовании тикопланктона (Zimba, unpubl.). Клетки теряют жгутики в турбулентных условиях (, например, ветреных дней, ливневые бури), что может быть аналогично результатам вихревых экспериментов с Heterosigma akashiwo (Durham et al.2013). Авторы наблюдали, как многочисленные цветки эвгленоид «исчезают» из планктона в результате потери жгутиков и опускания. Отсутствие уникальных химических биомаркеров и ограниченное количество уникальных методов визуальной идентификации цист также может помочь объяснить, почему случаи гибели рыб с участием эвгленоидов обычно не сообщаются.

Филогенетическое дерево исследованных таксонов эвгленофитов, сгруппированных по 18s подобию 1741 основания. Продукция токсина обозначена открытыми (нет) и закрытыми (положительными) кружками, указывающими на продукцию эвгленофицина. Звездочка обозначает присутствие токсина в кладе, X указывает на потерю этой способности.

Благодарности

Мы благодарим Герта Хансона, куратора Скандинавской коллекции культур водорослей и простейших, за предоставленные изоляты. Поддержка этой работы включает Морриса Дж.Медицинский фонд Лихтенштейна и NSF OCE-131358 и NIES 1 R01 ES21968-1 присуждены П.З.

Финансирующие спонсоры не играли никакой роли в разработке исследования; при сборе, анализе или интерпретации данных; в написании рукописи и в решении опубликовать результаты.

Сноски

Вклад авторов: P.Z. и Р. задумал и спланировал эксперименты; М.Б., И.Х., Д.Г. и П.З. провели эксперименты; Р.Т., П.З. и В.С.предоставленные материалы; П.З., Д.Г., М.Б., И.Х. написал / отредактировал статью.

Конфликт интересов: Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Заявление издателя: Это PDF-файл неотредактированной рукописи, принятой к публикации. В качестве услуги для наших клиентов мы предоставляем эту раннюю версию рукописи. Рукопись будет подвергнута копирайтингу, верстке и проверке полученного доказательства, прежде чем она будет опубликована в окончательной форме для цитирования.Обратите внимание, что во время производственного процесса могут быть обнаружены ошибки, которые могут повлиять на содержание, и все юридические оговорки, относящиеся к журналу, имеют отношение.

Ссылки

  • Adrouny GA, Derbes VJ, Jung RC. Выделение гемолитического компонента яда огненных муравьев. Наука. 1959; 21: 449–450. [PubMed] [Google Scholar]
  • Андерсен Р.А., редактор. Методы культивирования водорослей. Академическая пресса; Берлингтон, Сан-Диего: 2005. стр. 578. [Google Scholar]
  • Arroyo M, Heltai l, Millan D, DeSimone A.Обратный инжиниринг эвгленоидного движения. PNAS. 2012; 109: 17874–17879. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Burkholder JM, Glibert PM. Внутривидовая изменчивость: важное соображение при формировании обобщений о токсигенных видах водорослей. Африканский J Mar Sci. 2006; 28: 177–180. [Google Scholar]
  • Bachvaroff TR, Adolf JE, Place AR. Изменчивость штамма Karlodinium veneficum (Dinophyceae): профили токсинов, пигменты и характеристики роста. J Phycol.2009. 45: 137–153. [PubMed] [Google Scholar]
  • Полужирный шрифт HC, MacEntee FJSJ. Психологические заметки. II. Euglena myxocylindracea sp nov. J Phycol. 1973; 9: 152–156. [Google Scholar]
  • Blum MS, Walker JR, Callahan PS, Novak AK. Химические, инсектицидные и антибиотические свойства яда огненных муравьев. Наука. 1958; 128: 306–307. [PubMed] [Google Scholar]
  • Блюм М.С., Каллахан П.С.. Химические и биологические свойства яда завезенного огненного муравья ( Solenopsis saevissima var. richteri Forel) и выделение инсектицидного компонента. Материалы 11-го Международного конгресса энтомологов; Вена. 1960. С. 290–293. [Google Scholar]
  • Buetow DE, редактор. Общая биология и ультраструктура. Vol. 1. Академическая пресса; Нью-Йорк: 1968. Биология Euglena ; п. 364. [Google Scholar]
  • Хор I, редактор. Цианотоксины: появление вызывает последствия. Springer; Берлин: 2001. с. 357. [Google Scholar]
  • Ciugulea I., Triemer RE, editors.Цветной атлас фотосинтетических эвгленоидов. Издательство Мичиганского государственного университета; 2010. с. 204. [Google Scholar]
  • Дарриба Д., Табоада Г.Л., Доалло Р., Посада Д. jModelTest 2: больше моделей, новая эвристика и параллельные вычисления. Природные методы. 2012; 9: 772. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Доблин М.А., Блэкберн С.И., Халлеграфф Г.М. Внутривидовые вариации потребности в селене у разных географических штаммов токсичной динофлагелляты Gymnodinium catenatum .J Plank Res. 2000. 22: 421–432. [Google Scholar]
  • Дарем В.М., Климент Э., Барри М., Де Лилло Ф., Боффетта Дж., Ченчини М., Стокер Р. Турбулентность приводит в движение микромасштабные участки подвижного фитопланктона. Связь природы. 2013; 4: 2148. DOI: 10,1038 / ncomms3148. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Грэм Л. Е., Грэм Дж. М., Уилкокс Л. В., Кук МЭ. Водоросли. в третьих. LJLM Press; 2016. [Google Scholar]
  • Gutierrez D, Rafalski A, Moeller P, Beauchesne K, Zimba PV. Количественный масс-спектрометрический анализ и оценка стабильности эвгленоидного токсина эугленофицина после экстракции.Токсины. 2013; 5: 1587–1596. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Hashimoto Y, Okaichi G, Dang L, Noguchi T. Гленодинин, ихтиотоксическое вещество из Peridinium poliacum . Бык Япончик Социент Рыба. 1968; 34: 528–534. [Google Scholar]
  • Jähnichen S, Ihle T, Petzoldt T. Изменчивость квоты микроцистиновых клеток: небольшая модель объясняет динамику и равновесие. Limnologica. 2008. 38: 339–349. [Google Scholar]
  • Джувена Д.П., Блюм М.С., МакКоннелл Дж. Антибактериальная активность ядовитых алкалоидов импортного муравья, Solenopsis invicta Buren.Противомикробные агенты. 1972; гл. 2: 291–293. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Kardinaal WEA, Visser PM. Динамика цианобактериальных токсинов: источники изменчивости концентраций микроцистина. В: Huisman J, Matthijs HCP, Visser P, редакторы. Вредные цианобактерии. Springer; Берлин, Германия: 2005. С. 41–63. [Google Scholar]
  • Kingston MB. Влияние света на вертикальную миграцию и фотосинтез Euglenaxima (Euglenophyta) J Phycol. 1999a; 35: 245–253.[Google Scholar]
  • Kingston MB. Влияние волн на вертикальную миграцию двух донных микроводорослей: Hantzschia virgata var. intermedia и Euglenaxima . Эстуарии. 1999b; 22: 81–91. [Google Scholar]
  • Курмайер Р., Кристиансен Г., Фастнер И., Бёрнер Т. Обилие активных и неактивных генотипов микроцистина в популяциях токсичных цианобактерий Planktothrix spp. Environ Micro. 2004; 6: 831–841. [PubMed] [Google Scholar]
  • Манна С., Чаудхури К., Бхаттачарья С., Бхаттачарья М.Динамика экосистемы устья Сундарбана: эвтрофикация, вызванная угрозой для мангровых зарослей. Солевые системы. 2010; 6: 8. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Marshall HG, Burchardt L, Lacouture R. Обзор состава фитопланктона в Чесапикском заливе и его приливных устьях. J Plank Res. 2005. 27: 1083–1102. [Google Scholar]
  • Martins CA, Kulis D, Franca S, Anderson DM. Потеря продукции токсина PSP в ранее токсичном клоне Alexandrium lusitanicum . Токсикон.2004. 43: 195–205. [PubMed] [Google Scholar]
  • Рапала Дж. Докторская диссертация. Хельсинкский университет; 1998. Производство токсинов пресноводными цианобактериями: влияние факторов окружающей среды; п. 63. [Google Scholar]
  • Rengefors K, Legrand C. Токсичность для Peridinium aciculiferum — адаптивная стратегия, позволяющая победить другой зимний фитопланктон? Лимнол Океаног. 2001; 46: 1990–1997. [Google Scholar]
  • Ronquist F, Huelsenbeck JP. MrBayes3: байесовский филогенетический вывод в смешанных моделях.Биоинформатика. 2003; 19: 1572–1574. [PubMed] [Google Scholar]
  • Salmasco N, Copetti D, Cerasino L, Shams S, Capelli C, Boscaini A, Valsecchi L, Pozzoni F, Guzzella L. Изменчивость квоты клеток микроцистина в метапопуляциях Planktothrix rubescens : Причины и последствия для управления водными ресурсами. Токсикон. 2014; 90: 82–96. [PubMed] [Google Scholar]
  • Skelbred B, Horsberg TE, Tollefsen KE, Andersen T., Edvardsen B. Токсичность ихтиотоксичного морского жгутика Pseudochatenella (Dictyophyceae, Heterokonta) оценивалась с помощью шести биопроб.Вредные водоросли. 2011; 10: 144–154. [Google Scholar]
  • Смит Дж. Л., Бойер Г. Л., Зимба П. В.. Обзор цианобактериальных пахучих и биоактивных метаболитов: воздействия и альтернативы управления в аквакультуре. Аквакультура. 2008; 280: 5–20. [Google Scholar]
  • Ulitzer S, Shilo M. Механизм действия ихтиотоксина Prymnesium parvum . J из Protozool. 1966; 13: 332–336. [Google Scholar]
  • Utermöhl H. Zur Vervollkommnung der Quantitativen Phytoplankton-Methodik. Mitteilungen der Internationale Vereinigung für Theoretische und Angewandte Limnologie.1958; 9: 1–38. [Google Scholar]
  • Венрик Э.Л. Сколько ячеек подсчитать? В: Sournia A, редактор. Справочник по фитопланктону. ЮНЕСКО Пейдж Братья; Норвич, Англия: 1978. С. 167–180. [Google Scholar]
  • Вези К., Бриент Л., Сивонен К., Берту Дж., Лефевр Дж. К., Салкиноя-Салонен М. Изменение содержания микроцистина в цветках цианобактерий и изолированных штаммах в озере Гранд-Лье (Франция) Microb Ecol. 1998. 35: 126–135. [PubMed] [Google Scholar]
  • Wahome PG, Beauchesne KR, Pedone AC, Cavanagh J, Melander C, Zimba P, Moeller PDR.Дополнение противораковых натуральных продуктов низкомолекулярным адъювантом. Морские препараты. 2015; 13: 65–75. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Wołowski K. Phylum Euglenophyta. В: Джон Д.М., Уиттон Б.А., Брук А.Дж., редакторы. Пресноводная водорослевая флора Британских островов. Издательство Кембриджского университета; Кембридж, Англия: 2002. С. 144–179. [Google Scholar]
  • Ксавье М.Б., Майнардес-Пинто CSR, Такино М. Euglena sanguinea Цветение Эренберга в аквариуме для разведения рыб (Пиндамонхангаба, Сан-Паулу, Бразилия) Алгологические исследования.1991; 62: 133–142. [Google Scholar]
  • Zapomĕlova E, Hisem D, eháková K, Hrouzek P, Jezbervoá J, Komákova J, Korelusová J, Znachor P. Экспериментальное сравнение фенотипической пластичности и потребностей роста двух штаммов из Anabaena circinalis / A. crassa комплекс. J Plankton Res. 2008. 30: 1257–1269. [Google Scholar]
  • Зимба П.В., Роуман М., Тример Р. Идентификация эвгленоидных водорослей, продуцирующих ихтиотоксин (ы) J Болезни рыб. 2004. 27: 115–117. [PubMed] [Google Scholar]
  • Зимба П.В., Мёллер П.Д., Бошен КБ, Лейн Х.Э., Тример РЭ.Идентификация эвгленофицина-токсина, обнаруженного у некоторых эвгленоидов. Токсикон. 2010; 55: 100–104. [PubMed] [Google Scholar]
  • Зимба П.В., Орднер П., Гутьеррес Д. Селективная токсичность и ангиогенное ингибирование эугленофицином: роль в терапии рака? J Cancer Biol Treat. 2016; 3: 008. [Google Scholar]

Четырехтрансмембранный белок IP39 Euglena образует цепи с помощью повтора тримерной единицы

  • 1

    Van Itallie, C.M. & Anderson J.M. Claudins и эпителиальный межклеточный транспорт. Annu. Rev. Physiol. 68 , 403–429 (2006).

    CAS Статья Google ученый

  • 2

    Тейлор В., Велчер А. А., Програм, А. Э. и Сутер, У. Белок эпителиальной мембраны-1, белок периферического миелина 22 и белок мембраны хрусталика 20 определяют новое семейство генов. J. Biol. Chem. 270 , 28824–28833 (1995).

    CAS Статья Google ученый

  • 3

    Ван Италли, К.М. и Андерсон, Дж. М. Молекулярная физиология пор плотного соединения. Физиология 19 , 331–338 (2004).

    CAS Статья Google ученый

  • 4

    Notterpek, L. et al. Белок периферического миелина 22 является составной частью межклеточных контактов в эпителии. Proc. Natl Acad. Sci. США 98 , 14404–14409 (2001).

    CAS ОБЪЯВЛЕНИЯ Статья Google ученый

  • 5

    Серый, А.К., Джейкобс, М. Д., Гонен, Т., Кистлер, Дж. И Дональдсон, П. Дж. Введение MP20 в плазматические мембраны волоконных клеток хрусталика коррелирует с образованием барьера внеклеточной диффузии. Exp. Eye Res. 77 , 567–574 (2003).

    CAS Статья Google ученый

  • 6

    Furuse, M. & Tsukita, S. Claudins в окклюзионных соединениях человека и мух. Trends Cell Biol. 16 , 181–188 (2006).

    CAS Статья Google ученый

  • 7

    Martin, D.C. et al. Новые регуляторы высокоаффинной системы притока Ca2 + , выявленные с помощью полногеномного скрининга у дрожжей. J. Biol. Chem. 286 , 10744–10754 (2011).

    CAS Статья Google ученый

  • 8

    Tsukita, S., Furuse, M. & Itoh, M. Многофункциональные нити в плотных контактах. Nat. Rev. Mol. Клетка. Биол. 2 , 285–293 (2001).

    CAS Статья Google ученый

  • 9

    Mineta, K. et al. Прогнозируемое расширение мультигенного семейства клаудинов. FEBS Lett. 585 , 606–612 (2011).

    CAS Статья Google ученый

  • 10

    Furuse, M., Sasaki, H., Fujimoto, K. & Tsukita, S. Продукт одного гена, клаудин-1 или -2, восстанавливает нити плотного соединения и рекрутирует окклюдин в фибробласты. J. Cell Biol. 143 , 391–401 (1998).

    CAS Статья Google ученый

  • 11

    Ямадзаки Ю., Токумасу Р., Кимура Х. и Цукита С. Роль видоспецифической динамики клаудина в восстановлении и ремоделировании окклюзионной зоны. Мол. Биол. Клетка. 22 , 1495–1504 (2011).

    CAS Статья Google ученый

  • 12

    Гонен Т.и другие. Полиморфные ансамбли и кристаллические массивы линзового тетраспанина MP20. J. Mol. Биол. 376 , 380–392 (2008).

    CAS Статья Google ученый

  • 13

    Suemoto, Y., Takeuchi, K. & Suzaki, T. Два типа внутримембранных белков IP39 присутствуют в плазматической мембране Euglena gracilis. Jpn. J. Protozool. 41 , 58–60 (2008).

    Google ученый

  • 14

    Дюбрей, Р.Р., Розьер, Т. К., Рознер, М. К. и Бук, Г. Б. Свойства и топография основного интегрального белка плазматической мембраны одноклеточного организма. J. Cell Biol. 107 , 191–200 (1988).

    CAS Статья Google ученый

  • 15

    Розьер, Т. К., Маррс, Дж. А. и Бук, Г. Б. Белок плазматической мембраны массой 39 кДа (IP39) является якорем для необычного мембранного скелета Euglena gracilis. J. Cell Biol. 110 , 1077–1088 (1990).

    CAS Статья Google ученый

  • 16

    Dubreuil, R. & Bouck, G. B. Мембранный скелет одноклеточного организма состоит из соединенных перемычками, сочленяющихся полос. J. Cell Biol. 101 , 1884–1896 (1985).

    CAS Статья Google ученый

  • 17

    Vismara, R. et al. Ультраструктура пленки Euglena gracilis. Тканевая клетка. 32 , 451–456 (2000).

    CAS Статья Google ученый

  • 18

    Dubreuil, R. & Bouck, G. B. Взаимоотношения между плазматической мембраной, мембранным скелетом и поверхностью образуются в одноклеточном жгутиконосце. Протоплазма. 143 , 150–164 (1988).

    Артикул Google ученый

  • 19

    Фацио, М.Дж., Да Силва, А. С., Розьер, Т. К. и Бук, Г. Б. Мембранные скелетные белки и их интегральные якоря мембранных белков являются мишенями для тирозиновых и треониновых киназ в Euglena. J. Eukaryot. Microbiol. 42 , 570–580 (1995).

    CAS Статья Google ученый

  • 20

    Gyobu, N. et al. Улучшенная подготовка образцов для криоэлектронной микроскопии с использованием метода сэндвича с симметричным углеродом. Дж.Struct. Биол. 146 , 325–333 (2004).

    CAS Статья Google ученый

  • 21

    Мэтьюз, Б. У. Содержание растворителя в кристаллах белка. J. Mol. Биол. 33 , 491–497 (1968).

    CAS Статья Google ученый

  • 22

    Мурзин А.Г., Бреннер С.Э., Хаббард Т. и Чотиа К. SCOP: структурная классификация базы данных белков для исследования последовательностей и структур. J. Mol. Биол. 247 , 536–540 (1995).

    CAS Google ученый

  • 23

    Wriggers, W. Использование Situs для интеграции структур с разным разрешением. Biophys. Ред. 2 , 21–27 (2010).

    Артикул Google ученый

  • 24

    Домингес Р. и Холмс К. Структура и функции актина. Annu. Rev. Biophys. 40 , 169–186 (2011).

    CAS Статья Google ученый

  • 25

    Мурата Т., Ямато И., Какинума Ю., Лесли, А. Г. У. и Уокер, Дж. Э. Структура ротора Na + -АТФазы V-типа из Enterococcus hirae. Наука. 308 , 654–659 (2005).

    CAS ОБЪЯВЛЕНИЯ Статья Google ученый

  • 26

    Мюррей, Дж.М. Контроль формы клеток кальцием у евгленофиц. J. Cell Sci. 49 , 99–117 (1981).

    CAS PubMed Google ученый

  • 27

    Suzaki, T. & Williamson, R.E. Эвгленоидное движение Euglena fusca: свидетельство скольжения между тонкими полосками. Протоплазма. 124 , 137–146 (1985).

    Артикул Google ученый

  • 28

    Лидейл, Г.F. Строение пелликулов эвглены. Brit. Phycol. Бык. 2 , 291–306 (1964).

    Артикул Google ученый

  • 29

    Hofmann, C. & Bouck, G. B. Иммунологические и структурные доказательства структурированного инвагинального поверхностного роста в одноклеточном организме. Предполагаемая роль субмембранозных белков и микротрубочек. J. Cell Biol. 69 , 693–715 (1976).

    CAS Статья Google ученый

  • 30

    Suzaki, T.И Уильямсон, Р. Е. Смещение поверхности клетки во время движения эвгленоида и его компьютерное моделирование. Cell Motil. Цитоскелет. 6 , 186–192 (1986).

    Артикул Google ученый

  • 31

    Маррс, Дж. А. и Бук, Г. Б. Два основных мембранных скелетных белка (артикулины) Euglena gracilis определяют новый класс белков цитоскелета. J. Cell Biol. 118 , 1465–1475 (1992).

    CAS Статья Google ученый

  • 32

    Suzaki, T. и Williamson, R.E. Ультраструктура и скольжение пелликулярных структур во время эвгленоидного движения в Astasia longa pringsheim (Sarcomastigophora, Euglenida). J. Eukaryot. Microbiol. 33 , 179–184 (1986).

    Google ученый

  • 33

    Louis, C.F. et al. Идентификация белка размером 18 000 дальтон в мембранах клеточных волокон хрусталика млекопитающих. J. Biol. Chem. 264 , 19967–19973 (1989).

    CAS PubMed Google ученый

  • 34

    Тенбрук, Э., Арнесон, М., Джарвис, Л. и Луис, С. Распределение внутренних мембранных белков клеточного волокна MP20 и коннексина 46 в хрусталике крупного рогатого скота. J. Cell Sci. 103 , 245–257 (1992).

    CAS PubMed Google ученый

  • 35

    Корен, Л.E. & Hutner, S.H. Высокопроизводительные среды для фотосинтеза Euglena gracilis z. J. Protozool 14 , Приложение 17 (1967).

  • 36

    Fujiyoshi, Y. et al. Разработка столика на сверхтекучем гелии для электронной микроскопии высокого разрешения. Ультрамикроскопия 38 , 241–251 (1991).

    Артикул Google ученый

  • 37

    Кроутер, Р. А., Хендерсон, Р. и Смит, Дж.M. Программы обработки изображений MRC. J. Struct. Биол. 116 , 9–16 (1996).

    CAS Статья Google ученый

  • 38

    Хендерсон, Р., Болдуин, Дж. М., Даунинг, К. Х., Лепо, Дж. И Землин, Ф. Структура пурпурной мембраны из halobacterium halobium: запись, измерение и оценка электронных микрофотографий с разрешением 3,5 Å. Ультрамикроскопия 19 , 147–178 (1986).

    CAS Статья Google ученый

  • 39

    Тани, К., Sasabe, H. & Toyoshima, C. Набор компьютерных программ для определения расфокусировки и астигматизма на электронных изображениях. Ультрамикроскопия 65 , 31–44 (1996).

    CAS Статья Google ученый

  • 40

    Фернандес, Дж. Дж., Санджурджо, Дж. Р. и Каразо, Дж. М. Спектральный подход к определению передаточной функции контраста в электронной микроскопии. Ультрамикроскопия 68 , 267–295 (1997).

    Артикул Google ученый

  • 41

    Агард Д. А. Метод наименьших квадратов для определения структурных факторов в трехмерных реконструкциях с наклонным обзором. J. Mol. Биол. 167 , 849–852 (1983).

    CAS Статья Google ученый

  • 42

    Strong, M. et al. К структурной геномике комплексов: кристаллическая структура белкового комплекса PE / PPE из Mycobacterium tuberculosis. Proc. Natl Acad. Sci. СОЕДИНЕННЫЕ ШТАТЫ АМЕРИКИ. 103 , 8060–8065 (2006).

    CAS ОБЪЯВЛЕНИЯ Статья Google ученый

  • 43

    Хавелка, В. А., Хендерсон, Р., Эстерхелт, Д. Трехмерная структура галородопсина с разрешением 7 Å. J. Mol. Биол. 247 , 726–738 (1995).

    CAS PubMed Google ученый

  • 44

    Valpuesta, J.М., Карраскоса, Дж. Л. и Хендерсон, Р. Анализ изображений, полученных с помощью электронного микроскопа, и электронограмм тонких кристаллов соединителей Ø29 во льду. J. Mol. Биол. 240 , 281–287 (1994).

    CAS Статья Google ученый

  • 45

    Петтерсен, Э. Ф. и др. UCSF Chimera — система визуализации для поисковых исследований и анализа. J. Comput. Chem. 25 , 1605–1612 (2004).

    CAS Статья Google ученый

  • одноклеточные водоросли — Inanimate Life

    Эвглена — это род одноклеточных пресноводных организмов, которые очень распространены в прудах и небольших водоемах, особенно если они богаты питательными веществами и, следовательно, водорослями (также известными как «прудовая накипь»). Как указано ниже, Euglena сама иногда является фотосинтетической и является компонентом зеленого ила в таких прудах.Но в других случаях он не фотосинтетический и является компонентом разнообразной группы организмов, которые поедают зеленый ил или, возможно, поедают другие вещества, которые питаются этим зеленым отстоем.

    Таксономия и филогения

    Euglena относятся к небольшой группе (менее 1000 видов), о которой в прошлом заявляли как зоологи (потому что они подвижны, а некоторые — гетеротрофны), так и ботаники (потому что некоторые члены фотосинтезируют).Соответственно, зоологи иногда называют эту группу «Euglenozoa» («zoa» относится к животным), а ботаники — «Euglenophyta» («phyta» относится к растениям). В прошлом группа была помещена в Протистское Королевство. Недавние филогенетические исследования показали, что они очень рано расходятся с другими эукариотами и, следовательно, помещают их в очень небольшую группу, содержащую очень незнакомые одноклеточные организмы. Некоторые близкие родственники Euglena включают возбудителя сонной болезни и болезни Шагаса.Их таксономию усложняет тот факт, что некоторые в группе являются явно сложными организмами, являющимися продуктом вторичного эндосимбиоза, когда зеленые водоросли были съедены, но не переварены жгутиконосцами.

    Структура

    Эвглена — одноклеточный организм со сложной внутренней структурой, включающей сократительную вакуоль, способную выводить воду, и красное «пятно». Фотосинтетические формы содержат хлоропласт. У них есть два жгутика, один длинный и один короткий, которые позволяют организмам двигаться. Euglena также могут двигаться, изменяя свою форму (см. Ссылки на видео). За пределами клеточной мембраны находится гибкая структура на основе белка, называемая пленкой. Хотя обычно она не считается клеточной стенкой, она выполняет аналогичные функции по обеспечению некоторой жесткости и прочности, которые мембрана не может обеспечить. Однако пленка намного более гибкая, чем большинство клеточных стенок, и допускает изменение формы, которое часто наблюдается при движении Euglena .

    Репродукция

    Euglena размножается бесполым путем при делении клеток. Полового размножения внутри группы не обнаружено.

    Материя и энергия

    Иногда Эвглена — типичные фотоавтотрофы, использующие энергию солнечного света для синтеза углеводов из углекислого газа, а затем использующие углеводы в качестве источника энергии в клеточном дыхании и в качестве строительных материалов для синтеза различных биомолекул.Эвгленоиды хранят углеводы в другом полимере глюкозы, чем типичный крахмал — звенья глюкозы объединены в 1,3-связь, а не в 1,4-связь, обнаруженную в нормальном крахмале. Эвгленоиды также могут вести себя как гетеротрофы и приобретать материал при приеме внутрь (фагоцитоз) или путем абсорбции растворенных веществ из водной среды. Некоторые формы Euglena не имеют хлоропластов и являются исключительно гетеротрофными.

    Взаимодействия

    Эвглена может быть важным компонентом определенных водных сред и играть роль как основного продуцента, поедаемого другими организмами, так и разлагателя (гетеротрофа), который потребляет другие организмы и расщепляет их, или потребляет мертвые органические вещества. материал и ломает его.

    Определенные виды Euglena (например, Euglena sanguinea) могут окрашивать пруд в красный цвет, а также выделять токсины, убивающие рыбу.

    Euglena gracilis — эукариот, содержащий супероксиддисмутазу прокариотного типа и неконъюгированные птеридины

    Паур, Э., Ленгфельдер, Э. и Элстнер, Э. Ф .. «Euglena gracilis — эукариот, содержащий супероксиддисмутазу прокариотного типа и неконъюгированные птеридины». Эндосимбиоз и клеточная биология: синтез последних исследований. Труды Международного коллоквиума по эндосимбиозу и клеточным исследованиям, Тюбинген, апрель 1980 г. , под редакцией Хайнфрида Э. А. Шенка и Вернера Швеммлера, Берлин, Бостон: De Gruyter, 2021, стр. 335-346. https://doi.org/10.1515/9783111385068-032 Паур Э., Ленгфельдер Э. и Элстнер Э. (2021). Euglena gracilis — эукариот, содержащий супероксиддисмутазу прокариотного типа и неконъюгированные птеридины.В H. Schenk & W. Schwemmler (Ed.), Эндосимбиоз и клеточная биология: синтез последних исследований. Труды Международного коллоквиума по эндосимбиозу и клеточным исследованиям, Тюбинген, апрель 1980 г., (стр. 335-346). Берлин, Бостон: Де Грюйтер. https://doi.org/10.1515/9783111385068-032 Паур, Э., Ленгфельдер, Э. и Элстнер, Э. 2021. Euglena gracilis — эукариот, содержащий супероксиддисмутазу прокариотного типа и неконъюгированные птеридины. В: Шенк, Х.и Schwemmler, W. ed. Эндосимбиоз и клеточная биология: синтез последних исследований. Труды Международного коллоквиума по эндосимбиозу и клеточным исследованиям, Тюбинген, апрель 1980 г. . Берлин, Бостон: Де Грюйтер, стр. 335-346. https://doi.org/10.1515/9783111385068-032 Паур, Э., Ленгфельдер, Э. и Элстнер, Э. Ф. «Euglena gracilis — эукариот, содержащий супероксиддисмутазу прокариотного типа и неконъюгированные птеридины» В Эндосимбиоз и клеточная биология: синтез последних исследований.Труды Международного коллоквиума по эндосимбиозу и клеточным исследованиям, Тюбинген, апрель 1980 г. под редакцией Хайнфрида Э. А. Шенка и Вернера Швеммлера, 335-346. Берлин, Бостон: De Gruyter, 2021. https://doi.org/10.1515/9783111385068-032. Паур Э., Ленгфельдер Э., Элстнер Э. Euglena gracilis — эукариот, содержащий супероксиддисмутазу прокариотного типа и неконъюгированные птеридины. В: Schenk H, Schwemmler W (ed.) Эндосимбиоз и клеточная биология: синтез последних исследований.Труды Международного коллоквиума по эндосимбиозу и клеточным исследованиям, Тюбинген, апрель 1980 г. . Берлин, Бостон: Де Грюйтер; 2021. с.335-346. https://doi.org/10.1515/9783111385068-032

    Способность добавки эвглена-бета-глюкана для усиления иммунной функции — полный текст

    Во время скрининга потенциальному добровольцу будет передана форма информированного согласия. От них потребуют прочитать информацию и предоставить возможность запросить дополнительную информацию, если это необходимо, или предоставить возможность забрать форму согласия домой для проверки до принятия решения.В случае согласия волонтер подпишет форму согласия и получит дубликат подписанной копии. Как только согласие будет получено, скрининговый визит продолжится.

    Скрининговые оценки включают:

    1. Обзор истории болезни, сопутствующих методов лечения и текущего состояния здоровья (вес, рост, ИМТ, показатели жизненно важных функций, анализы крови)
    2. Оценивает критерии включения и исключения
    3. Тест на беременность для женщин, потенциальных участниц, не находящихся в постменопаузе

    Соответствующие критериям участники вернутся в клинику для оценки исходного состояния.Базовые оценки (день 0) включают:

    1. Обзор сопутствующей терапии и текущего состояния здоровья
    2. Обзор эмерджентных НЯ до приема добавок
    3. Пересмотреть критерии включения и исключения
    4. Рандомизация подходящих участников
    5. Ежедневно выдавать опросник по симптомам со стороны верхних дыхательных путей
    6. Забрать образец слюны для измерения секреторного IgA
    7. Забрать кровь для анализа активности клеток
    8. Проведение опроса о настроении и стрессе в клинике
    9. Ежедневно выдавать опросник для желудочно-кишечного тракта и кишечника
    10. Распределите исследуемый продукт и проинструктируйте участников по применению
    11. Дневник ежедневных исследований для выдачи лекарств

    В конце визита (день 90) участники вернутся в клинику для оценки посещения 3 с неиспользованным исследуемым продуктом, заполненными дневниками исследования, ежедневными опросниками симптомов, ежедневными желудочно-кишечными и кишечными дневниками.

    Оценка посещения 3 включает:

    1. Сборник всех дневников исследований
    2. Возврат неиспользованного исследуемого продукта и расчет соответствия
    3. Обзор сопутствующей терапии и нежелательных явлений
    4. Проверка состояния здоровья (жизненно важные показатели, ИМТ, анализы крови)
    5. Провести анкету о настроении и стрессе в клинике.
    6. Забрать образец слюны для измерения секреторного IgA в конце исследования.
    7. Полная анкета по переносимости и восприятию продукта

    Двумерное оптическое управление с обратной связью эвглены, заключенной в микрожидкостные каналы закрытого типа

    Двумерное управление оптической обратной связью

    Euglena , заключенного в микрожидкостные каналы закрытого типа

    Мы исследовали двумерный (2D) контроль оптической обратной связи фототаксиса клеток жгутика Euglena , заключенных в микрофлюидные каналы закрытого типа (микроаквариумы), и продемонстрировали, что двумерная оптическая обратная связь позволяет контролировать плотность и положение клеток Euglena . в микроаквариумах внешне, гибко и динамично.Используя три типа алгоритмов обратной связи, плотность ячеек Euglena в указанной области можно произвольно и динамически контролировать, и более 70% ячеек могут быть сконцентрированы в указанной области. Также было продемонстрировано разделение светочувствительных / нечувствительных клеток Euglena . Кроме того, был достигнут нейрокомпьютер на основе Euglena , где 16 воображаемых нейронов были определены как уровни активности Euglena в 16 отдельных областях в микроаквариумах.Исследование доказывает, что двумерный оптический контроль с обратной связью фотореактивных жгутиковых микробов является многообещающим для исследований микробной биологии, а также для таких приложений, как перенос микробных частиц в микрожидкостных каналах или разделение фоточувствительных / нечувствительных микробов.

    У вас есть доступ к этой статье

    Подождите, пока мы загрузим ваш контент.

    Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *