Инфузория питается как: Как питается инфузория туфелька ???

Кто и как рисует инфузорию-туфельку? Инфузория-туфелька в картинках, микро фото и мини-видео. Разведение инфузорий

Об усилении разнообразия живого мира силами искусства или «О, сколько нам открытий чудных готовит просвещенья дух…« Ещё со школьных уроков биологии многие наверное помнят некого не то зверька, не то травку, каким-то туманным образом, — то ли повадками, то ли размерами, — связанное с предметом женского гардероба… Более памятливые расскажут, что это — животное, причём «проходили в самом начале», т.е. из простейших. Кто-то даже припомнит, что «простейшие» означает одноклеточные. На самом деле не совсем так, ну да ладно… Я здесь добавлю: инфузории — не просто образец совершенства элементарной ячейки жизни. Ведь, в принципе, всё, что живёт (питается, размножается, занимает экологические ниши) — уже совершенный, самодостаточный субъект (ибо, хотя кому-то и может показаться несовершенством повышенная уязвимость, но абсолютно все участвующие в круговороте белковых веществ (то есть в жизни) живые организмы, в том числе и мы с Вами, — суть продукт ЕО (естественного отбора), т.е. своеобразные пределы совершенства в своей ветви развития на настоящий момент. Инфузории же — образец, если можно так выразиться, пример «излишнего» совершенства среди простейших и упоминаются в курсе биологии за удивительную для такого примитивного организма сложность устройства. Всего одна клетка, именуемая инфузорией, включает большое число органелл (про многоклеточных мы сказали бы «органов») с максимальным для одноклеточных разделением труда. Здесь и далее обсуждается самый дидактически избитый персонаж — Г-жа Инфузория-Туфелька, знакомьтесь! Иллюстрация из школьного учебника биологии представляет собой схему строения инфузории-туфельки (Paramaecium caudatum), копируемую из учебника в учебник на протяжении десятилетий с оригинала, построенного когда-то давно по мотивам снимков, сделанных, будем надеяться, на довольно мощном микроскопе. Более того, для определения пищеварительного цикла с порошицей (см. схему) необходимо не только хорошее разрешение аппаратуры, но и качественная микровидеосъёмка, поскольку передвигается туфелька очень быстро (до десяти своих длин в секунду!). Здесь и далее Вы можете посмотреть снимки, сделанные в домашних условиях на гораздо более скромном оборудовании. Не бог весть что, но я постарался дать представление об этом звере, по крайней мере, о его скоростях :). посмотреть GIF, 442×442 в отдельном окне (1,3(!) Мб — придётся подождать 🙂   Однако с «портретами» нашей инфузории, претендующими на бóльшую реальность всё не так гладко. Разные художники видят её по-своему. Причина этого, на мой взгляд, в том, что мало кто из них знакомился с инфузорией очно. И, в расчёте на такого же несведущего читателя, просто перерисовывали её из других книг. Разнообразие представлений художников об инфузории-туфельке представлено в следующей таблице: От пытливого взгляда не может ускользнуть необычайная фантазия анималистов, коверкающих бедную инфузорию, передирая её образы из работ коллег по цеху со своими «авторскими» добавлениями. Лишь первый рисунок в таблице выдаёт тщательную «микроскопическую» подготовку художника. Трудно сказать, смотрел ли он предварительно в микроскоп, или внимательно ознакомился и синтезировал все версии коллег по цеху, но его стремление приблизиться к истине — налицо 🙂 Помимо бумажных источников, я ознакомился с положением дел в Сети. Ситуация оказалась почти аналогичной, за исключением единственной правдивой фотографии (почему-то синей :), представленной в следующей таблице так же первой. Вторая (тоже синяя) — не совсем фантастическая иллюстрация с намёком на фотографию умирающей от высыхания инфузории (живую инфузорию очень трудно «поймать» в кадр, а при подсыхании они становятся малоподвижными и более округлыми — см. вкладку) с англоязычного сайта — единственного представителя своего языкового семейства, ибо на прочих «забугорных» ресурсах с иллюстрациями крайне слабовато, как по теме, так и по общему дизайну. Да и тексты там не блещут разнообразием. Откровенный плагиат блещет многократным повторением набора заблуждений, но об этом ещё будет далее, когда придётся коснуться разведения инфузорий. Вот и спрашивается — кому верить? 😉   Несколько фотографий из жизни инфузории-туфельки Ну и чем же так хороша инфузория-туфелька, раз ей столько уж уделяется внимания? — спросите Вы, особенно если набрели на этот сайт случайно. Ну что ж, в первую очередь она безусловно хороша сама по себе 😉 То есть вот — биологический вид живёт, то есть питается и размножается делением. Считать ли деление клетки её исчезновением, то есть погибелью оригинала — вопрос философский, и его хорошо разобрал Фрейд (правда, так и не ответил ;))… а подробнее я написал об этом отдельно). Во-вторых, инфузория — прекрасный дидактический материал, то есть прекрасный образец практически предельной усложнённости одноклеточного организма, достойный своим изяществом кочевать из учебника в учебник. Но это для удовлетворения любопытства интересно, страсти, так сказать, познания. А что она в природе-то делает?
Место инфузорий в пищевой цепочке Вот мы и добрались до роли инфузорий в природе, то есть для каждого из живых существ, независимо от наличия или отсутствия любознательности. В водном царстве инфузория-туфелька практически является переходом пищевой цепочки (т.е. передачи солнечной энергии) из царства простейших к многоклеточным организмам (обратный переход, от останков любого зверя или травки происходит практически в самый логический низ, к бактериям). Инфузория-туфелька питается простейшими и является стартовым (на первые часы и дни жизни) кормом для личинок многих рыб и амфибий, для чего интенсивно культивируется в рыборазводных хозяйствах и в аквариумистике. Как же увидеть этого ветерана начального образования и просто милого зверя?
Разведение инфузории-туфельки Насладиться созерцанием инфузории-туфельки (как было уже замечено, её присутствие видно и невооружённому глазу, но всякое вооружение будет только кстати 🙂 совершенно нетрудно в домашних условиях. Ибо вопреки расхожей отечественной инструкции по замачиванию банановых корок, и уж тем более иностранной идее с «зелёной водой» («green water»), особенно тиражируемой на англоязычных страницах, проще, экологичнее и эффективнее разводить инфузорию просто на кусочке моркови. Морковь довольно долго не «портится» в воде (то есть не так быстро разлагается бактериями), что желательно для удобства эксперимента — вода некоторое время остаётся довольно прозрачной и дело обходится без плесени. Кусочек моркови (из расчёта не более 1 г на литр) помещается в банку с водой и ставится в тёмное тёплое (+22-26oC) место. Обычно уже через пару суток, взяв пробу «мути», окружающей морковь, под микроскопом можно обнаружить инфузорий. Ещё через некоторое время, когда растворённый в воде кислород практически иссякнет, инфузории окажутся самой заметной составляющей приповерхностного слоя и станут видны невооружённым глазом в виде клубящихся скоплений белых точек (продолговатой формы), хаотично движущихся в толще воды. Другой способ концентрирования инфузорий — использование положительного фототаксиса (стремления к свету): закрыв основную часть сосуда тёмным материалом, оставить небольшой просвет у поверхности воды. Наблюдать и отбирать пипеткой собравшихся там через некоторое время инфузорий значительно удобнее (кстати если воспользоваться не совсем безнадёжной «зелёной водой», то у выращенных инфузорий фототаксис будет отрицательным — собираться они будут в самом тёмном месте. Типичная наблюдаемая картина изображена на фотографии: внизу аквариумный ил, крупные объекты переднего и заднего плана — красные катушки (улитки размером от одного до полутора сантиметров), белая «муть», заполняющая объём — собственно инфузории. Воду для экcперимента чаще всего можно просто набрать «из-под крана», так как водопроводная вода не всегда хорошо дезинфицируется 😉 Если же есть горячее желание, то богаче на «улов» окажется вода из природного водоёма, хотя бы и из лесной лужи. В этом случае высока вероятность того, что в культивируемой жидкости Вы обнаружите больше интересного, в частности удивительных самых маленьких многоклеточных — коловраток, микрофотографии которых можно найти на следующей странице. Для тех же, кто осчастливлен наличием в доме аквариума, ситуация с наблюдением инфузории-туфельки существенно упрощается, ибо тогда она у Вас есть автоматически (по умолчанию 😉 Просто после знакомой аквариумистам процедуры очистки дна сифоном не торопитесь выливать собранный со дна ил, а поместите его в банку (желательно высокую и узкую) с небольшим количеством воды и дайте отстояться час-другой. Сначала инфузории будут собираться над поверхностью ила в виде белого тумана, а по мере снижения концентрации кислорода мигрировать в верхние слои воды (как на фото). Eщё по теме:

Инфузория туфелька по способу питания является. Инфузория-туфелька. Класс инфузории, тип простейшие. Природная среда обитания и не только

Типичным представителем класса ресничных инфузорий является инфузория туфелька или парамеция (Рагаmaecium caudatum; рис. 1)

Строение и размножение инфузории туфельки

Инфузория туфелька обитает в мелких стоячих водоемах. Формой тeлa она напоминает подошву туфли, в длину достигает 0,1-0,3 мм, покрыта прочной эластичной оболочкой — пелликулой, под которой в экто- и эндоплазме находятся скелетные опорные нити. Такое строение позволяет инфузории сохранять постоянную форму тела.

Органоиды движения — волосовидные реснички (у инфузории туфельки их 10-15 тыс.), покрывающие все тело. При исследовании ресничек с помощью электронного микроскопа выяснено, что каждая из них состоит из нескольких (около 11) волоконец. В основе каждой реснички лежит базальное тельце, расположенное в прозрачной эктоплазме. Туфелька быстро передвигается благодаря согласованной работе ресничек, которые загребают воду.

В цитоплазме инфузории отчетливо различаются эктоплазма и эндоплазма. В эктоплазме, между основаниями ресничек парамеции, располагаются органеллы нападения и защиты — маленькие веретеновидные тельца — трихоцисты. На фотографиях, сделанных с помощью электронного микроскопа, видно, что выброшенные трихоцисты снабжены гвоздеобразными наконечниками. При раздражении трихоцисты выбрасываются наружу, превращаясь в длинную, упругую нить, поражающие врага или добычу.

В эндоплазме располагаются — два ядра (большое и малое) и системы пищеварительных, а также выделительных органоидов.

Органоиды питания . На так называемой брюшной стороне находится предротовое углубление — перистом, ведущее в клеточный рот, который переходит в глотку (цитофаринкс), открывающуюся в эндоплазму. Вода с бактериями и одноклеточными водорослями, которыми питается инфузория, через рот и глотку загоняется особой группой ресничек перистома в эндоплазму, где окружается пищеварительной вакуолью. Последняя постепенно передвигается вдоль тела инфузории. По мере передвижения вакуоли заглоченные бактерии перевариваются в течение часа, вначале при кислой, а затем при щелочной реакции. Непереваренный остаток выбрасывается наружу через специальное отверстие в эктоплазме — порошицу, или анальную пору.

Органоиды осморегуляции . На переднем и заднем концах тела на границе экто- и эндоплазмы находится по одной пульсирующей вакуоли (центральный резервуар), вокруг которой расположены венчиком 5-7 приводящих канальцев. Вакуоль наполняется жидкостью из этих приводящих каналов, после чего наполненная жидкостью вакуоль (фаза диастолы) сокращается, изливает жидкость через маленькое отверстие наружу и спадается (фаза систолы). Вслед за этим жидкость, вновь наполнившая приводящие каналы, изливается в вакуоль. Передняя и задняя вакуоли сокращаются попеременно. Пульсирующие вакуоли выполняют двоякую функцию — отдачу излишней воды, что необходимо для поддержания постоянного осмотического давления в теле парамеции, и выделение продуктов диссимиляции.

Ядерный аппарат туфельки

представлен по меньшей мере двумя качественно различными ядрами, расположенными в эндоплазме. Форма ядер обычно овальная.

• Крупное вегетативное ядро называется макронуклеусом. В нем происходит транскрипция — синтез на матрицах ДНК информационной и других форм РНК, которые уходят в цитоплазму, где на рибосомах осуществляется синтез белка.
• Мелкое генеративное — микронуклеус. Расположен рядом с макронуклеусом. В нем перед каждым делением происходит удвоение числа хромосом, поэтому микронуклеус рассматривают как «депо» наследственной информации, передаваемой из поколения в поколение.

Инфузория-туфелька размножается как бесполым, так и половым путем.

• При бесполом размножении клетка перешнуровывается пополам по экватору и размножение осуществляется путем поперечного деления. Это предшествует митотическое деление малого ядра и характерные для митоза процессы в большом ядре.

  После многократного бесполого размножения в жизненном цикле происходит половой процесс, или конъюгация.
• Половой процесс заключается во временном соединении двух особей ротовыми отверстиями и обмене частями их ядерного аппарата с небольшим количеством цитоплазмы. Большие ядра при этом распадаются на части и постепенно растворяются в цитоплазме. Малые ядра сначала делятся дважды, происходит редукция числа хромосом, далее три из четырех ядер разрушаются и растворяются в цитоплазме, а четвертое снова делится. В результате этого деления образуются два гаплоидных половых ядра. Одно из них — мигрирующее, или мужское, — переходит в соседнюю особь и сливается с оставшимся в нем женским (стационарным) ядром. Такой же процесс происходит и в другом конъюганте. После слияния мужского и женского ядер восстанавливается диплоидный набор хромосом и инфузории расходятся. После чего в каждой инфузории новое ядро делится на две неравные части, вследствие чего формируется нормальный ядерный аппарат — большое и малое ядра.

  Конъюгация не приводит к увеличению числа особей. Ее биологическая сущность состоит в периодической реорганизации ядерного аппарата, его обновлении и повышении жизнеспособности инфузории, приспособленности ее к окружающей среде.

Туфелька и некоторые другие свободноживущие инфузории питаются бактериями и водорослями. В свою очередь, инфузории служат пищей для мальков рыб и многих беспозвоночных животных. Иногда туфелек разводят для корма только что вылупившихся из икринок мальков рыб.

Значение инфузорий

Балантидий (Balantidium coli)

Локализация . Толстый кишечник.

Географическое распространение . Повсеместно.

Сократительных вакуолей две. Макронуклеус имеет бобовидную или палочковидную форму. Около его вогнутой поверхности лежит округлый микронуклеус (рис. 2). Размножается поперечным делением и путем конъюгации. Цисты овальной или шаровидной формы (50-60 мкм в диаметре).

Основным резервуаром балантидиаза считаются домашние и дикие свиньи. В некоторых хозяйствах зараженность достигает 100%.

В кишечнике животных балантидии легко инцистируются, в то время как в организме человека цисты образуются в сравнительно небольшом количестве. Животные выделяют цисты с фекалиями и загрязняют окружающую среду. Работники свиноферм могут заражаться при уходе за животными, уборке помещений для скота и т. д. Зараженность работников этой категории по сравнению с другими специальностями значительно выше. Цисты в фекалиях свиней сохраняются несколько недель. Вегетативные формы при комнатной температуре живут 2-3 дня.

Заражение происходит через загрязненные овощи, фрукты, грязные руки, некипяченую воду.

Патогенное действие . Образование кровоточащих язв в стенке кишечника, кровавый понос. Без лечения смертельный исход достигает 30%.

Лабораторная диагностика . Обнаружение в фекалиях вегетативных форм или цист.

Профилактика : соблюдение правил личной гигиены имеет основное значение; общественная — борьба с загрязнением средьи фекалиями свиней, а также людей, соответствующая организация условий труда на свиноводческих фермах, своевременное выявление и лечение больных.

Инфузория-туфелька — это одноклеточное животное, относящееся к подцарству Простейшие (Protozoa), типу Инфузории, или Ресничные (Ciliophora).

Среда обитания и строение инфузории-туфельки

Инфузория туфелька обитает в небольших пресных водоемах с загрязненной, застоявшейся водой — в прудах, канавах, лужах, то есть там же, где обитают и другие простейшие — амеба и эвглена зеленая. Она постоянно находится в движении, плавая в поисках пищи. Передвигаться в воде ей помогают специальные органы движения — реснички, которые покрывают все ее вытянутое, похожее на туфельку, тело. Ресничек у инфузории около 15 тысяч, в основании каждой реснички лежит базальное тельце. Реснички колеблются синхронно, примерно 30 раз в одну секунду, напоминая весла лодки.

Благодаря согласованной работе ресничек инфузория-туфелька плывет со скоростью до 2,5 мм в секунду, одновременно вращаясь вокруг продольной оси. Если учесть, что размер инфузории всего 0,5 мм, это довольно высокая скорость. На замедленной съемке видно, что движение каждой реснички состоит из резкого взмаха в одном направлении и более плавного возвращения назад.

Сохранять форму инфузории туфельке помогает эластичная оболочка, а также опорные волоконца, располагающиеся в прилегающем к оболочке слое цитоплазмы. Кроме того, под оболочкой у инфузории туфельки имеются специальные органы защиты — трихоциты. Трихоциты — это упругие длинные нити, сжатые до состояния коротких палочек и расположенные перпендикулярно поверхности тела инфузории. Если на инфузорию нападают, трихоциты резко расправляются и «выстреливают» в сторону нападения. На месте использованных трихоцитов образуются новые.

Еще один отличительный признак инфузории-туфельки — это наличие у нее двух ядер: большого и маленького. Большое ядро отвечает за питание, дыхание, обмен веществ, а также за движения. Малое ядро участвует в половом размножении инфузории-туфельки.

У инфузории-туфельки имеется также клеточный рот, две сократительные вакуоли на переднем и заднем концах тела и пищеварительные вакуоли.

Питание инфузории-туфельки

У инфузории так же, как и у эвглены зеленой, имеется клеточный рот — углубление в цитоплазме. Однако у инфузории-туфельки он покрыт длинными толстыми ресничками, которые, колеблясь, загоняют в клеточный рот бактерии — основную пищу инфузории — и переходит в глотку, на дне которой образуется пищеварительная вакуоль. Пища переваривается в пищеварительной вакуоли сначала в кислой среде, а затем в щелочной. Пищеварительная вакуоль перемещается по цитоплазме и открывается наружу у заднего конца тела, выбрасывая непереваренные частицы пищи наружу. Инфузория-туфелька способна улавливать в воде химические вещества, которые выделяют скопления бактерий, и плывет по направлению к ним.

Выделение

Функцию органов выделения у инфузории туфельки так же, как и у других простейших выполняют сократительные вакуоли. У инфузории-туфельки имеется две сократительные вакуоли — у переднего и заднего конца тела. Каждая сократительная вакуоль состоит из центрального резервуара и 5-7 канальцев, направленных к нему. Вредные вещества и продукты обмена в растворенном виде сначала попадают в канальцы, а затем собираются в центральном резервуаре и выталкиваются наружу. Весь цикл накопления и удаления продуктов обмена, а также избытка воды происходит с частотой один раз примерно за 10-20 секунд.

Дыхание

Инфузория-туфелька дышит кислородом, растворенным в воде. Так же, как у других простейших, кислород поступает внутрь через всю поверхность тела.

Размножение

Размножаются инфузории-туфельки бесполым путем — с помощью деления клетки надвое. Сначала делятся ядра, затем образуется поперечная перемычка, разделяющая тело инфузории на две части, в каждой из которых оказывается по 1 большому и 1 маленькому ядру. По перемычке инфузория делится на 2 части. Каждая из дочерних инфузорий получает часть органоидов, а недостающие органоиды, например, сократительные вакуоли, возникают заново.

Деление у инфузории происходит 1-2 раза в сутки.

Время от времени у инфузорий происходит конъюгация. Это половой процесс, при котором количество особей не увеличивается, но происходит обмен генетической информацией. Появляющиеся при конъюгации новые сочетания генов способствуют возникновению и отбору более жизнестойких форм организмов.

Половой процесс заключается в следующей последовательности событий:

Сначала две инфузории сближаются и соприкасаются друг с другом, в месте соприкосновения их оболочки растворяются, и возникает цитоплазматический мостик. Большие ядра у инфузорий исчезают. Малые ядра делятся дважды, при этом образуется по 4 дочерних ядра. 3 из них разрушаются, а четвертые ядра делятся еще раз, и в результате у каждой инфузории образуется по 2 ядра. Одно ядро — женское, неподвижное. А второе — мужское, подвижное. Мужские ядра по цитоплазматическому мостику переходят к другой инфузории. Далее малые ядра у каждой инфузории вновь соединяются. Вновь возникают большие ядра, цитоплазматический мостик исчезает, и инфузории расходятся.

После конъюгации инфузории усиленно делятся бесполым путем.

Инфузория туфелька — фото, содержание, разведение

Дата: 2011-09-12

Инфузория туфелька является прекрасным кормом для мальков аквариумных рыб. Без инфузории вам не обойтись, если вы решили заняться разведением аквариумных рыб. Новорожденных иждивенцев вам придется выкармливать самым, что ни на есть мелким кормом. Летом бывалые аквариумисты посоветуют такой корм поискать в ближайшем водоеме, взяв .

Но, к сожалению, нынешнее состояние экологии в промышленных центрах почти что гарантированно предопределит неудачу подобного времяпровождения. В черте крупных городов все давно и безвозвратно отравлено и если даже не вымерло, то вряд ли пригодно для прокорма нежной молоди. Недаром специалисты аквариумного разведения едва ли не сутками гоняют на собственных автомобилях по дальнему Подмосковью в поисках «живой» лужи. Разумеется, я вам посоветую кое-что попроще.

Фото Инфузория — туфелька

Как-то пришел ко мне соседский мальчик посмотреть на рыбок в аквариуме, а заодно рассказал историю, которая произошла у них в классе. Преподаватель дал задание нарисовать обитателей другой планеты, существ иной цивилизации. В итоге ни у кого ничего оригинального не получилось, но наставник не был огорчен. Он просто лишний раз убедился, что выполняя подобные задания, дети используют в своем творчестве характерные образы тех или иных земных животных. Человеческая и даже детская фантазия не может родить существо, решительным образом отличающееся от земного. Эта школьная задача могла бы быть решена более успешно, если бы испытуемые были знакомы с миром Протозоологии.

Обитателей этого мира невооруженным глазом не рассмотреть, в лучшем случае можно заметить в воде какие-то мельчайшие беловатые соринки, крохотные точки, воспринимаемые как муть. Большинство людей об этих существах знают только то, что они чрезвычайно малы. А вот для аквариумиста они могут иметь практический интерес.

На Земле существует сонм простейших организмов, которые представляют собой одну-единственную живую клетку. В их числе и инфузории. Размеры этих животных очень малы и колеблются от нескольких микрон до 2 миллиметров, так что почти с полной уверенностью их можно отнести к миру невидимок. Ученые насчитывают более 6000 видов инфузорий, и скорее всего, далеко не всех еще удалось идентифицировать и найти им место в зоологической номенклатуре.

Надо сознаться, что многие стороны биологии инфузорий для людей остаются загадкой. Исследование осложняется их малыми размерами и тем. что содержание и размножение подавляющего большинства одноклеточных «в неволе» пока еще не освоено.

Как они выглядят? Это выходцы из другого мира. Вы не найдете у них головы и хвоста, хотя понятие «перед-зад» для них существует. Нет ножек, лапок, плавников, крылышек, глаз, ушей. Не имеют они и голоса.

Отсутствуют сердце, легкие, печень, почки, кишечник и т.д. Нет нервной системы и половых органов в том виде, какой характерен для зверей, птиц, рыб и рептилий. А хоть что-нибудь, близкое людским понятиям, привычное нашему глазу, есть? Только рот и дефекационное устройство (порошица), да и то не у всех, кое-кто из них питается вообще всем телом.

Однако инфузории живут и процветают и все биологические проблемы решают своими, часто непонятными нам приемами. Нас, аквариумистов, интересует главным образом одна из наиболее крупных представительниц этого класса, а именно известная всем еще со школьной скамьи инфузория-туфелька — Paramecium caudatum. На ее примере я коротко и расскажу, что это за животное такое -инфузория.

Свое народное название туфелька эта инфузория получила за некоторое сходство с формой следа туфли. Её обтекаемые обводы — результат приспособления к водному образу жизни. Размер взрослой особи достигает 0,3 миллиметра. Одноклеточное тело покрыто многослойной структурированной оболочкой, достаточно прочной и эластичной.

Может передвигаться со скоростью до 2.5 мм/сек, покрывая за это время расстояние, в 10 раз превышающее длину ее собственного тела. Она очень ловко маневрирует, мгновенно изменяет направление движения, может плыть задом наперед. Вся поверхность инфузории покрыта ресничками, согласованные гребные движения которых и обеспечивают подвижность животного.

На всех изображениях туфельки можно видеть некий внутренний звездообразный орган. Это так называемая сократительная вакуоль с расположенными вокруг нее ампулами. Основное назначение этого устройства -откачка постоянно поступающей через оболочку жидкости. Концентрация растворенных веществ в теле туфельки выше, чем в окружающей среде, поэтому из-за разности осмотического давления вода устремляется внутрь и, если ее не откачивать, инфузория просто лопнет.

Жидкость сначала наполняет ампулы, которые в какой-то момент опорожняются в сократительную вакуоль, раздувающуюся в пузырек. Затем по специальной протоке вода выбрасывается наружу. У туфельки две сократительные вакуоли, они пульсируют поочередно с частотой один раз в 20-25 секунд. Предполагается, что с помощью этого устройства туфелька также регулирует свой ионный состав, избавляясь, в частности, от излишков ионов натрия. Возможно, что этот водо-обмен имеет и дыхательные функции.

Внутри инфузории в специальных вакуолях (пузырьках) обнаруживаются кристаллы, состоящие в основном из солей кальция и фосфора, в меньших количествах в них встречаются магний, хлор и органические компоненты. Предназначение этих образований загадочно.

Чем питается инфузория туфелька

Инфузория-туфелька питается главным образом бактериями, а также дрожжевыми грибками, водорослями, растворенными белковыми веществами и пр. Рот у нее находится на боку, в углублении в конце специального желоба, проходящего вдоль передней части тела.

Реснички интенсивно гонят воду вместе с пищей к ротовому отверстию. Затем собравшиеся частицы заключаются в специальную пищеварительную вакуоль — маленькую замкнутую емкость (пузырек) с пищеварительными ферментами, которая отделяется от «глотки» и некоторое время циркулирует внутри инфузории по определенному маршруту, распределяя по клетке пригодные для использования элементы.

При обилии еды пищевые вакуоли могут образовываться с интервалом в 1,5-2 минуты, что говорит о высокой интенсивности пищеварения. Несколько вакуолей с не переваренными остатками сливаются, подходят к порошице и выводятся наружу.

Можно предполагать, что поедая бактерий инфузории осуществляют своеобразную дезинфекцию воды. Примечательно еще и то, что хотя туфелька и обладает способностью различать корма, она не может не глотать любые частицы, загнанные ресничками в глотку.

Поэтому в ее «желудке» наряду с бактериями (полезная пища) оказываются мельчайшие частицы краски (кармин, уголь), пластика или металла (опилки) и т.д. Эта особенность помогает изучать в лабораторных условиях некоторые жизненные процессы инфузории. Проглоченные несъедобные вещества выбрасываются наружу заметно быстрее полезных.

Как размножается инфузория туфелька

При хорошем питании и оптимальных условиях среды инфузория-туфелька размножается очень быстро. А.Микулин в брошюре «Живые корма» (Москва, «Дельфин», 1994) сообщает, что для достижения максимально возможной концентрации туфельки в 40 тысяч экземпляров на кубический сантиметр воды от одной единственной особи требуется меньше месяца. Туфелька использует два способа размножения: бесполый и половой.

При бесполом способе инфузория размножается путем поперечного деления тела надвое. Это происходит 1-2 раза в сутки. В общих чертах процесс выглядит следующим образом. Инфузория-туфелька несет в своем теле два ядра — большое и малое.

Большое ядро ответственно за правильность обмена веществ в клетке, малое — носитель наследственной информации. Перед делением набор хромосом в ядрах удваивается, и при разделении каждая дочерняя особь получает свой комплект из двух ядер. У них также заново образуются все остальные органы. На деление уходит от 30 минут до 2-3 часов в зависимости от температуры окружающей среды.

Половое размножение связано с временным соединением двух особей (самцов и самок у туфельки нет). Инфузории прикладываются друг к другу сторонами, где расположены ротовые отверстия. В этом месте часть оболочки растворяется и клетки соединяются плазматическим мостиком. В таком состоянии туфельки плавают около 12 часов.

Фото Инфузория — туфелька

За это время в теле обеих инфузорий происходит ряд изменений. Большие ядра в половом процессе не участвуют и, более того, распадаются и растворяются в плазме. А вот малые проходят через цепь сложных изменений и в конце концов удваиваются. Одно из новых ядер остается на старом месте, а второе через плазменный мостик переходит в соседнюю клетку и там сливается с другим, «чужим» ядром, после чего инфузории разъединяются. Таким образом происходит обмен генетическим материалом.

Дело, однако, этим не заканчивается. Так как отделившаяся инфузория имеет только малое ядро, т.е. «некомплект», то оно начинает делиться по сложной программе, образуя как новые малые, так и большие ядра.

Для распределения получающихся ядер уже сама инфузория последовательно делится дважды. В конечном итоге из каждой участницы этого «полового акта» получается четыре инфузории-туфельки с обновленным набором генов. Далее каждая из них какое-то время размножается простым делением, так как до следующего бесполового слияния должно пройти некоторое число клеточных делений и сами клетки должны достичь состояния зрелости. Влияют на их готовность также и внешние факторы, такие, как свет, температура и питание.

Пока остается загадкой то, как инфузория-туфелька расселяется по водоемам. Огромное большинство простейших может впадать в состояние цисты, когда жизненные процессы останавливаются, клетка облекается в прочную оболочку, под защитой которой она способна перенести неблагоприятные условия, в частности высыхание водоема, после чего эти цисты переносятся ветром вместе с пылью. Когда циста снова попадает в воду, то организм пробуждается к жизни.

Это было проверено в лабораториях неоднократно, но… только не с туфелькой. Ни цистирования, ни рецистирования достичь не удается, хотя, казалось бы, эта инфузория так легко разводится в «неволе», что опыты можно повторять бесконечно и достичь определенного результата. Есть только одна правдоподобная версия расселения: парамецию разносят водоплавающие птицы и другие способные к миграции водные животные.

Теперь о поведении. Инфузории воспринимают различные внешние раздражители и соответствующим образом реагируют на них. Как правило, ответом на раздражение служит их пространственное перемещение. Раздражение может вызвать целенаправленное движение к источнику раздражения или от него. Ученые это реагирование называют топотаксисом, или таксисом. Когда инфузория движется к раздражителю, говорят о положительном таксисе, если она его избегает — об отрицательном.

Это словечко вы уже ранее могли встретить в аквариумной литературе, когда автор, желая щегольнуть знанием научной терминологии, вместо того чтобы просто написать «новорожденные мальки прячутся от света», сообщает читателю, что они «обладают отрицательным фототаксисом».

Вот несколько понятий из области таксисов инфузории-туфельки.

Реагирует на освещение. Как и чем она его воспринимают -на сегодняшний день неясно. Лабораторные опыты показывают, что они не только обладают системой восприятия света, но также измеряют его интенсивность и даже длину его волны, т.е. цвет. Считается, что обычно туфельки проявляют положительный фототаксис, однако мой опыт разведения этой инфузории и кормления ею мальков этого не подтверждает. Я ни разу не замечал, чтобы туфельки собирались у более освещенной стенки сосуда, где они у меня живут, или у поверхности освещенного сверху аквариума с мальками.

Фото Инфузория туфелька

Чаще всего в хороших жизненных условиях они просто равномерно рассеяны по объему независимо от направления и силы света. Отмечено, что если туфелька питается водорослями, то она стремится в темноту. Видимо, захваченные, но до конца еще не переваренные водоросли на свету до последнего мгновения занимаются фотосинтезом, а это как-то мешает пищеварению инфузории.

Хемотаксис, или реакция на присутствие химического раздражителя, у туфелек не всегда очевиден, хотя принято считать, что хеморецепция, или чувствительность к различным химическим веществам, имеет для нее большое значение в природных условиях. Так, определенно известно, что инфузории, готовые к половому размножению, находят друг друга по выделениям определенных химических веществ.

Механотаксис — это реакция на твердый субстрат или на поток жидкости. В качестве примера отрицательного механотаксиса можно привести бегство туфельки, когда она наткнется на преграду, получив механическое раздражение. На течение воды инфузория реагирует положительно, т.е. старается плыть против него. Считается, что механическое раздражение инфузории в основном воспринимают своими ресничками.

Интересные опыты с туфельками были проведены с целью определения их геотаксиса, то есть соотношения движений с силой тяжести. Предполагается, что земное тяготение они воспринимают через давление, оказываемое на плазму клетки пищевыми вакуолями или вакуолями с кристаллическими включениями.

Так вот, туфелек накормили железными опилками, а затем поместили их в магнитное поле, и они стали плыть от магнита, проявляя отрицательный таксис. Эта имитация силы тяжести позволяет сделать вывод, что и геотаксис у них отрицательный. Логика подсказывает, что в противном случае они бы «тонули» и перемещались в основном в придонном слое.

Инфузории туфельки несомненно способны к восприятию температуры, однако ни положительного, ни отрицательного термотаксиса у них до сих пор не наблюдали. Просто имеет место их накопление в области оптимальных температур. Для туфельки это 24-28°С.

Еще одна особенность поведения состоит в том, что в среде, через которую пропускается постоянный электрический ток, они совершенно целенаправленно плывут к катоду. И хотя в природе это явление вряд ли встречается, его можно назвать гальванотаксисом.

Его просто проверить в домашних условиях. На стекло на расстоянии нескольких сантиметров надо приклеить две зачищенные медные проволочки. Несколько капель густой культуры инфузории поместить на стекле так, чтобы проволочки были покрыты водой, а затем подсоединить их к источнику постоянного тока напряжением 5-9 вольт (батарейка типа «Крона»).

Двигавшиеся беспорядочно инфузории сразу устремятся к отрицательному электроду. Поменяйте полюса, и они развернутся снова к катоду. Природа этого явления, как и многое другое в жизни инфузорий, на сегодняшний день не прояснена.

И, наконец, самый главный для аквариумистики таксис инфузории-туфельки — положительный кислородный таксис. Инфузория при недостатке кислорода энергично устремляется к поверхности, где газовый обмен на границе двух сред дает возможность «дышать». Вопрос, как она дышит и каким образом ощущает удушье, тоже не имеет четкого ответа. А вот как этот таксис используют аквариумисты, я расскажу далее достаточно подробно.

На культивирование туфельки в домашних условиях решаются определенно не все аквариумисты. Пугают значительно преувеличенные, на мой взгляд, сложности ее разведения и содержания. Конечно, приложить усилия потребуется, но, как известно, без ухода в квартире живут только тараканы. Тем не менее «не так страшен черт, как его малюют»: внимательный и терпеливый любитель с этой задачей успешно справляется.

Фото Инфузория туфелька

Как кормовой объект инфузория-туфелька, если верить публикациям, достаточно привлекательна. В уже упомянутой работе А.Е.Микулина «Живые корма» приведена сравнительная таблица содержания аминокислотного состава белка различных кормовых водных беспозвоночных: инфузорий, коловраток, и т.д. Так вот. героиня этой статьи по отдельным показателям превосходит остальных.

Вместе с тем среди аквариумистов-разводчиков бытует устойчивое мнение, что «на инфузории мальки не растут». В этом утверждении есть доля истины. По-моему, все дело в количестве или пищевом объеме инфузории. Пока малек еще мал, он быстро набивает свой животик этим кормом, опять же если его достаточно на единицу объема воды в аквариуме, где сидят малыши. Правда, есть рыбы, новорожденные мальки которых настолько вялы и малоподвижны, что скорость передвижения туфельки оказывается для них великовата, этот корм для них может не подойти: умрут с голода, но поймать не смогут.

А когда через первые 3-4 дня кормления малыш подрастет до способности проглотить что-то и покрупнее, наполнение его увеличившегося в объеме животика инфузорией становится затруднительным, тем более что в этот период малек способен есть непрерывно (и в этом нуждается). В природе весь необходимый по мере укрупнения «комплект еды» плавает вместе с мальками, а в условиях нерестовика обеспечить подобное соседство — забота аквариумиста. Поэтому инфузория хороша на первые 3-7 дней, а затем надо искать что-то более сытное.

Однако большинство неудач в разведении, если мальки уже выклюнулись, ложится именно на первичное (стартовое) кормление. Чаще всего корм не соответствует размерам мальков: те просто не могут его проглотить, им нужен именно живой объект. Инфузория-туфелька в большинстве случаев подходит как нельзя лучше.

Проблематично разводить инфузорию для большого хозяйства аквариумиста-рыборазводчика. а для любительских целей выкормить (вернее «поднять») на собственной инфузории две-три сотни мальков мелкой аквариумной рыбешки особого труда не составит.

Самой сложной задачей является обзаведение исходной чистой культурой парамеций. Лучше всего заполучить ее у знакомого или купить на Птичьем рынке. В книгах по аквариумистике можно встретить и такой совет: отжать на стекло пучок аквариумных растений и при хорошем увеличении (+5-7D) наловить этих инфузорий тончайшей пипеткой. Подробности того, как это делается, посмотрите в соответствующей книжке. Я пробовал -безрезультатно.

Бывают случаи, когда туфелька вдруг разводится в массовых количествах при неожиданных обстоятельствах. Как-то мне пришлось иметь дело с аквариумом, в котором жили крабы из Юго-Восточной Азии. Уровень воды был всего около 5 см, а рацион их питания в основном составляли фрукты (крабы-вегетарианцы). Как туда попала туфелька — неизвестно, но развелось се там тьма-тьмущая, причем никаких других простейших среди них не было видно: идеальная культура.

Инфузориям важен достаток кислорода. Чтобы обеспечить им подобные условия, больше всего подходит емкость с максимальной площадью поверхности. Для небольшого количества парамеций можно использовать и трехлитровую банку, наполовину заполненную водой, лучше — мягкой. Я держу инфузорий в кипяченой воде жесткостью 6-8MGH. Для получения воды таких параметров нужно прокипятить водопроводную, дать ей отстояться и слить верхние 2/3 объема.

Температуру лучше поддерживать на уровне 15-18°С (я, например, зимой держу банки с инфузорией на подоконнике). Такая температура не является для туфельки оптимальной.

При 24-28°С культура хотя и быстро достигает максимальной плотности, но так же быстро и погибает, отравившись продуктами собственного метаболизма (то есть отходами жизнедеятельности) и не выдерживая дыхательной конкуренции с массово размножающимися бактериями, служащими туфелькам кормом.

И. ВАНЮШИН г. Мытищи Московской обл.

Журнал Аквариум 2001 №4

К типу Инфузории относят около 6000 видов простейших, органеллами движения которых служит большое количество ресничек. Для большинства инфузорий характерно присутствие двух ядер: крупного вегетативного — макронуклеуса — и более мелкого генеративного — микронуклеуса. Макронуклеус имеет полиплоидный набор хромосом и регулирует процессы обмена веществ. Микронуклеус содержит диплоидный набор хромосом и участвует в половом процессе.

К свободноживущим инфузориям относят инфузорию туфельку . Размеры клетки 0,1-0,3 мм. Простейшее имеет постоянную форму, так как эктоплазма уплотнена и образует пелликулу. Тело инфузории покрыто ресничками. Их насчитывают от 10 до 15 тыс. В эктоплазме инфузории имеют защитные образоания — трихоцисты. При раздражении трихоцисты выстреливают наружу, превращаясь в длинные нити, парализующие жертву. После использования одних трихоцист на их месте в эктоплазме развиваются новые.

К органеллам питания относят ротовое отверстие, расположенное на брюшной стороне и ведущее в клеточный рот, который переходит в клеточную глотку. Вода с бактериями через елнточный рот попадает в эндоплазму, где образуются пищеварительные вакуоли. Вакуоли передвигаются вдоль тела инфузории.

Оставшиеся внутри вакуоли непереваренные остатки пищи удаляются наружу через порошицу — отверстие, расположенное неподалеку от заднего конца тела инфузории.

У инфузории туфельки есть две сократительные вакуоли, расположенные в передней и задней частях тела. Каждая вакуоль состоит из округлого резервуара и подходящих к нему в виде звезды 5 — 7 канальцев. Жидкие продукты и вода из цитоплазмы сначала поступают в приводящие канальцы, затем канальцы все сразу сокращаются и изливают свое содержимое в резервуар, после чего последний сокращается и выбрасывает жидкость через отверстие наружу, а канальцы в это время вновь наполняются. Вакуоли сокращаются поочередно.

Бесполое размножение инфузорий осуществляется путем поперечного деления и сопровождается делением макро- и микронуклеусов. Размножение повторяется 1 — 2 раза в сутки. Через несколько поколений в жизненном цикле инфузорий происходит половой процесс, который называют конъюгацией. Две инфузории подходят друг к другу брюшными сторонами, оболочка в месте их соприкосновения растворяется, и между ними образуется цитоплазматический мостик. Макронуклеусы при этом разрушаются, а микронуклеусы делятся мейозом на четыре ядра, три из которых разрушаются, а четвертое вновь делится пополам митозом.

В результате в каждой инфузории образуются мужское (мигрирующее) и женское (стационарное) ядра. Затем между особями происходит обмен мигрирующими ядрами с последующим слиянием стационарного и мигрирующего ядер, после чего особи расходятся. Вскоре в каждой из них ядро делится и впоследствии образуются микро- и макронуклеусы. Таким образом, при половом процессе число инфузорий не увеличивается, а обновляются наследственные свойства макронуклеуса и возникают новые комбинации генетической информации.

Диагноз ставят при нахождении балантидия в фекалиях. Профилактика та же, что и при других кишечных заболеваниях.

Строение

Наиболее типичный широко распространенный представитель ресничных — инфузория туфелька (Paramecium). Она обитает в стоячей воде, а также в пресноводных водоемах с очень слабым течением, содержащих разлагающийся органический материал.

Сложность строения клетки у парамеции объясняется тем обстоятельством, что ей приходится выполнять все функции, присущие целому организму, а именно питание, осморегуляцию и передвижение. Тело парамеции имеет характерную форму: передний конец у нее тупой, а задний несколько заострен.

Реснички инфузории туфельки расположены парами по всей поверхности клетки. Располагаясь продольными диагональными рядами, они, совершая биения, заставляют инфузорию вращаться и продвигаться вперед. Между ресничками находятся отверстия, ведущие в особые камеры, называемые трихоцистами. Из этих камер под влиянием определенных раздражителей могут выстреливать тонкие остроконечные нити, используемые, вероятно, для удержания добычи.

Под пелликулой инфузории туфельки располагается эктоплазма — прозрачный слой плотной цитоплазмы консистенции геля. В эктоплазме находятся базальные тельца (идентичные центриолям), от которых отходят реснички, а между базальными тельцами имеется сеть тонких фибрилл, участвующих, по-видимому, в координировании биения ресничек.

Основная масса цитоплазмы инфузории туфельки представлена эндоплазмой, имеющей более жидкую консистенцию, чем эктоплазма. Именно в эндоплазме расположено большинство органелл. На вентральной (нижней) поверхности туфельки ближе к ее переднему концу находится околоротовая воронка, на дне которой находится рот, или цитостом.

Рот инфузории туфельки ведет в короткий канал — цитофаринкс, или глотку. Как околоротовая воронка, так и глотка могут быть выстланы ресничками, движения которых направляют к цитостому поток воды, несущей с собой различные пищевые частицы, такие, например, как бактерии. Вокруг попавших в цитоплазму путем эндоцитоза пищевых частиц образуется пищевая вакуоль. Эти вакуоли перемещаются по эндоплазме к так называемой порошице, через которую непереваренные остатки путем экзоцитоза выводятся наружу.

В цитоплазме инфузории туфельки имеются также две сократительные вакуоли, местоположение которых в клетке строго фиксировано. Эти вакуоли отвечают за осморегуляцию, т. е. поддерживают в клетке определенный водный потенциал. Жизнь в пресной воде осложняется тем, что в клетку постоянно поступает вода в результате осмоса; эта вода должна непрерывно выводиться из клетки, чтобы предотвратить ее разрыв.

Происходит это с помощью процесса активного транспорта, требующего затраты энергии. Вокруг каждой сократительной вакуоли инфузории туфельки расположен ряд расходящихся лучами каналов, собирающих воду, перед тем как высвободить ее в центральную вакуоль.

В клетке парамеции инфузории туфельки находятся два ядра. Большее из них — макронуклеус — полиплоидное; оно имеет более двух наборов хромосом и контролирует метаболические процессы, не связанные с размножением. Микронуклеус — диплоидное ядро. Оно контролирует размножение и образование макронуклеусов при делении ядра.

Парамеция инфузории туфельки может размножаться и бесполым путем (поперечным делением надвое) и половым (путем конъюгации).

Движение

Совершая ресничками волнообразные движения, туфелька передвигается (плывёт тупым концом вперёд). Ресничка движется в одной плоскости и совершает прямой (эффективный) удар в выпрямленном состоянии, а возвратный — в изогнутом. Каждая следующая ресничка в ряду совершает удар с небольшой задержкой по сравнению с предыдущей. Плывя в толще воды, туфелька вращается вокруг продольной оси. Скорость движения — около 2 мм/c. Направление движения может меняться за счёт изгибаний тела. При столкновении с препятствием направление прямого удара меняется на противоположное, и туфелька отскакивает назад. Затем она некоторое время «раскачивается» взад-вперед, а затем снова начинает движение вперёд. При столкновении с препятствием мембрана клетки деполяризуется, и в клетку входят ионы кальция. В фазе «раскачивания» кальций выкачивается из клетки

Дыхание, выделение, осморегуляция

Туфелька дышит всей поверхностью клетки. Она способна существовать за счёт гликолиза при низкой концентрации кислорода в воде. Продукты азотистого обмена также выводятся через поверхность клетки и частично через сократительную вакуоль. Основная функция сократительных вакуолей осморегуляторная. Они выводят из клетки излишки воды, проникающие туда за счёт осмоса. Сначала набухают приводящие каналы, затем вода из них перекачивается в резервуар. При сокращении резервуара он отделяется от приоводящих каналов, а воды выбрасывается через пору. Две вакуоли работают в противофазе, каждая при нормальных физиологических условиях сокращается один раз в 10-15 с. За час вакуоли выбрасывают из клетки объём воды, примерно равный объёму клетки.

Размножение

У туфельки есть бесполое и половое размножение (половой процесс). Бесполое размножение — поперечное деление в активном состоянии. Оно сопровождается сложными процессами регенерации. Например, одна из особей заново образует клеточный рот с околоротовой цилиатурой, каждая достраивает недостающую сократительную вакуоль, происходит размножение базальных телец и образование новых ресничек и т.п.

Половой процесс, как и у других инфузорий, происходит в форме конъюгации. Туфельки, относящиеся к разным клонам, временно «склеиваются» ротовыми сторонами, и между клетками образуется цитоплазматический мостик. Затем макронуклеусы конъюгирующих инфузорий разрушаются, а микронуклеусы делятся путем мейоза. Из образовавшихся четырех гаплоидных ядер три погибают, а оставшаяся делится митозом. В каждой инфузории теперь есть два гаплоидных пронуклеуса — один из них женский (стационарный), а другой — мужской (мигрирующий). Инфузории обмениваются мужскими пронуклеусами, а женские остаются в «своей» клетке. Затем в каждой инфузории «свой» женский и «чужой» мужской пронуклеусы сливаются, образуя диплоидное ядро — синкарион. При делении синкариона образуется два ядра. Одно из них становится диплоидным микронуклеусом, а второе превращается в полиплоидный макронуклеус. Реально этот процесс происходит сложнее и сопровождается специальными постконъюгационными делениями.

Сувойка

Род простейших из подкласса кругоресничных инфузорий (Peritricha). Включает свыше 100 широко распространённых видов, живущих в морской и пресной воде. С. — сидячие животные, прикрепляются к субстрату (в отличие от других родов Peritricha) при помощи неветвящегося сократительного стебелька. Тело С., имеющее форму колокольчика, лишено ресничек. На расширенном переднем его конце (адоральная зона) расположен двойной ряд ресниц (обычно сливающихся в меморанеллы), закрученный влево (в отличие от спиральноресничных инфузорий, у которых адоральная зона мембранелл закручена вправо). Околоротовая спираль ведет к ротовому отверстию. Питаются С. мелкими взвешенными в воде органическими частицами (например, бактериями, детритом). При бесполом размножении в результате деления образуются снабженные венчиком ресниц свободноплавающие «бродяжки», которые затем образуют стебелёк и прикрепляются к субстрату. Половой процесс — по типу анизогамной конъюгации (крупные неподвижные макроконъюганты и мелкие подвижные микроконъюганты).

Инфузория трубач

Род простейших класса инфузорий подотряда разноресничных. Длина до 1 мм . Свыше 10 видов. Тело в форме воронки. На расширенном переднем конце мощно развитая зона околоротовых мембранелл, направляющих ток пищевых частиц к ротовому отверстию. Остальное тело покрыто продольными рядами мелких ресничек. Способны резко сокращаться, принимая шарообразную форму благодаря сократительным нитям — мионемам. Могут свободно плавать или прикрепляться к субстрату суженным задним концом. Обитают в морях и пресных водах. У некоторых видов в цитоплазме имеются многочисленные симбионты — одноклеточные водоросли.

Инфузория-стилохония

Есть такая инфузория — стилонихия. Под влиянием летучих фитонцидов лука она распадается на мельчайшие зернышки и даже растворяется. Такое явление микробиологи называют лизисом. Тело инфузории «исчезает». То же происходит с инфузорией, называемой «локсодес рострум». В течение 10-15 секунд все ее тело растворяется в окружающей жидкой среде!

В совершенно тех же условиях другая инфузория — спиростомум терес — под влиянием тех же фитонцидов распадается на зернышки, но растворения всего тела не происходит. Эту смерть мы называем з ернистым распадом.



Простейшие одноклеточные организмы, относящиеся к классу реснитчатых распространены практически повсеместно. От холодных льдов Севера до не менее обжигающих айсбергов Юга в любой стоячей воде обнаруживаются эти милые создания, являющиеся одним из важнейших звеньев пищевой цепочки биоценоза. Для аквариумиста инфузории туфельки представляют ценность как хорошая кормовая подпитка для новорожденных мальков. Но прежде чем заводить в своем «подводном мире» эту живность, стоит познакомиться с размножением, питанием и жизнедеятельностью микроорганизма.

Природная среда обитания и не только

Мельчайшие из живых существ обитают в неглубоких водоемах с неподвижной водой. Инфузории туфельки называются так за сходство формы тельца, сплошь покрытого ресничками, с дамской туфлей. Реснички помогают животным двигаться, питаться и даже обороняться. Мельчайший организм имеет размер 0,5 мм, увидеть невооруженным глазом инфузорию невозможно! Интересен способ перемещения в воде – только округлым затупленным концом вперед, но и при такой своеобразной «ходьбе», малышки развивают скорость 2,5 мм/1секнду.

Одноклеточные создания имеют двуядерную структуру: первое «большое» ядро контролирует питательные и дыхательные процессы, следит за обменом веществ и перемещением, а вот «малое» ядро включается только в процессы полового значения. Тончайшая оболочка повышенной эластичности позволяет микроорганизму находиться в природной четко очерченной форме, а также быстро передвигаться. Как таковое передвижение осуществляется посредством ресничек, исполняющих роль «весел» и постоянно толкающих туфельку вперед. Кстати, движения всех ресничек абсолютно синхронны и согласованны.

Жизнедеятельность: питание, дыхание, размножение

Как и все свободно живущие микроорганизмы, инфузория туфелька питается мельчайшими бактериями и частичками водорослей. У такой крохи имеется ротовая полость – глубокая впадинка, расположенная в определенном месте тела. Ротовое отверстие переходит в глотку, а потом пища попадает прямиком в вакуоль для переваривания пищи и тут еда начинает перерабатываться кислой, а затем и щелочной средой. У микроорганизма есть и отверстие, через которое выходят не полностью переваренные остатки пищи. Располагается оно позади пищевого отверстия и, проходя через структуру особого типа – порошицу, остатки еды выталкиваются наружу. Питание микроорганизма отлажено до предела, туфелька не может переесть или остаться голодной. Это, пожалуй, одно из совершенных созданий природы.

Дышит инфузория туфелька всеми покровами своего тельца. Высвобожденной энергии хватает для жизнеобеспечения всех процессов, а ненужные отработанные соединения, типа углекислого газа, удаляются так же посредством всей площади тела особи. Строение инфузории туфельки достаточно сложное, например, сократительные вакуоли при переполнении водой с растворенными органическими веществами, поднимаются к самой крайней точке плазмы на тельце и выталкивают все ненужное. Пресноводные обитатели таким образом удаляют излишки воды, которая постоянно поступает внутрь из окружающего пространства.

Микроорганизмы данного типа могут собраться большими колониями к местам, где скапливается много бактерий, но крайне резко реагируют на поваренную соль – уплывают.

Размножение

Существует два типа размножения микроорганизмов:

1. Бесполое, являющееся обычным делением. Этот процесс происходит как раздел одной инфузории туфельки надвое, причем новые организмы обладают своим большим и малым ядром. При этом в новую жизнь переходит только малая часть «старых» органоидов, все остальные быстро образуются заново.
2. Половое. Этот тип применяется только при появлении температурных колебаний, недостаточности пищи и других неблагоприятных условиях. Именно тогда животные могут разделиться полами и затем превратиться в цисту.

Именно второй вариант размножения наиболее интересен:

1. Две особи временно сливаются в одну;
2. На месте слияния образуется некий канальчик, соединяющий пару;
3. Большое ядро полностью исчезает (у обоих особей), а малое разделяется два раза.

открыт новый тип симбиоза инфузорий и бактерий — РТ на русском

Коллектив европейских исследователей обнаружил уникальную анаэробную бактерию, которая живёт внутри инфузории и обеспечивает её энергией. Подобный тип симбиоза ранее не был известен науке. Особенность взаимодействия двух видов заключается в том, что бактерия-эндосимбионт получает энергию для себя и хозяина, питаясь азотными соединениями вместо кислорода. Открытие было сделано случайно при изучении озёрных вод в предгорьях швейцарских Альп. По мнению специалистов, оно позволяет понять способ существования в бескислородной среде, в том числе на других планетах.

Коллектив биологов из Германии и Швейцарии открыл новую форму симбиоза, при которой бактерия-эндосимбионт живёт в инфузории-хозяине и обеспечивает обоих энергией, питаясь азотистыми соединениями — нитратами. Об этом сообщается в публикации в журнале Nature.

Учёные установили, что симбиоз одноклеточных инфузорий и неизвестных ранее науке бактерий позволяет первым выживать в анаэробных (бескислородных) условиях. Открытие было сделано случайно: исследовательская группа по парниковым газам Института морской микробиологии им. Макса Планка изучала микроорганизмы, участвующие в метаболизме метана. Для этого учёные анализировали генетический материал, полученный из лишённых кислорода глубин Цугского озера в предгорьях швейцарских Альп. Однако внезапно обнаружилась последовательность генов, напоминающая ДНК симбионтов, живущих в тле и других насекомых.

«Все мы были поражены этим открытием, и я начал сравнивать эту ДНК с похожей последовательностью генов из базы данных. Это не имело смысла. Как насекомые могли оказаться на такой глубине? И по какой причине?» — рассказал ведущий автор исследования Джон Граф. 

Вскоре неизвестная бактерия, питающаяся азотными соединениями, была обнаружена. Учёные назвали этого эндосимбионта Candidatus Azoamicus ciliaticola. По мнению Джона Графа, ассимиляция произошла не менее 200—300 млн лет назад. После открытия в Швейцарии такие симбионты были найдены и в других водоёмах мира.

«Это совершенно новый вид партнёрства. Симбиоз, основанный на дыхании и передаче энергии, в настоящий момент беспрецедентен», — говорит старший автор исследования Яна Милюка.

• Эндосимбионт Candidatus Azoamicus ciliaticola и его инфузория-хозяин
• © www.eurekalert.org

Как отметила учёная, обычно инфузории питаются бактериями, но в этом случае они не только оставили её в живых, но и организовали симбиоз.

Также по теме

Панспермия в действии: как бактерии могут выживать в космосе

Японские исследователи выяснили, что некоторые бактерии способны выживать в суровых космических условиях без дополнительной защиты….

Как объяснил в беседе с RT главный научный сотрудник Института биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН доктор биологических наук Денис Тихоненков, симбиоз представляет собой тесные взаимоотношения между организмами различных видов, значение которых часто недооценивается, ведь без них не могли бы существовать современные формы жизни.

«В рассматриваемой статье описано уникальное и важнейшее открытие — новая форма симбиоза. Симбиоз одноклеточных инфузорий и бактерий, которые получают энергию за счёт нитратного дыхания, при котором вместо кислорода используется азот», — пояснил российский учёный.

Денис Тихоненков уверен, что открытие позволяет понять способ существования и жизнедеятельности в бескислородной среде, в том числе на других планетах.

Тест с ответами по теме: «Инфузория»

1. Тип протистов из группы Alveolata:
а) инфузории +
б) плаценты
в) амебы

2. Существуют такие формы инфузорий:
а) неподвижные
б) подвижные +
в) двигательные

3. Существуют такие формы инфузорий:
а) ответвленные
б) закрепленные
в) прикреплённые +

4. Существуют такие формы инфузорий:
а) одиночные +
б) множественные
в) сложные

5. Существуют такие формы инфузорий:
а) основные
б) простые
в) колониальные +

6. Всего данный тип, по различным данным, содержит … тысяч видов:
а) 60-70 тысяч
б) 6-7 тысяч +
в) 600-700

7. Чем отличаются инфузории среди других одноклеточных:
а) способом питания
б) терморегуляцией
в) наиболее организованы +

8. Какая форма тела у инфузорий:
а) постоянная +
б) шарообразная
в) меняющаяся

9. Сколько ядер у инфузорий:
а) 4
б) 3
в) 2 +

10. Как по-другому называются инфузории:
а) бровные
б) реснитчатые +
в) волосатые

11. На ком могут паразитировать инфузории:
а) на червях, моллюсках, рыбах, земноводных, млекопитающих +
б) только на червях и млекопитающих
в) только на моллюсках, рыбах, земноводных

12. Как называется ротовое отверстие инфузорий:
а) цитоплазм
б) цитостом +
в) цитофарингс

13. Какая инфузория паразитирует на человеке:
а) балантидий +
б) инфузория-туфелька
в) хонотриха

14. Какую инфузорию используют в лабораториях:
а) балантидий
б) вольвокс
в) инфузорию туфельку +

15. Самая примитивная и разнообразная группа инфузорий:
а) надотряд Nenetofragminofora +
б) надотряд Vinetofragminofora
в) надотряд Kinetofragminofov

16. Для инфузорий относящихся к надотряду Oligohymenophora, характерно образования в области ротового отверстия специфического аппарата:
а) ветрахимениума
б) тетрахимениума +
в) петрахимениума

17. Сосущие инфузории:
а) класс Heterotrichia
б) класс Oligotrichia
в) класс Suctoria +

18. Характеризуются отсутствием во взрослом состоянии ресничек, рта и глотки:
а) питательные инфузории
б) сосущие инфузории +
в) «поющие» инфузории

19. Средой обитания инфузории-туфельки являются любые … водоемы со стоячей водой:
а) горные
б) соленые
в) пресные +

20. Размер инфузории туфельки составляет … мм:
а) 1—3
б) 0,1—0,3 +
в) 0,01—0,03

21. Ряд инфузорий могут образовывать:
а) колонии +
б) жилища
в) кислород

22. Большинство инфузорий питается:
а) рыбой
б) органическими остатками +
в) ракообразными

23. Большинство инфузорий питается:
а) икрой рыб
б) живыми организмами
в) бактериями +

24. Большинство инфузорий питается:
а) многоклеточными водорослями
б) одноклеточными водорослями +
в) икрой лягушек

25. Инфузории сохраняют постоянную форму тела благодаря наличию такой оболочки:
а) основной
б) кожной
в) клеточной +

26. У инфузорий тело покрыто:
а) волосинками
б) ресничками +
в) лапками

27. У инфузорий имеется такое ядро:
а) большое +
б) главное
в) дополнительное

28. У инфузорий имеется такое ядро:
а) второстепенное
б) основное
в) малое +

29. У инфузории есть клеточный:
а) рот +
б) желудок
в) нос

30. У инфузории есть клеточная:
а) легкая
б) глотка +
в) жабра

Чем питается инфузория-туфелька?

Эмбриональное развитие разных групп млекопитающих протекает неодинаково. У низших, яйцекладущих, форм развитие происходит за счёт запасов яйца. У высших же, плацентарных, животных, у которых развитие зародыша совершается в теле матери, исчезли некоторые черты приспособления к развитию во внешней, неводной среде, но появились черты приспособления к развитию в утробе матери, в частности к получению питания из материнского организма (через плаценту) .

Особенности условий развития млекопитающих отражаются уже на строении яйцеклетки.

У яйцекладущих млекопитающих яйцеклетки содержат большое количество желтка, служащего для питания зародыша, то есть яйцеклетки телолецитальные.

При внутриутробном развитии млекопитающих если и происходит питание за счет запаса яйцеклетки, то лишь на самых ранних этапах развития, а далее, вплоть до рождения, питание развивающемуся организму доставляется через тело матери. В связи с этим яйцеклетка млекопитающих, как и у ланцетника, бедна желтком.

Дробление. У разных животных время, которое проходит от оплодотворения до начала дробления, и продолжительность дробления различны. Поданным Г. А. Шмидта, процесс дробления зиготы крупного рогатого скота длится восемь дней, из них четыре дня — в яйцеводе и четыре дня — в матке. У яйцекладущих, как и у птиц, дробление частично меробластшеасоедискоидальное. У сумчатых плацентарных млекопитающих дробление полное (голобластическое) . Однако родство с животными, имеющими телолеци-тальньге яйцеклетки и меробластический тип дробления, наложило отпечаток и на процесс дробления и на последующее развитие, которое у плацентарных млекопитающих протекает иначе, чем у ланцетника, имеющего тоже изолецитальную яйцеклетку.

1 ак, во-первых, в отличие от ланцетника полное дробление у млекопитающих несколько неравномерно и несинхронно. В результате, как и при меробластическом дроблении у птиц, образуются бластомеры различной величины, и в увеличении числа бластомеров не наблюдается той правильности, которая присуща ланцетнику. Во-вторых, особенность развития млекопитающих заключается в раннем обособлении зародышевого материала от внезародышевого. В процессе дробления образуются бластомеры двух типов: мелкие, светлые и более крупные, темные. Мелкие и светлые бластомеры располагаются снаружи и, обрастая более крупные и темные бластомеры, дают начало трофобласту (trophe — пища, blastos — зародыш, зачаток) , который в дальнейшем не участвует в построении тела зародыша, а, вступая в контакт со слизистой оболочкой матки, служит лишь для снабжения зародыша питательным материалом. Крупные и темные клетки образуют эмбрио-бласт, за счет его формируется тело зародыша и позже возникающие вне-зародышевые органы. Таким образом, на ранней стадии зародыш имеет вид вначале плотного, а затем полого шара, часть клеток которого не участвует в дальнейшем построении тела зародыша.
Трофобласт — это новое образование, аналогичного которому нет у нижестоящих животных. Клетки его всасывают жидкость, размещающуюся между трофобластом и эмбриобластом. Так в сплошном шаре клеток возникает полость, быстро увеличивающаяся в размере. В результате образуется бластодермический пузырек (рис. 40). Он состоит из наружного слоя клеток трофобласта, комочка клеток эмбриобласта, который прилегает в одном месте к внутренней поверхности трофобласта и формирует зародышевый узелок, и полости бластулы, заполненной жидкостью.
У коровы эктодерма и энтодерма образуются между 12-м и 13-м днями развития. Трофобласт, лежащий над эктодермой (рауберовский слой) , редуцируется, и эктодерма щитка выходит на поверхность бластодермического пузырька, причем эктодерма продолжается в трофобласт. У некоторых млекопитающих, в том числе у человека, рауберовский слой сохраняется. В отличие от птиц у млекопитающих под щитком находится не желток, а белковая жидкость бластулы. Форма щитка у разных животных несколько различна.

Процесс питания реснитчатых инфузорий

Процесс питания реснитчатых инфузорий вместе с анализом всей пищевой системы подробно описан Догелем и Полянским.

По характеру пищи инфузории делятся на: 1) бактериофагов и детритофагов, 2) сапрозоев и 3) хищников и питающихся смешанной пищей. К типичным бактериофагам среди свободноживущих инфузорий относится туфелька Paramaecium caudatum, хотя она иногда заглатывает и одноклеточные водоросли, и бесцветных жгутиковых. Последних поедают также Stentor, Spirostomum, Frontonia и другие инфузории. На способность инфузорий питаться водорослями, даже синезелеными, указывают Винберг, Сорокин и др., Мордухай-Болтовская и Сорокин, хотя опыты с кормлением инфузорий Microcystis показали пищевую неполноценность последнего для инфузорий.

Характер заглатывания пищи у инфузорий зависит от устройства околоротового аппарата. Различают «глотателей» – хищников, иногда прожорливых, как, например, Coleps hirtus, Didynium nasutum, которые захватывают крупную добычу и у которых рот в покоящемся состоянии закрыт, и «подгонятелей», у которых рот постоянно открыт. Быстрым движением мембранелл околоротовой зоны или быстрым волнообразным движением ундулирующих мембран они загоняют частицы пищи, которые осаждаются в особом углублении на теле в перистоме. Это инфузории – седиментаторы, к ним относится большинство планктических видов. У глотателей имеются особые приспособления, обеспечивающие захват пищи ртом и проталкивание ее через глотку. Переваривание происходит под воздействием пищеварительных ферментов в пищевой вакуоле, находящейся на дне глотки и с токами протоплазмы перемещающейся в теле, проделывающей довольно сложный и закономерный путь, называемый циклозом пищевой вакуоли.

Среди хищных инфузорий некоторые обладают хорошо выраженной избирательной способностью при питании. Например, Didynium nasutum питается преимущественно инфузориями, Nassula – синезелеными. Эберли обнаружил убыль в металимнионе одного озера популяции Oscillatoria agardhii в результате выедания ее Nassula aurea.

Проведенный выше обзор различных аспектов питания у представителей зоопланктона, позволяет прийти к следующему важному в практическом отношении заключению. Ввиду наличия тесного трофического взаимодействия между зоопланктоном и фитопланктоном, зная скорость питания зоопланктона, степень усвоения потребленных водорослей и пищевые потребности животных, можно определить роль фитопланктона в удовлетворении пищевых потребностей зоопланктона в тех водоемах, где планктон изучен с достаточной полнотой. А из сопоставления величин первичной продукции в водоеме и рыбопродукции можно также рассчитать, какой процент первичного органического вещества воспроизводится в теле конечного трофического звена – рыбы.

Если вы нашли ошибку, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter.

Класс Инфузории (Infusoria) | Биология животных

Инфузории отличаются наиболее сложной организацией среди одноклеточных животных (рис. 53). Тело их покрыто пелликулой и поэтому имеет относительно постоянную форму, характерную для разных видов. Органоидами движения служат реснички, которые участвуют также в захвате пищи. Одна из характерных черт инфузорий — ядерный комплекс, состоящий, как правило, из макро — и микронуклеуса. У некоторых инфузорий имеется несколько малых ядер. Бесполое размножение инфузорий происходит поперечным делением и изредка почкованием. Половой процесс протекает по типу конъюгации.

Описано около 6 тыс. видов инфузорий. Они населяют пресные воды и моря, встречаются в почве, обитают в теле различных животных в качестве паразитов или симбионтов. Среди свободно-живущих видов большая часть плавает в толще воды, держась близ дна. Некоторые инфузории, например стилонихии (Stylo—nichia, отр. Равноресничныс Holoiricha), передвигаются по субстрату на утолщенных ресничках, как на ножках. Ряд видов инфузорий ведет сидячий образ жизни. Так живут своеобразные сувойки (Vorticella, отр. Спиралыюресничные Spirotrieha), бока-лообразное тело которых прикрепляется к субстрату длинным стебельком. При каком-либо раздражении последний закручивается спиралью, подтягивая животное. По верхнему краю тела сувоек, вокруг ротовой воронки, расположен ряд ресничек, подгоняющих пищу.

Нередко сувойки живут целыми колониями. Распространение сувоек в пространстве осуществляется с помощью подвижных особей, отпочковывающихся от материнского организма.

Большинство инфузорий питаются различными бактериями, водорослями,   разлагающимися   остатками   разных   организмов.

Среди инфузорий имеются и хищные виды, нападающие на других микроскопических животных. Интересны сосущие инфузории, снабженные особыми трубочками. Поймав с помощью последних живую добычу (обычно инфузорию другого вида), эти животные сначала убивают ее ядовитыми выделениями, а затем высасывают. Питание многих свободнодвижущихся инфузорий бактериями позволяет считать их санитарами водоемов. Одна инфузория туфелька за 1 ч может поглотить тысячи бактерий.

Ряд инфузорий ведут паразитический образ жизни (рис. 54). Так, инфузория балантидиум (Balantidium) поселяется в толстых кишках человека. Инфузории ихтиофтириусы (Ichtyophthirius), поселяясь на жабрах и в коже карпов, форелей и других рыб, вызывают воспаление тканей и могут привести к гибели рыб.

Особый интерес представляет большая группа инфузорий — панцирные инфузории из семейства Ophryoscolecldae(отр. Спиральноресничные), живущие в содержимом рубца желудка жвачных животных. Некоторые из них покрыты плотной оболочкой (отсюда название — панцирные инфузории). Реснички обычно сохраняются только вокруг ротовой воронки и пояском вокруг тела. У здоровых коров в 1 см3 содержимого рубца их бывает до 2 млн. По-видимому, инфузории способствуют перевариванию клетчатки пищи жвачных. Инфузории, попадая из рубца с пищей в сычуг и кишечник, становятся белковой пищей скота.

Фронтония: анализ аппетита инфузорий

(я почти уверен, что у каждого не строго автотрофного объекта есть какая-то форма аппетита. Некоторые инфузории и амебы просто склонны отображать его более заметно — как в этом крутом видео с климакостомом пожирающий плоского червя!)

Фронтония — это род хищных инфузорий, которые питаются чем угодно, от водорослей и бактерий до других инфузорий (и всего, что может пройти через цитостом или его «глотку»).Некоторые могут стать довольно большими, что заставит вас на мгновение задуматься, было ли наблюдаемое большое волосатое существо инфузорией или животным. Он был крупнее коловраток. Больше, чем большинство животных там — я стараюсь избегать перевернутых при отборе проб, поскольку они имеют тенденцию есть все или, по крайней мере, то, что вас особенно интересует. Как и в тот раз я пытался вырастить густой рой Oxyrrhis ( родственник динофлагеллат) и пара коловраток … но я отвлекся. Эта штука была огромной, по крайней мере, 400 мкм.И это была инфузория. Рот идентифицировал его как Frontonia . Наполненный всевозможными цианобактериальными нитями, диатомовыми водорослями и всем остальным, достаточно неудачным, чтобы оказаться на пути.

Frontonia относительно проста морфологически, если говорить о инфузориях, хотя некоторые виды могут достигать довольно больших размеров (даже некоторые из них имеют размер около 600 мкм!). Этот образец имеет длину около 90 мкм. Он имеет характерный для своей группы (Peniculids) рот, а также шов, в котором ряды ресничек встречаются с обеих сторон.Рот может открываться значительно шире, когда ему нужно глотать то, что ему, вероятно, действительно не следует, если говорить о правилах поведения за столом. Этим экземпляром может быть F. angusta , хотя общеизвестно, что уверенно идентифицировать микробы по видам сложно, особенно без каких-либо данных о последовательности или окрашивания.

Вот еще пара видов поверхности, просто для удовольствия. Среди рядов ресничек — отверстие сократительной вакуоли Frontonia — скопившаяся жидкость должна каким-то образом уйти.У некоторых протистов сократительная вакуоль просто сливается с мембраной и изгоняет ее содержимое, но также существует множество вариаций на этот счет. Прямо под ресничками расположены ряды экструзом — острых органелл, которые реснички используют для охоты и защиты.

Много ресничек … их аккуратные ряды называются кинетиями. Похоже, инфузория выращена.

Строение ротовой полости инфузории — один из ключевых ключей к пониманию того, что это такое и для чего он нужен.Несколько групп ресничек выглядят удивительно похожими на поверхности, и наиболее четко их можно различить по их рту, который может быть довольно сложным — что, возможно, несколько неудивительно для такой прожорливой группы организмов. Ротовой аппарат Frontonia далеко не самый впечатляющий в мире инфузорий, но даже в своей скромности он все же демонстрирует замечательную структурную организацию и сложность. Есть ряды и скопления различных кинетид — общий термин для базальных тел с ресничками и без ресничек (если вы чувствуете себя особенно запутанным, существует целый мир структурных вариаций даже внутри кинетид!).Кинетиды породили массу похожих по звучанию специфических для инфузорий терминов (для начала: кинетиды , кинетии и кинетосомы ), которые, кажется, используются по-разному в разных группах инфузорий, а иногда и непоследовательно. Это был многословный способ написать: «Я все еще в замешательстве и хотел бы вообще избежать этой темы). Я только что нашел здесь полезный глоссарий терминов, но тем не менее постараюсь написать как можно больше на английском языке.

Часто ротовой аппарат имеет плотный ряд ресничек, который проявляется (и действует) как мембрана до ближайшего осмотра.На этом изображении он виден как лист ресничек в верхней части рта. Ниже расположены три ряда оральных кинетид

.

Заглянем внутрь инфузории. В центре находится макронуклеуса, , в котором хранится хроматин, используемый для создания различных продуктов генома. Здесь еще не показано гораздо меньшее микронуклеуса , в котором хранится хроматин, который фактически передается последующим поколениям. Макронуклеус необходимо воссоздавать каждый раз, когда инфузория занимается сексом (или автогамией — сексом с самим собой), превращая секс в развлекательную деятельность.Между прочим, размер генома обычно больше в ядре micro — причина для этого требует отдельного поста (или нескольких) — поскольку полосы макроядерной последовательности удаляются, прежде чем попадут в микроядро. Инфузории, кажется, делают почти все странные вещи. Также обратите внимание на то, насколько крупные ребристые включения в ячейке подозрительно похожи на две Drepanomonas sp. инфузории под ней.

А теперь фото, которое я изначально хотел показать отдельно (но, как обычно, отвлекся): крупный план Frontonia с надписью крупным планом, на котором показаны некоторые из его ключевых клеточных компонентов: ротовой аппарат, сократительная вакуоль. , микро- и макронуклеусы (MIC и MAC соответственно), трихоцисты и, конечно же, полупереваренные туши добычи.Потому что ты действительно не хочешь приближаться ко рту этого маленького монстра. Обратите внимание на различные текстуры MIC и MAC, отражающие их различную организацию хроматина (помните: MIC не транскрипционно молчит).

(и вот немаркированная версия, не испорченная текстом, для удовольствия)

Итак, вот наша экскурсия по представителю Frontonia . Конечно, чтобы увидеть структуру клетки на самом деле , нужна электронная микроскопия — и тогда мы могли бы стать весьма разборчивыми.Но, к счастью для вас, у меня пока нет доступа к электронному микроскопу, и мне пока лень копаться в литературе. 😉

В следующем посте вернемся к небольшому разнообразию. А уж давно здесь не было никаких амеб, и это проблема.

Страница не найдена — WebBuildMe

Дата вступления в силу: 6 сентября 2018 г.

WebBuildMe («нас», «мы» или «наш») управляет веб-сайтом webbuildme.com («Сервис»).

Эта страница информирует вас о нашей политике в отношении сбора, использования и раскрытия личных данных при использовании нашего Сервиса, а также о вариантах выбора, которые вы связали с этими данными.

Мы используем ваши данные для предоставления и улучшения Сервиса. Используя Сервис, вы соглашаетесь на сбор и использование информации в соответствии с этой политикой. Если иное не определено в настоящей Политике конфиденциальности, термины, используемые в настоящей Политике конфиденциальности, имеют то же значение, что и в наших Положениях и условиях, доступных на webbuildme.com

.

Сбор и использование информации

Мы собираем несколько различных типов информации для различных целей, чтобы предоставить вам и улучшить наш Сервис.

Типы собираемых данных

Личные данные

При использовании нашего Сервиса мы можем попросить вас предоставить нам определенную личную информацию, которая может быть использована для связи или идентификации вас («Личные данные»). Информация, позволяющая установить личность, может включать, но не ограничивается:

• Адрес электронной почты
• Имя и Фамилия
• Телефон
• Адрес, штат, провинция, почтовый индекс, город
• Файлы cookie и данные об использовании

Данные об использовании

Мы также можем собирать информацию о том, как осуществляется доступ к Службе и как она используется («Данные об использовании»).Эти данные об использовании могут включать такую ​​информацию, как адрес интернет-протокола вашего компьютера (например, IP-адрес), тип браузера, версия браузера, страницы нашего Сервиса, которые вы посещаете, время и дата вашего посещения, время, проведенное на этих страницах, уникальные идентификаторы устройств и другие диагностические данные.

Отслеживание и данные файлов cookie

Мы используем файлы cookie и аналогичные технологии отслеживания для отслеживания активности в нашем Сервисе и хранения определенной информации.

Файлы cookie

— это файлы с небольшим объемом данных, которые могут включать анонимный уникальный идентификатор.Файлы cookie отправляются в ваш браузер с веб-сайта и хранятся на вашем устройстве. Также используются технологии отслеживания: маяки, теги и скрипты для сбора и отслеживания информации, а также для улучшения и анализа нашего Сервиса.

Вы можете указать своему браузеру отказаться от всех файлов cookie или указать, когда они отправляются. Однако, если вы не принимаете файлы cookie, вы не сможете использовать некоторые части нашего Сервиса.

Примеры файлов cookie, которые мы используем:

• Файлы cookie сеанса. Мы используем файлы cookie сеанса для работы с нашим Сервисом.
• Файлы cookie предпочтений. Мы используем файлы cookie предпочтений, чтобы запомнить ваши предпочтения и различные настройки.
• Файлы cookie безопасности. Мы используем файлы cookie безопасности в целях безопасности.

Использование данных

WebBuildMe использует собранные данные для различных целей:

• Для предоставления и обслуживания Сервиса
• Чтобы уведомить вас об изменениях в нашей Службе
• Чтобы позволить вам участвовать в интерактивных функциях нашего Сервиса, когда вы решите это сделать
• Обеспечение обслуживания и поддержки клиентов
• Чтобы предоставить анализ или ценную информацию, чтобы мы могли улучшить Сервис
• Для контроля использования Сервиса
• Для обнаружения, предотвращения и решения технических проблем

Передача данных

Ваша информация, включая Персональные данные, может передаваться и храниться на компьютерах, расположенных за пределами вашего штата, провинции, страны или другой государственной юрисдикции, где законы о защите данных могут отличаться от законов вашей юрисдикции.

Если вы находитесь за пределами США и решили предоставить нам информацию, обратите внимание, что мы передаем данные, включая Личные данные, в Соединенные Штаты и обрабатываем их там.

Ваше согласие с настоящей Политикой конфиденциальности, за которым следует предоставление такой информации, означает ваше согласие на такую ​​передачу.

WebBuildMe предпримет все разумно необходимые шаги для обеспечения безопасного обращения с вашими данными в соответствии с настоящей Политикой конфиденциальности, и никакая передача ваших Персональных данных не будет происходить в организацию или страну, если не будет обеспечен надлежащий контроль, включая безопасность ваши данные и другая личная информация.

Раскрытие данных

Юридические требования

WebBuildMe может раскрывать ваши Персональные данные, если добросовестно полагает, что такие действия необходимы для:

• Для выполнения юридических обязательств
• Для защиты прав или собственности WebBuildMe
• Для предотвращения или расследования возможных правонарушений в связи с Услугой
• Для защиты личной безопасности пользователей Сервиса или общественности
• Для защиты от юридической ответственности

Безопасность данных

Безопасность ваших данных важна для нас, но помните, что ни один метод передачи через Интернет или метод электронного хранения не является безопасным на 100%.Хотя мы стремимся использовать коммерчески приемлемые средства для защиты ваших Персональных данных, мы не можем гарантировать их абсолютную безопасность.

Провайдеры услуг

Мы можем нанимать сторонние компании и частных лиц для содействия нашему Сервису («Поставщики услуг»), для предоставления Сервиса от нашего имени, для оказания услуг, связанных с Сервисом, или для помощи нам в анализе того, как используется наш Сервис.

Эти третьи стороны имеют доступ к вашим Персональным данным только для выполнения этих задач от нашего имени и обязаны не раскрывать и не использовать их для каких-либо других целей.

Аналитика

Мы можем использовать сторонних поставщиков услуг для мониторинга и анализа использования нашего Сервиса.

• Google Analytics Google Analytics — это служба веб-аналитики, предлагаемая Google, которая отслеживает и сообщает о посещаемости веб-сайтов. Google использует собранные данные для отслеживания и контроля использования нашего Сервиса. Эти данные передаются другим сервисам Google. Google может использовать собранные данные для контекстуализации и персонализации рекламы своей собственной рекламной сети.Вы можете отказаться от того, чтобы ваши действия в Сервисе были доступны для Google Analytics, установив надстройку браузера Google Analytics opt-out. Надстройка предотвращает передачу Google Analytics JavaScript (ga.js, analytics.js и dc.js) информации об активности посещений в Google Analytics. Для получения дополнительной информации о политике конфиденциальности Google, пожалуйста, посетите Политика конфиденциальности и условия Google веб-страница: https://policies.google.com/privacy?hl=en

Ссылки на другие сайты

Наш Сервис может содержать ссылки на другие сайты, которыми мы не управляем.Если вы нажмете на стороннюю ссылку, вы будете перенаправлены на сайт этой третьей стороны. Мы настоятельно рекомендуем вам ознакомиться с Политикой конфиденциальности каждого сайта, который вы посещаете.

Мы не контролируем и не несем ответственности за содержание, политику конфиденциальности или действия любых сторонних сайтов или служб.

Конфиденциальность детей

Наша Служба не предназначена для лиц младше 18 лет («Дети»).

Мы сознательно не собираем личную информацию от лиц младше 18 лет.Если вы являетесь родителем или опекуном и знаете, что ваши Дети предоставили нам Личные данные, свяжитесь с нами. Если нам станет известно, что мы собрали Персональные данные от детей без подтверждения согласия родителей, мы предпримем шаги для удаления этой информации с наших серверов.

Изменения в Политике конфиденциальности

Время от времени мы можем обновлять нашу Политику конфиденциальности. Мы сообщим вам о любых изменениях, разместив новую Политику конфиденциальности на этой странице.

Мы сообщим вам об этом по электронной почте и / или в заметном уведомлении о нашем Сервисе до того, как изменения вступят в силу, и обновим «дату вступления в силу» в верхней части настоящей Политики конфиденциальности.

Рекомендуется периодически просматривать эту Политику конфиденциальности на предмет изменений. Изменения в этой Политике конфиденциальности вступают в силу, когда они публикуются на этой странице.

Свяжитесь с нами

Если у вас есть какие-либо вопросы по поводу настоящей Политики конфиденциальности, свяжитесь с нами:

Как парамеций переваривает пищу?

Протист, называемый парамецием, может похвастаться эффективным способом передвижения через реснички. Реснички также используются для питания парамеций. Парамеции сначала используют реснички, чтобы втягивать частицы пищи, а затем используют фагоцитоз, чтобы начать процесс пищеварения.

TL; DR (слишком длинный; не читал)

Парамеций — одноклеточный протист, который использует свои реснички, чтобы втягивать пищу в свою оральную бороздку. Затем частицы пищи перевариваются посредством процесса, называемого фагоцитозом.

Что такое парамеций?

Парамеций — это протист , организм, который не является ни растением, ни животным. Парамеций принадлежит к царству Protista, типу Ciliophora и семейству Paramecidae. В царстве парамеций Protista протисты являются эукариотами, и они бывают самых разных размеров и форм.Они могут варьироваться от микроскопических одноклеточных организмов до гигантских водорослей.

Что касается парамеций, то они довольно маленькие, но хорошо различимы под микроскопом. Это один из самых крупных протистов микроскопа, его длина составляет примерно 0,5 миллиметра. Парамеции бывают одноклеточными или одноклеточными. У них одно ядро.

Некоторые примеры видов парамеций включают Paramecium caudatum , Paramecium bursaria и Paramecium multimicronucleatum .

Характеристики парамеций

Парамеций — это пловец продолговатой формы. Парамеций имеет множество маленьких придатков, называемых ресничек , расположенных на внешней стороне тела. Они используются, чтобы помочь парамеции двигаться. Это контрастирует с Euglena , в котором используется хвостообразный объект, называемый жгутиком . С другой стороны, амебы для передвижения используют придатки, называемые pseudopodia .

Многие протисты любят жить в жидких средах, таких как пруды или озера.Парамеций не исключение, и в жидкой среде он может двигаться с большой скоростью.

Парамеции предпочитают жить в жидких средах с температурой 78 градусов по Фаренгейту или ниже.

Парамеций — автотроф или гетеротроф?

Разные простейшие питаются по-разному. Тех, кто может самостоятельно производить пищу посредством фотосинтеза, называют автотрофами . Тех протистов, которым необходимо охотиться за едой и есть ее, называют гетеротрофами .Гетеротрофное поведение описывает способ получения питания у парамеций.

Paramecium bursaria , что интересно, содержит симбиотических организмов, которые проводят фотосинтез. В этом случае ему нужен только хороший источник света, чтобы его симбионты могли готовить для него пищу.

Источники питания в парамеции

Парамеций получает питание, поедая, среди прочего, другие микробы, такие как бактерии и грибы.Они даже съедят других простейших, таких как Chilomonas ; фактически это одна из их любимых жертв.

Иногда парамеции поглощают патогены, вредные для других организмов. Однако парамеции не разборчивы в еде. Но они действительно лучше едят в более прохладных условиях.

Парамеции сами служат пищей и для других животных, от крошечных коловраток и выше.

Роль ресничек в парамециях

Волосоподобные волокна, называемые ресничками, встречаются у огромного числа организмов.Для микроскопических организмов они играют решающую роль в подвижности и выживании.

Реснички парамеций функционируют двумя разными способами. Их можно использовать, чтобы помочь парамеции двигаться или помочь ей есть, в зависимости от ее потребностей в данный момент. Реснички работают через молекулярные моторы.

Реснички по форме напоминают волоски. Однако на самом деле они представляют собой тип клеточных органелл, которые простираются за пределы тела клетки парамеции. Парамеции покрыты этими ресничками, и реснички помогают клетке перемещаться в жидкости, толкаясь, как бесконечно маленькие весла.

В условиях разной вязкости реснички ведут себя по-разному. Если парамеций находится в густой, более вязкой жидкости, реснички, предназначенные для движения, замедляются.

Реснички также помогают получать питание парамеции. Это происходит в ротовой борозде парамеции.

Ротовая бороздка в парамеции

Ротовая бороздка в парамеции представляет собой выемку на ее теле. Он покрыт ресничками, которые используются не для перемещения парамеций, а для перемещения источников питания в клетку.

Исследователи теперь знают, что реснички ротовой бороздки работают иначе, чем реснички, которые окружают парамеций для подвижности. Кроме того, в условиях повышенной вязкости реснички ротовой борозды не замедляются так сильно, как подвижность ресничек.

В целом два вида ресничек выглядят очень похоже. Тем не менее, ученые считают, что настоящие молекулярные двигатели ресничек оральной борозды должны отличаться от подвижных ресничек.

Ротовая борозда ведет к области хранения пищи парамеции, цитостому .

Что такое фагоцитоз?

Фагоцитоз представляет собой способ употребления пищи для питания парамеций. Это происходит, когда частица пищи попадает в клеточную мембрану. Эли Мечников первым открыл фагоцитоз. Мечников обнаружил, что разные пищеварительные части парамеции имеют разную кислотность.

Клеточная мембрана парамеции оборачивается вокруг частицы пищи, втягивает ее внутрь мембраны, а затем отщипывает.Этот маленький мешочек — это пищевая вакуоль .

У таких протистов, как парамеций, вакуоли используются для хранения пищевых частиц в цитоплазме. Вакуоль с пищевой частицей называется фагосомой . Эта фагосома сливается с лизосомой со специальными ферментами. Эти ферменты действуют только в очень кислых условиях; их герметичность предохраняет парамеций от повреждения. Полученная фаголизосома затем переваривает пищу для использования в клетке.

Удаление отходов в Paramecium

После того, как будет получено все питание для переваривания парамеций, любые отходы должны быть удалены из клетки. Этот процесс называется экзоцитоз .

Одноклеточные организмы, такие как парамеция, должны постоянно работать, чтобы обеспечить баланс жидкостей. Поскольку парамеции, как правило, живут в пресной воде, задача состоит в том, чтобы не допустить попадания слишком большого количества воды в более соленые окрестности внутри клетки. Если попадет слишком много воды, парамеций может лопнуть.

Чтобы обойти эту проблему, к счастью, парамеции могут использовать сократительную вакуоль для поддержания баланса жидкости. Это органелла, которая используется для сбора лишних жидкостей и их сброса. Он делает то же самое с другими видами отходов, используя свои маленькие коллекторные трубки и сокращая их для продувки.

Paramecia также избавляется от отходов, таких как азот, просто позволяя им выходить через клеточную мембрану посредством диффузии.

Изучение переваривания парамеций

Одной из привлекательных особенностей парамеций является их пригодность в качестве лабораторного объекта в классных комнатах.Они небольшие по размеру, их легко заказать и отгрузить, и они относительно не требуют обслуживания.

Парамеции довольно прозрачны, что дает учащимся возможность увидеть внутреннее строение парамеций. Им нужно пространство с контролируемым климатом, но в остальном они идеально подходят для изучения клеточных процессов. Они очень быстро перемещаются по слайдам. Поэтому, чтобы их легче было наблюдать, в некоторых случаях может потребоваться замедлить их с помощью специального вещества, такого как вазелин.

Для изучения пищеварения простейших инструкторы могут предоставить парамеции и потребовать от них потребления различных индикаторов.Они окрашивают вакуоли и другие органеллы в парамеции в соответствии с pH (концентрацией ионов водорода) внутри органелл.

Более низкое значение pH указывает на более высокую кислотность внутри вакуоли. Более высокий pH указывает на более щелочную, менее кислую вакуоль и так далее. Студенты могут наблюдать за фактическим пищеварением, поскольку пищевые вакуоли меняют цвет в режиме реального времени.

Поскольку лизосомы требуют высокой кислотности для улучшения пищеварения парамеций, студенты могут ожидать более низкого pH для этой активности.В целом, парамеций дает прекрасную возможность узнать о поведении клеток, простых пищеварительных процессах и о различиях pH внутри клетки.

Стенторов

Стенторов

Стенторы пользователем Ховард Уэбб (Сент-Луис, Миссури, США) США)

Вступление

Стенторы — одноклеточные инфузории, известные своей трубой. как форма (отсюда и название стентор, от греческого вестника Троянская война).Стенторы — одни из самых крупных одноклеточных организмов, иногда достигая нескольких миллиметров в длину.

Где найти

Стенторы обычно встречаются в спокойной воде прудов и озера, как правило, у поверхности, прикрепленные к листьям или веткам. Хотя они могут свободно плавать, они чаще всего замечены сгруппированными в небольшие колонии. Эти конкретные стенты были обнаружены в кластере, прикрепленном к боковой стороне сборная банка.Я собрал несколько веточек на мелководье (Я действительно искал гидру), и они стали очевидными примерно через неделю. Я использовал небольшую пипетку, чтобы соскоблить колония со стороны банки и перенесла ее на горку для наблюдения.

Обычно, чтобы найти стенторы, нужно немного поохотиться, хотя я иногда находили их настолько толстыми, что образец окрашивался зеленый от их присутствия.

Анатомия

Наиболее примечательным из стента является «корона» ресничек. окружающий трубный «колокол». Эта корона не полная круг. Эти реснички используются для создания потока воды из который подметает пищу. Время от времени стент закрыть коронку ресничек и контакт, принося пищу внутрь его клеточная структура.

Коронка — это не единственные реснички на стенторе, это все его тело. покрыт более короткими ресничками, которые используются для передвижения при свободном плавании.При движении стентор сжимается в овал или грушу.

Будучи одноклеточным, нет отдельных частей, составляющих «рот» или другие органы. Для пищеварения клеточная стенка обволакивает пищу и разделяется, образуя круглый пузырь, похожий на «вакуоль» внутри клетки. После питания из пища извлекается, эта вакуоль перемещается к внешней стенке клетки и «хлопает», удаляя оставшееся содержимое.С стенты имеют более высокую плотность клеток, чем вода, в которой они живут, осмотическое давление заставляет воду переноситься в клетка. Ячейка стента активно собирает эту лишнюю воду. в вакуоль и выталкивает ее; тем самым поддерживая внутренняя плотность жидкости.

Поведение

Стенторы, как и большинство инфузорий, являются фильтраторами; пассивно едят все, что попадает в их сторону.Они обычно питаются бактериями и водорослями, хотя большие стенты сообщили, что поедают коловратки или что-нибудь еще что они могут поймать.

Изображений

В отличие от некоторых вихрей, где вся колония соединен как единый организм, колония стенты — это группа отдельных организмов которые просто случайно расположены вместе.Эта колония выглядела как пятно плесень начинает формироваться на стороне сборная бутылка. Я оттолкнул его пипетку, и перенес ее в микроскоп горка.

Стенторы

Когда стенты путешествуя, они не в обычной трубе формы, но сжимаются в более овальную форму.Реснички на колокольчике закрываются, и реснички на теле используются для передвижения. Осветитель был перемещен вниз, чтобы дать больше контраст (а также появляется больше фона артефакты — сравните со следующим фото).

Другой стент в движении.

Стенторы имеют довольно сложную репродуктивную цикл. Здесь проходит разделение стента.

Пищевая вакуоль опорожняется.

Фильм о ресничках вокруг колокола стентор. Колокол — это больше, чем простая круглая форма.

Фильм, показывающий течение воды, производимое ресничками, и сократительная вакуоль усадка.

Технические подробности

Условия окружающей среды :
Температура воды : 23 ° C
Глубина : собирается около на берегу, на глубине менее 6 дюймов
Видимость по Секки : 2 метра
Местоположение : карьер на Парк Уайтклифф, Крествуд, Миссури (широта: 38,5561, долгота: -90.3688 (NAD83 / WGS84)). В парке есть старый заброшенный карьер, который, вероятно, является одним из самых глубоких водоемов в площадь. Карьер обычно закрыт для публики, хотя город был достаточно любезен, чтобы дать мне доступ.

Микроскоп: монокуляр Bausch & Lomb, окуляр 10x, Объективы с 4-кратным, 10-кратным и 40-кратным увеличением.
Подсветка: Luxeon K2 LED

Камера : Canon A540 (6 мегапикселей)

Программное обеспечение : Photoshop Elements, VirtualDub

Рекомендации

Вэнс Тартар, Биология Стентор, Оксфорд, Нью-Йорк, Pergammon Press, 1961
Это классическая работа.Большая часть текста описывает исследования стентов нарезки и нарезки, а также наблюдение за их регенерация; хотя есть подробное освещение их анатомия и поведение, а также методы культивирования.

Комментарии к автору приветствуются.

Microscopy UK Front Page

Micscape Magazine
Библиотека статей

---

Microscopy UK или их участники.

Опубликовано в июле 2007 г. выпуск журнала Micscape.

Сообщайте о любых проблемах с Интернетом или предложите общие комментарии к Micscape Редактор,
через контакт в текущем индексе Micscape.

Micscape — это он-лайн ежемесячный журнал Microscopy UK web
сайт по адресу http: // www.microscopy-uk.org.uk/

Использование клеточных культур для изучения взаимодействий инфузорий с рыбами

1.

Lynn DH (2008) Ресничные простейшие: характеристика, классификация и руководство по литературе, 3-е изд. Спрингер, Нью-Йорк

Google Scholar

2.

Финлей Б.Дж., Корлисс Дж.О., Эстебан Г., Фенчел Т. (1996) Биоразнообразие на микробном уровне: количество свободноживущих инфузорий в биосфере.Q Rev Biol 71: 221–237

Google Scholar

3.

Sanders RW (2011) Альтернативные стратегии питания протистов: введение на симпозиуме и обзор пресноводных протистов, сочетающих фотосинтез и гетеротрофию. J Eukaryot Microbiol 58 (3): 181–184

PubMed Google Scholar

4.

Джонс А. Р. (1974) Инфузории. Hutchinson and Co. Ltd, Лондон

Google Scholar

5.

Jarvis BDW, Hungate RE (1968) Факторы, влияющие на агнотобиотические культуры инфузорий рубца, Entodinium simplex . Appl Microbiol 16: 1044–1052

PubMed CAS Google Scholar

6.

Strüder-Kypke MC, Wright AG, Jerome CA, Lynn DH (2001) Параллельная эволюция гистофагии у инфузорий рода Tetrahymena . БМК Эволут Биол 1: 5

Google Scholar

7.

Basson L, Van As J (2006) Trichodinidae и другие цилиофоры (Phylum Ciliophora). В: Ву ПТК (ред.) Болезни и расстройства рыб, т. 1, 2-е изд. CAB International Publishing, Oxon, стр. 154–182

Google Scholar

8.

Glaser D (1988) Одновременное потребление бактерий и растворенного органического вещества Tetrahymena pyriformis . Microbiol Ecol 15: 189–201

CAS Google Scholar

9.

Orias E, Rasmussen L (1976) Двойная емкость для поглощения питательных веществ в Tetrahymena . IV. Рост без пищевых вакуолей и его последствия. Exp Cell Res 102: 127–137

PubMed CAS Google Scholar

10.

Corliss JO (1960) Tetrahymena chironomi sp. nov., инфузории личинок мошек, и современное состояние факультативного паразитизма у рода Tetrahymena . Паразитология 50: 111–153

PubMed CAS Google Scholar

11.

Hoffman GL, Landolt M, Camper JE, Coast DW, Stockey JL, Burek JD (1975) Болезнь пресноводных рыб, вызванная Tetrahymena corlissi Thompson, 1955, и ключ к идентификации голотрих инфузорий пресноводных рыб. J Parasitol 61: 217–233

PubMed CAS Google Scholar

12.

Лом Дж. Р., Корлисс Дж. О. (1968) Наблюдения за тонкой структурой двух видов перитриховых инфузорий рода Scyphidia и их способом прикрепления к хозяину.Trans Am Microsc Soc 87: 493–509

PubMed CAS Google Scholar

13.

Иглесиас Р., Парама А., Альварес М.Ф., Лейро Дж., Фернандес Дж., Санмартин М.Л. (2001) Филастеридес dicentrarchi (Ciliophora, Scuticociliatida) в качестве возбудителя скутикоцилиатоза у выращиваемой камбалы Scophthalmus maximus в Галисии (северо-запад Испании). Dis Aquat Org 46: 47–55

PubMed CAS Google Scholar

14.

Imai S, Tsurimaki S, Goto E, Wakita K, Hatai K (2000) Tetrahymena , инфекция у гуппи, Poecilia reticulata . Fish Pathol 35: 67–72

Google Scholar

15.

Kim SM, Cho JB, Kim SK, Nam YK, Kim KH (2004) Возникновение скутикоцилиатоза у камбалы оливковой Paralichthys olivaceus by Philasterides dicentrarchi (Ciliophora: Scuticociliatida). Dis Aquat Org 62: 233–238

PubMed Google Scholar

16.

Pimenta Leibowitz M, Ariav R, Zilberg D (2005) Экологические и физиологические условия, влияющие на Tetrahymena spp. инфекция у гуппи, Poecilia reticulata Peters. J Fish Dis 28 (9): 539–547

PubMed CAS Google Scholar

17.

Rhodes MA, Phelps RP (2008) Оценка простейших с ресничками, Fabrea salina в качестве первого корма для личинок красного луциана, Lutjanus campechtanus в крупномасштабном эксперименте по выращиванию.J Appl Aquac 20: 120–133

Google Scholar

18.

Lom JR, Nigrelli RF (1970) Brooklynella hostilis , n.g., n.sp., патогенная циртофориновая инфузория у морских рыб. J Protozool 17: 224–232

Google Scholar

19.

Buchmann K, Sigh J, Nielsen CV, Dalgaard M (2001) Ответы хозяина против инфузорий, паразитирующих на рыбах Ichthyophthirius multifiliis .Vet Parasitol 100 (1-2): 105–116

PubMed CAS Google Scholar

20.

Колорни А. (1985) Аспекты биологии Cryptocaryon Irans, и гипосоленость в качестве меры контроля у культивируемого золотоголового морского леща Sparus aurata . Dis Aquat Org 1: 19–22

Google Scholar

21.

Дикерсон Х.В., Доу Д.Л. (2006) Ichthyophthirius multifiliis и Cryptocaryon Irans.В: Ву ПТК (ред.) Болезни и расстройства рыб, т. 1, 2-е изд. CAB International Publishing, Oxon, стр. 116–153

Google Scholar

22.

Matthews RA (2005) Ichthyophthirius multifiliis Фуке и ихтиофтириоз у пресноводных костистых водорослей. Adv Parasitol 59: 159–241

PubMed CAS Google Scholar

23.

Noga EJ (2010) Болезнь рыб: диагностика и лечение, 2-е изд.Wiley-Blackwell Publishing, Ames, стр. 129–144

Google Scholar

24.

Колорни А., Берджесс П. (1997) Cryptocaryon Irans Brown 1951, причина «болезни белых пятен» у морских рыб: обновленная информация. Aquar Sci Conserv 1: 217–238

Google Scholar

25.

Montero FE, Cuadrado M, Crespo FP, Raga JA (2007) Cryptocaryon Irrisans и Enteromyxum leei , две угрозы для культуры Diplodus puntazzo в средиземноморье.Bull Eur Assoc Fish Pathol 27: 242–249

Google Scholar

26.

Tookwinas S (1990) Личинки морского окуня ( Lates calcarifer ) и морского окуня ( Epinephelus malabaricus ) в Таиланде. Достижения в тропической аквакультуре, AQUACOP, IFREMER, Actes de Colloque 9, Таити, 20 февраля — 4 марта 1989 г., стр. 645–659

27.

Yoshinaga T, Nakazoe JI (1993) Изоляция и культивирование in vitro неустановленного реснички, вызывающие скутикоцилиатоз камбалы японской ( Paralichthys olivaceus ).Гёбо Кенкью 28: 131–134

Google Scholar

28.

Kim SM, Cho JB, Lee EH, Kwon SR, Kim SK, Nam YK, Kim KH (2004) Pseudocohnilembus persalinus (Ciliophora: Scuticociliatida) — дополнительный вид, вызывающий скутикоцилиатоз у камбалы обыкновенной (). olivaceus ). Dis Aquat Org 62: 239–244

PubMed Google Scholar

29.

Munday BL, O’Donoghue PJ, Watt M, Rough K, Hawkesford T (1997) Смертельный энцефалит, вызванный scuticociliate Uronema nigricans у южного синего тунца в морских клетках Thunnus maccoyii.Dis Aquat Org 30: 17–25

Google Scholar

30.

Jones SR, Prosperi-Porta G, LaPatra SE (2010) Первое выделение Pseudocohnilembus persalinus (Ciliophora: Scuticociliatida) от радужной форели, выращенной в пресной воде, Oncorhynchus mykiss . J Parasitol 96: 1014–1016

PubMed CAS Google Scholar

31.

Jee BY, Kim YC, Park MS (2001) Морфология и биология паразита, ответственного за скутикоцилиатоз культивируемой камбалы оливковой Paralichthys olivaceus .Dis Aquat Org 47: 49–55

PubMed CAS Google Scholar

32.

Nigrelli RF, Jakowska S, Padnos M (1956) Tetrahymena как патогенный эпибионт у рыб и уроделес. J Protozool 3:10

Google Scholar

33.

Speidel CC (1954) Некоторые гистологические изменения в тканях головастиков, подвергшихся атаке реснитчатых простейших. Анат Рек. 120: 756

Google Scholar

34.

Stolk A (1960) Глаукома sp. в центральной нервной системе карпа. Природа 184: 1737

Google Scholar

35.

Johnson SK (1978) Тет-болезнь тропических рыб и оценка методов коррекции. Брошюра Лаборатории диагностики болезней рыб Университета A&M F12, стр. 7

36.

Каллинан Р.Б., Роуленд С.Дж. (1994) Болезни серебряного окуня. В: Rowland SJ, Bryant C (eds) Труды семинаров по аквакультуре серебряного окуня.Austasia Aquaculture and NSW Fisheries, Сидней, стр. 67–75

Google Scholar

37.

Герберт Б., Грэм П. (2008) Тетрагименоз, столбчатая болезнь и сепсис подвижных аэромонад у золотистого окуня, Macquaria ambiqua (Ричардсон), из Австралии. В: Bondad-Reantaso MG, Mohan CV, Crumlish M, Subasinghe RP (eds) Болезни в азиатской аквакультуре VI. Секция здоровья рыб, Азиатское рыболовное общество, Манила, стр. 179–192

Google Scholar

38.

Ferguson HW, Hick BD, Lynn DH, Ostland VE, Bailey J (1987) Язвы черепа у атлантического лосося Salmo salar , связанные с Tetrahymena sp. Dis Aquat Org 2: 191–195

Google Scholar

39.

Шульман С.С., Янковский А.В. (1984) Phylum Ciliates — Ciliophora Doflein, 1901. В: Шульман С.С. (ред.) Паразитические простейшие, т. 1, Бауэр О.Н. (ред.) Определитель паразитов пресноводных рыб СССР, т. 140 определителей фауны СССР.Наука, Ленинград, стр. 252–280

40.

Понпорнписит А., Эндо М., Мурата Х (2000) Экспериментальное заражение инфузорий Tetrahymena pyriformis на декоративных рыбах. Fish Sci 66: 1026–1031

CAS Google Scholar

41.

Leibovitz L (1980) Хилодонеллиоз. J Am Vet Med Assoc 177 (3): 222–223

PubMed CAS Google Scholar

42.

Langdon JS, Gudkovs N, Humphrey JD, Saxon EC (1985) Смерть австралийских пресноводных рыб, связанная с инфекцией Chilodonella hexasticha . Aust Vet J 62: 409–413

PubMed CAS Google Scholar

43.

Wiles MD, Cone D, Odense PH (1985) Исследования Chilodonella cyprini и C. hexasticha (Protozoa: ciliata) с помощью сканирующей электронной микроскопии. Кан Дж Зоол 63: 2483–2487

Google Scholar

44.

Лом Дж. Р., Дыкова И. (1992) Простейшие паразиты рыб. Развитие аквакультуры и науки о рыболовстве, том 26. Elsevier, Amsterdam

45.

Gong J, Song W (2006) Описание новой морской циртофоридной инфузории, Brooklynella sinensis n.sp. из Китайского моря с новым определением рода Brooklynella (Protozoa, Ciliophora, Cyrtophorida). Zootaxa 1113: 41–49

Google Scholar

46.

Молнар К., Рейнхардт М. (1978) Поражения кишечника у белого амура Ctenopharyngodon idella (Valenciennes), инфицированные Balantidium ctenopharyngodonis . Chem J Fish Dis 1: 151–156

Google Scholar

47.

Lom J (1973) Адгезивный диск из Trichodinella epizootica : ультраструктура и повреждение ткани хозяина. Folia Parasitol 20: 193–202

Google Scholar

48.

Beck BH, Bakal RS, Brunner CJ, Grizzle JM (2006) Распространение вируса и признаки заболевания после иммерсионного воздействия вируса большеротого окуня. J Aquat Anim Health 18 (3): 176–183

Google Scholar

49.

Лисс С.Н., Дроппо И.Г., Фланниган Д.Т., Леппард Г.Г. (1996) Флок-архитектура в сточных водах и естественных речных системах. Environ Sci Technol 30: 680–686

CAS Google Scholar

50.

Творог CR (1963) Флокуляция взвешенных веществ Paramecium caudatum . J Gen Microbiol 33: 357–363

PubMed CAS Google Scholar

51.

Петтикрю Е.Л., Рекс Дж.Ф., Альберс С.Дж. (2011) Биодинамическая доставка органических веществ между пресноводными и морскими системами: роль флокуляции в водотоках тихоокеанских лососей. J N Am Benthol Soc 30: 779–786

Google Scholar

52.

Fredrickson AG (1991) Сегрегированные, структурированные, распределенные модели и их роль в микробной экологии: тематическое исследование, основанное на работе, проделанной на фильтрующем питании инфузории Tetrahymena грушевидный . Microb Ecol 22: 139–159

PubMed CAS Google Scholar

53.

Хабет М., Александр М. (1978) Плотность простейших и сосуществование простейших хищников и бактериальных жертв. Экология 59: 140–146

Google Scholar

54.

Тейлор В.Д. (1978) Ответы роста инфузорий простейших на численность их бактериальной добычи. Microb Ecol 4: 207–214

Google Scholar

55.

Вайенас Д.В., Павлоу С. (1999) Хаотическая динамика пищевой сети в хемостате. Math Biosci 162: 69–84

PubMed CAS Google Scholar

56.

Hansen DL, Clark JJ, Ishii S, Sadowsky MJ, Hicks RE (2008) Источники и поглотители Escherichia coli в придонных и пелагических рыбах.J. Great Lakes Res 34: 228–234

Google Scholar

57.

Чаудхури Р.Р., Хендерсон И.Р. (2012) Эволюция филогении Escherichia coli . Заразить Genet Evolut 12: 214–226

Google Scholar

58.

Sambanis A, Fredrickson AG (1987) Долгосрочные исследования взаимодействия инфузорий и бактерий. J Gen Microbiol 133: 1619–1630

Google Scholar

59.

Самбанис А., Фредриксон А.Г. (1988) Устойчивость бактерий в присутствии жизнеспособных, неинцистирующих бактериоядных инфузорий. Microb Ecol 16: 197–211

PubMed CAS Google Scholar

60.

Мацуи К., Коно С., Сакей А., Исии Н., Мин М.Г., Кавабата З.И. (2000) Прямые и косвенные взаимодействия для сосуществования в определяемом видами микромире. Hydrobiologia 435: 109–116

Google Scholar

61.

Weeks BA, Sommer SR, Dalton HP (1988) Хемотаксический ответ рыбных макрофагов на Legionella pneumophila : корреляция с патогенностью. Dis Aquat Org 5: 35–38

Google Scholar

62.

King CH, Shotts EB, Wooley RE, Porter KG (1988) Выживание колиформных бактерий и бактериальных патогенов с простейшими во время хлорирования. Appl Environ Microbiol 54: 3023–3033

PubMed CAS Google Scholar

63.

Brandl MT, Rosenthal BM, Haxo AF, Berk SG (2005) Повышенная выживаемость Salmonella enterica в пузырьках, высвобождаемых передающимися через почву видами Tetrahymena . Appl Environ Microbiol 71 (3): 1562–1569

PubMed CAS Google Scholar

64.

Ghaffari P, St. Denis CH, Power ME, Jin X, Tsou V, Bols NC, Tang X (2008) Влияние углеродных нанотрубок на поглощение и переваривание бактерий простейшими инфузориями.Nat Nanotechnol 3: 347–351

Google Scholar

65.

Berk SG, Faulkner G, Garduno E, Joy MC, Orti-Jimenez MA, Garduno RA (2008) Упаковка живых Legionella pneumophila в гранулы, выбрасываемые Tetrahymena spp. не требует бактериальной репликации и зависит от Dot / Icm-опосредованного механизма выживания. Appl Environ Micrbiol 74: 2187–2199

CAS Google Scholar

66.

Rehfuss MYM, Parker CT, Brandl MT (2011) Транскрипционная подпись Salmonella в фагосомах Tetrahymena и роль устойчивости к кислоте при прохождении через протист. ISME J 5: 262–273

PubMed CAS Google Scholar

67.

Koubar M, Rodier MH, Garduno RA, Frere J (2011) Прохождение через Tetrahymena tropicalis повышает устойчивость к стрессу и инфекционность Legionella pneumophila .FEMS Microbiol Lett 325: 10–15

PubMed CAS Google Scholar

68.

Пушкарева В., Ермолаева С. (2010) Listeria monocytogenes Фактор вирулентности Листериолизин О способствует росту бактерий в совместном культивировании с инфузорией Tetrahymena pyriformis , вызывает выживание простейших бактерий внутри цист. BMC Microbiol 10:26

PubMed Google Scholar

69.

Lainhart W, Stolfa G, Koudelka GB (2009) Токсин шига как бактериальная защита от эукариотического хищника, Tetrahymena thermophila . J Bacteriol 191 (16): 5116–5122

PubMed CAS Google Scholar

70.

Li J, Zhang XL, Liu YJ, Lu CP (2011) Разработка модели заражения Aeromonas hydrophila с использованием простейших Tetrahymena thermophila . FEMS Microbiol Lett 316 (2): 160–168

PubMed CAS Google Scholar

71.

Молмерет М., Хорн М., Вагнер М., Сантик М., Абу Квайк И. (2005) Амебы как тренировочная площадка для внутриклеточных бактериальных патогенов. Appl Environ Microbiol 71: 20–28

PubMed CAS Google Scholar

72.

Benghezal M, Adam E, Lucas A, Burn C, Orchard MG, Deuschel C, Valentino E, Braillard S, Paccaud JP, Cosson P (2007) Ингибиторы бактериальной вирулентности, идентифицированные в модели суррогатного хозяина. Cell Microbiol 9 (5): 1336–1342

PubMed CAS Google Scholar

73.

Kling C, Olin G, Fahraeus J, Norlin G (1942) Сточные воды как переносчик и распространитель вируса полиомиелита. J Intern Med 112 (3–4): 217–249

Google Scholar

74.

Groupe V, Pugh LH (1952) Инактивация вируса гриппа и вирусного гемагглютинина инфузорией Tetrahymena geleii . Наука 115: 307–308

PubMed CAS Google Scholar

75.

Kovacs E, Bucz B, Kolompar G (1966) Распространение вирусов млекопитающих у протистов I. Визуализация меченного флуорохромом вируса EMC в дрожжах и Tetrahymena . Life Sci 5: 2117–2126

Google Scholar

76.

Jareno MA (1987) Некоторые ультраструктурные изменения, вызываемые вирусом осповакцины у Onchodromus — acuminatus (ciliata, hypotricha). Acta Protozool 26: 9–13

Google Scholar

77.

Teras J, Entzeroth R, Scholtyseck E, Kesa L, Schrauf I (1988) Наблюдение с помощью светового и электронного микроскопа индуцированного вирусом Tetrahymena pyriformis в мозге новорожденных мышей ( Mus musculus albinicus ). Parasitol Res 74: 221–227

PubMed CAS Google Scholar

78.

Сепп Т., Ярвекулг Л., Саарма М. (1992) Исследования взаимоотношений вирус-простейшие на модели свободноживущих инфузорий Tetrahymena pyriformis и аденовируса типа 3.Eur J Protistol 28: 170–174

PubMed CAS Google Scholar

79.

Ким Т.Д., Унно Х (1996) Роль микробов в удалении и инактивации вирусов в системе биологической очистки сточных вод. Water Sci Technol 33: 243–250

CAS Google Scholar

80.

Benyahya M, Laveran H, Bohatier J, Senaud J, Ettayebi M (1997) Взаимодействие между мерцательными простейшими Tetrahymena pyriformis и обезьяньим ротавирусом SA11.Eur J Protistol 33: 211–213

Google Scholar

81.

Groupe V, Hermann EC, Rauscher FJ (1955) Проглатывание и уничтожение вируса гриппа свободноживущими инфузориями Tetrahymena pyriformis . Proc Soc Exp Biol Med 88: 479–482

PubMed CAS Google Scholar

82.

Moewus-Kobb L (1965) Исследования вируса IPN на морских хозяевах. Ann NY Acad Sci 126: 329–342

Google Scholar

83.

Gifford DJ (1991) Трофическая связь между простейшими и многоклеточными животными в пелагических экосистемах. J Protozool 38: 81–86

Google Scholar

84.

Montagnes DJS, Dower JF, Figueiredo GM (2010) Трофическая связь протозоопланктона и ихтиопланктона: упущенный аспект водных пищевых сетей. J Euk Microbiol 57: 223–228

PubMed Google Scholar

85.

Фуками К., Ватанабэ А., Фудзита С., Ямаока К., Нисидзима Т. (1999) Хищничество голых простейших микрозоопланктона личинками рыб.Mar Ecol Prog Ser 185: 285–291

Google Scholar

86.

Nagano N, Iwatsuki Y, Okazaki Y, Nakata H (2001) Стратегия кормления личинок японской песчанки по отношению к простейшим инфузориям в районе термохалинного фронта. J Oceanography 57: 155–163

Google Scholar

87.

Last JM (1978) Пища четырех видов личинок Pleuronectiforn в восточной части Ла-Манша и южной части Северного моря.Мар Биол 45: 359–368

Google Scholar

88.

Last JM (1978) Пища трех видов личинок гадоидов в восточной части Ла-Манша и южной части Северного моря. Мар Биол 48: 377–386

Google Scholar

89.

Фигейредо GM, Nash RDM, Montagnes DJS (2007) Вносят ли простейшие существенный вклад в рацион личинок рыб в Ирландском море? J Mar Biol Assoc 87: 843–850

Google Scholar

90.

Ohman MD, Theilacker GH, Kaupp SE (1991) Иммуноцитохимическое обнаружение хищничества на реснитчатых простейших личинками северного анчоуса ( Engraulis mordax ). Биол Бык 181: 500–504

Google Scholar

91.

Nagano N, Iwatsuki Y, Kamiyama T., Nakata H (2000) Влияние морских инфузорий на выживаемость личиночных рыб-хирургов, питающихся первым кормом, Paracanthurus hepatus : лабораторные эксперименты по выращиванию. Hydrobiologia 432: 149–157

Google Scholar

92.

Хант фон Хербинг I, Галлагер С.М. (2000) Кормление личинок ранней атлантической трески ( Gadus morhua ), питающихся простейшими ( Balanion sp.) И копеподой науплиусом ( Pseudodiaptomus sp.). Мар Биол 136: 591–602

Google Scholar

93.

Ханна Б.А., Лилли Д.М. (1974) Рост Uronema marinum в среде определенного химического состава. Мар Биол 26: 153–160

CAS Google Scholar

94.

St. Denis CH, Pinheiro MDO, Power ME, Bols NC (2010) Влияние проб соленой и городской воды на бактерии инфузорий, Tetrahymena thermophila . Environ Pollut 158: 502–507

PubMed CAS Google Scholar

95.

Johnson WH (1941) Популяции инфузорий. Am Nat 75: 438–457

Google Scholar

96.

Hargitt GT, Fray WW (1917) Рост Paramecium в чистых культурах бактерий.J Exp Zool 22: 24–55

Google Scholar

97.

Watson PJ, Ohtaguchi K, Fredrickson AG (1981) Кинетика роста инфузорий Tetrahymena pyriformis на Escherichia coli . J Gen Microbiol 122: 323–333

PubMed CAS Google Scholar

98.

Ducoff HS, Williams SM, Syn TB, Butler BD (1964) Количественные исследования метаболизма фаготрофных инфузорий.I. Рост Tetrahymena pyriformis W на жизнеспособных и убитых бактериях. J Protozool 11: 309–313

Google Scholar

99.

Sambanis A, Duke CH (1993) Поглощение глюкозы Tetrahymena pyriformis в периодических культурах с питательными или инертными твердыми частицами. J Environ Sci Health A 28: 729–749

Google Scholar

100.

Burbanck WD (1942) Физиология инфузорий Colpidium colpoda .I. Влияние различных бактерий в качестве пищи на скорость деления Colpidium colpoda . Physiol Zool 15: 342–362

Google Scholar

101.

Kidder GW, Stuart CA (1939) Исследования роста инфузорий. II. Пищевой фактор в росте, размножении и инцистировании Colpoda. Physiol Zool 12: 341–347

Google Scholar

102.

Lwoff A (1923) Sur la Nutrition des Infusoires.C R Acad Sci Paris 176: 928–930

CAS Google Scholar

103.

Ориас Э., Гамильтон Е.П., Ориас Дж.Д. (2000) Tetrahymena как лабораторный организм: полезные штаммы, культура клеток и поддержание клеточной линии. Методы Cell Biol 62: 189–211

PubMed CAS Google Scholar

104.

Асаи Д. Д., Форни Д. Д. (1999) Tetrahymena thermophila . Методы Cell Biol 62: 1–579

Google Scholar

105.

Kidder GW, Dewey VC (1951) Биохимия инфузорий в чистой культуре. В: Lwoff A (ed) Биохимия и физиология простейших. Academic Press, New York, pp 323–400

Google Scholar

106.

Szablewski L, Andreasen PH, Tiedtke A, Florin-Christensen J, Florin-Christensen M, Rasmussen L (1991) Tetrahymena thermophila : рост в синтетической питательной среде в присутствии и в отсутствие глюкозы. J Protozool 38: 62–65

CAS Google Scholar

107.

Hagemeister JJ, Grave M, Kristiansen TB, Assaad F, Hellung-Larsen P (1999) Интерфейс-опосредованная смерть безусловных клеток Tetrahymena : влияние состава среды. J Eukaryot Microbiol 46: 6–11

PubMed CAS Google Scholar

108.

Hellung-Larsen P (2005) Клонирование клеток Tetrahymena в среде определенного химического состава возможно в присутствии поверхностно-активных веществ или при пониженной температуре.J Biotechnol 115: 167–177

PubMed CAS Google Scholar

109.

Holz GG, Erwin J, Rosenbaum N, Aaronson S (1962) Ингибирование трипаранолом Tetrahymena и его предотвращение липидами. Arch Biochem Biophys 98: 312–322

PubMed CAS Google Scholar

110.

Sripati CE (1987) Улучшенная химически определенная среда для массовых культур Tetrahymena , поглощающая питательные вещества и регулирующая рост.J Gen Microbiol 133: 2581–2588

CAS Google Scholar

111.

Christensen ST, Rasmussen L (1992) Доказательства факторов роста, которые контролируют размножение клеток у Tetrahymena thermophila . Acta Protozool 31: 215–219

Google Scholar

112.

Kristiansen TB, Hagemeister JJ, Grave M, HellungLarsen P (1996) Поверхностная гибель безусловных клеток Tetrahymena : влияние физических параметров, факторов роста, гормонов и сурфактантов.J Cell Physiol 169: 139–148

PubMed CAS Google Scholar

113.

Сэнфорд Ю.М., Ориас Э. (1981) Phenylketonuric Tetrahymena : мутанты фенилаланинингидроксилазы и другие ауксотрофы тирозина. Proc Natl Acad Sci USA 78: 7614–7618

PubMed CAS Google Scholar

114.

Henglong XU, Shu M, Jiang Y, Gao S, Min GS, Al-Rasheid KAS (2011) Динамика популяций морских инфузорий Euplotes vannus (Protozoa, Ciliphora) в различных искусственных морских водах.Чин Дж. Оушен Лимнол 29: 109–117

Google Scholar

115.

Soldo AT, Merlin EJ (1972) Выращивание морских инфузорий, свободных от симбиотов, в аксенической среде. J Protozool 19: 519–524

Google Scholar

116.

Гамильтон Р.Д., Преслан Дж. Э. (1969) Культурные характеристики инфузорий пелагического морского гименостома, Uronema видов. J Exp Mar Biol Ecol 4: 90–99

Google Scholar

117.

Lee JJ, Tietjen JH, Mastropaolo CA (1971) Аксеническая культура морской инфузории гименостома Uronema marinum в среде с определенным химическим составом. J Protozool 18 (Дополнение): 10

Google Scholar

118.

Parker JG (1976) Культурные характеристики морских мерцательных простейших, Uronema marinum Dujardin. J Exp Mar Biol Ecol 24: 213–226

Google Scholar

119.

Crosbie PBB, Munday BL (1999) Факторы окружающей среды и химические агенты, влияющие на рост патогенных морских инфузорий Uronema nigricans . Dis Aquat Org 36: 213–219

PubMed CAS Google Scholar

120.

Perez-Uz B (1995) Изменчивость скорости роста в географически разнообразных клонах Uronema (Ciliphora: Scuticociliatida). FEMS Microbiol Ecol 16: 193–204

CAS Google Scholar

121.

Аль-Марзук А., Азад И.С. (2007) Кинетика роста, протеазная активность и гистофагальная способность Uronema sp. заражение культивированным серебряным помфретом Pampus argenteus в Кувейте. Dis Aquat Org 76: 49–56

PubMed Google Scholar

122.

First MR, Hollibaugh JT (2009) Высокомолекулярное соединение DOC, декстран, попадает в организм бентосных инфузорий Uronema marinum , но не способствует росту инфузорий.Aquat Microb Ecol 57: 79–97

Google Scholar

123.

Bernard C, Fenchel T (1996) Некоторые микроаэробные инфузории являются факультативными анаэробами. Eur J Protistol 32: 293–297

Google Scholar

124.

Иглесиас Р., Парама А., Альварес М.Ф., Лейро Дж., Санмартин М.Л. (2002) Антипротозойные средства, эффективные in vitro против щитовидного патогена рыб Philasterides dicentrarchi .Dis Aquat Org 49: 191–197

PubMed CAS Google Scholar

125.

Salinas I, Maas EW, Muñoz P (2011) Характеристика кислых фосфатаз морских скутикоцилиатных паразитов и их активация факторами хозяина. Паразитология 138: 836–847

CAS Google Scholar

126.

Нерад Т.А., Даггетт П.М. (1992) Культивирование скутикоцилиатов. В: Lee JJ, Soldo AT (ed) Протоколы в протозоологии.Allen Press Inc., Lawrence, pp A-50.1 – A-50.6

127.

Clamp JC, Coats DW (2000) Planeticovorticella finleyi n.g., n.sp. (Peritrichia, Vorticellidae) — планктонная инфузория с полиморфным жизненным циклом. Инвертебр Биол 119: 1–16

Google Scholar

128.

Alvarez-Pellitero P, Palenzuela O, Padros F, Sitja-Bobadilla A, Riaza A, Silva R, Aran J (2004) Histophagous scuticociliatitids (Ciliophora) паразитирует на тюбике Scophthalmus maximology, Scophthalmus maximology и вирулентность.Folia Parasitol 51: 177–187

PubMed Google Scholar

129.

Bols NC, Dayeh VR, Lee LEJ, Schirmer K (2005) Использование линий клеток рыб в токсикологии рыб. В: Moon TW, Mommsen TP (eds) Биохимия и молекулярная биология рыб и токсикология окружающей среды, том 6. Elsevier Science, Амстердам, стр. 43–84

Google Scholar

130.

Хэм Р.Г. (1984) Составление основных питательных сред.В: Barnes DW, Sirbasku DA, Sato GH (eds) Методы культивирования клеток для молекулярной и клеточной биологии, том 1. Allan R Liss, New York, pp 2–21

131.

Wolf K, Ahne W (1982) Культура клеток рыб. В: Maramorosch K (ed) Advances in cell culture, vol 2. Academic Press, New York, pp 305–328

132.

Leibovitz A (1963) Рост и поддержание культур тканей / клеток в условиях свободного газообмена с атмосфера. Am J Hyg 78: 173–180

PubMed CAS Google Scholar

133.

Иглесиас Р., Парама А., Альварес М.Ф., Лейро Дж., Аха С., Санмартин М.Л. (2003) Требования роста in vitro для патогена рыб Philasterides dicentrarchi (Ciliophora, Scuticociliatida). Vet Parasitol 111: 19–30

PubMed CAS Google Scholar

134.

Castro R, Paramá A, Barja JL, Leiro J, Sanmartin ML, Lamas J (2007) Культура инфузорий гистофага Philasterides dicentrarchi (Ciliophora: Scuticociliatia) в тканях рыб.J Fish Dis 30: 239–242

PubMed CAS Google Scholar

135.

Harikrishnan R, Jin CN, Kim MC, Kim JS, Balasundaram C, Heo MS (2010) Эффективность и иммуномодуляция химиотерапевтических средств против scuticociliate Philasterides dicentrarchi в оливковой камбале. Exp Parasitol 124: 306–314

PubMed CAS Google Scholar

136.

Андерсон С.А., Халстон Д.А., Макви С.М., Уэбб В.Л., Смит П.Дж. (2009) Культивирование in vitro и криоконсервация Uronema marinum , выделенного из выращиваемого новозеландского групера ( Polyprion oxygeneios ).J Microbiol Methods 79: 62–66

PubMed CAS Google Scholar

137.

Ekless LM, Matthews RA (1993) Ichthyophthirius multifiliis : аксеническая изоляция и краткосрочное поддержание в выбранных однофазных средах. J Fish Dis 16: 437–447

Google Scholar

138.

Ябот А.В., Сонг Ю.Л. (2004) Кратковременное культивирование in vitro Cryptocaryon Irans , простейших паразитов морских рыб.Fish Pathol 39: 175–181

Google Scholar

139.

Фрайер Дж. Л., Ланнан С. Н. (1994) Три десятилетия культивирования рыбных клеток: текущий список клеточных линий, полученных из рыб. J Методы культа тканей 16: 87–94

Google Scholar

140.

Лакра В.С., Сваминатан Т.Р., Джой К.П. (2011) Разработка, характеристика и хранение линий клеток рыб: обзор. Fish Physiol Biochem 37: 1–20

PubMed CAS Google Scholar

141.

Ли LEJ, Dayeh VR, Schirmer K, Bols NC (2009) Применение и потенциальное использование клеточных линий жабр рыб: примеры с RTgill-W1. In Vitro Cell Dev Biol Anim 45: 127–134

PubMed CAS Google Scholar

142.

Вольф К., Манн Дж. А. (1980) Линии и вирусы позвоночных Poikilotherm: текущий список рыб. In Vitro 16: 168–179

PubMed CAS Google Scholar

143.

Schaffer WI (1990) Терминология, связанная с культурой клеток, тканей и органов, молекулярной биологией и молекулярной генетикой. In Vitro Cell Dev Biol Anim 26: 97–101

Google Scholar

144.

Winton J, Batts W, deKinkelin P, LeBerrre M, Bremont M, Fijan N (2010) Текущие линии клеток эпителиомы papulosum cyprini (EPC) загрязнены толстоголовым гольяном, Pimephales promelas , клетками . J Fish Dis 33: 701–704

PubMed CAS Google Scholar

145.

Ganassin RC, Bols NC (1998) Развитие из селезенки радужной форели клеточной линии RTS11 в линии моноцитов / макрофагов. Fish Shellfish Immun 8: 457–476

Google Scholar

146.

Болс Н.С., Моссер Д.Д., Стилс Г.Б. (1992) Температурные исследования и последние достижения в области рыбных клеток in vitro. Comp Biochem Physiol 103A: 1–14

Google Scholar

147.

Hurley LM (1999) Ichthyophthirius multifiliis Fouquet: разработка и оценка систем in vitro для длительного обслуживания.Кандидатская диссертация, Плимутский университет, Плимут, Великобритания

148.

Пуговкин Д., Фелляйзен Р., Вали Т. (2001) Метод на основе ПЦР для обнаружения заражений Tetrahymena crolissi в культурах Ichthyophthirius in vitro. Bull Eur Assoc Fish Pathol 21: 222–227

Google Scholar

149.

Xu D, Klesius PH, Shoemaker CA, Evans JJ (2000) Раннее развитие Ichthyophthirius multifiliis у канального сома in vitro.J Aquat Anim Health 12: 290–296

Google Scholar

150.

Nielsen CV, Buchmann CV (2000) Продолжительное культивирование in vitro Ichthyophthirius multifiliis с использованием клеточной линии EPC в качестве субстрата. Dis Aquat Org 42: 215–219

PubMed CAS Google Scholar

151.

Yoshinaga T, Akiyama K, Nishida S, Nakane M, Ogawa K, Hirose H (2007) Техника культивирования in vitro для Cryptocaryon Irans , паразитарных инфузорий морских костистых.Dis Aquat Org 78: 155–160

PubMed Google Scholar

152.

Lee EH, Kim KH (2008) Могут ли поверхностные иммобилизационные антигены Philasterides dicentrarchi (Ciliophora: Scuticociliatida) использоваться в качестве антигенов-мишеней для разработки вакцин для выращиваемых рыб? Fish Shellfish Immunol 24: 142–146

PubMed Google Scholar

153.

Lee EH, Kim KH (2008) Иммобилизационная антиген-независимая защита оливковой камбалы ( Paralichthys olivaceus ) против инфекции Philasterides dicentrarchi (Ciliophora: Scuticociliatia).Аквакультура 279 (1–4): 211–213

Google Scholar

154.

Lee EH, Kim KH (2009) CpG-ODN увеличивает устойчивость камбалы оливковой ( Paralichthys olivaceus ) против инфекции Philasterides dicentrarchi (Ciliophora: Scuticociliatia). Иммунол рыбных моллюсков 26 (1): 29–32

PubMed Google Scholar

155.

Jung SJ, Im EY, Strüder-Kypke MC, Kitamura SI, Woo PTK (2011) Последовательности гена малой субъединицы рибосомной РНК и митохондриальной цитохром с оксидазы субъединицы 1 21 штамма паразитарного scuticociliate avidus ( Ciliophora, Scuticociliatia).Parasitol Res 108: 1153–1161

PubMed Google Scholar

156.

Квон С.Р., Ким С.С., Ким К.Х. (2003) Различия между краткосрочными и долгоживущими культурами Uronema marinum (Ciliophora: Scuticociliatida) по ингибирующей активности хемилюминесценции, антиоксидантным ферментам и активности протеаз. Аквакультура 221: 107–114

CAS Google Scholar

157.

Leibowitz MP, Ofir R, Golan-Goldhirsh A, Zilberg D (2009) Цистеиновые протеазы и кислые фосфатазы способствуют развитию Tetrahymena spp., патогенность у гуппи Poecilia reticulate . Vet Parasitol 166 (1-2): 21–26

PubMed CAS Google Scholar

158.

Парама А., Кастро Р., Арранц Дж. А., Санмартин М.Л., Ламас Дж., Лейро Дж. (2007) Цистеиновые протеиназы скутикоцилиата модулируют функции лейкоцитов турбо. Fish Shellfish Immunol 23: 945–956

PubMed Google Scholar

159.

Piazzon MC, Wiegertjes GF, Leiro J, Lamas J (2011) Устойчивость турбот к Philasterides dicentrarchi больше зависит от гуморальных, чем от клеточных иммунных ответов.Fish Shellfish Immunol 30: 1339–1347

PubMed CAS Google Scholar

160.

Leiro J, Piazzón MC, Budiño B, Sanmartin ML, Lamas J (2008) Опосредованное комплементом убийство Philasterides dicentrarchi (Ciliophora) сывороткой палтуса: относительная важность альтернативных и классических путей. Parasite Immunol 30: 535–543

PubMed CAS Google Scholar

161.

Piazzon C, Lamas J, Leiro JM (2011) Роль скутикоцилиатных протеиназ в успехе инфекции у камбалы, Psetta maxima (L.). Parasite Immunol 33: 535–544

PubMed CAS Google Scholar

162.

Kwon SR, Kim CS, Ahn KJ (2002) Протеазы в клеточном лизате Uronema marinum (Ciliata: Scuticociliatida), условно-патогенного микроорганизма культивируемой камбалы оливковой ( Paralichthys olivaceus ).J Fish Sci Technol 5: 145–149

CAS Google Scholar

163.

Leiro J, Arranz JA, Iglesias R, Ubeira FM, Sanmartin ML (2004) Влияние инфузории гистиофага Philasterides dicentrarchi на ответы фагоцитов турбо. Рыбные моллюски Immunol 17: 27–39

PubMed CAS Google Scholar

164.

Парама А., Кастро Р., Ламас Дж., Санмартин М.Л., Сантамарина М.Т., Лейро Дж. (2007) Скутикоцилиатные протеиназы могут модулировать иммунный ответ турбо, вызывая апоптоз в пронефрических лейкоцитах.Int J Parasitol 37: 87–95

PubMed Google Scholar

165.

Heneberg P (2012) В поисках дымового пистолета: протеинтирозинфосфатазы как инструменты и мишени одноклеточных микроорганизмов и вирусов. Curr Med Chem 19: 1530–1566

PubMed CAS Google Scholar

166.

Leibowitz MP, Chettri JK, Ofir R, Zilberg D (2010) Разработка лечения системного лечения Tetrahymen a sp.инфекция у гуппи, Poecilia reticulata Peters. J Fish Dis 33 (6): 473–480

PubMed CAS Google Scholar

167.

Парама А., Иглесиас Р., Альварес М.Ф., Лейро Дж., Убейра Ф.М., Санмартин М.Л. (2004) Активность цистеиновой протеиназы у патогена рыб Philasterides dicentrarchi (Ciliophora: Scuticociliatida). Паразитол 128: 541–548

Google Scholar

168.

Sohn H-J, Kim J-H, Shin M-H, Song K-J, Shin H-J (2010) Nf-актин является важным фактором образования пищевых чашек и цитотоксичности патогенных Naegleria fowleri . Parasitol Res 106: 917–924

PubMed Google Scholar

169.

Brown T (1978) Наблюдения с помощью световой микроскопии цитопатогенности Naegleria fowleri в культурах клеток эмбриона мыши. J Med Microbiol 11: 249–259

PubMed CAS Google Scholar

170.

Brown T (1979) Ингибирование амеб-специфической антисывороткой и цитохалазином B цитопатогенности Naegleria fowleri в культурах клеток эмбриона мыши. J Med Microbiol 12: 355–362

PubMed CAS Google Scholar

171.

Midlej V, Benchimol M (2010) Trichomonas vaginalis убивает и ест — свидетельство фагоцитарной активности как цитопатического эффекта. Паразитология 137: 65–76

PubMed CAS Google Scholar

172.

Budiño B, Pata MP, Leiro J, Lamas J (2012) Различия в чувствительности in vitro к ресвератролу и другим химическим соединениям среди нескольких изолятов Philasterides dicentrarchi из камбалы. Parasitol Res 110 (4): 1573–1578

PubMed Google Scholar

173.

Jin CN, Harikrishnan R, Moon YG, Kim MC, Kim JS, Balasundaram C, Heo MS (2010) Эффективность химиотерапевтических средств против скутикоцилиата Philasterides dicentrarchi , паразита камбалы оливы.Vet Parasitol 168: 19–24

PubMed CAS Google Scholar

174.

Paramá A, Luzardo A, Blanco-Méndez J, Sanmartin ML, Leiro J (2005) Эффективность сшитых глутаральдегидом микросфер хитозана in vitro против патогенных инфузорий рыб Philasterides dicentrarchi . Dis Aquat Org 64: 151–158

PubMed Google Scholar

175.

Paramá A, Piazzon MC, Lamas J, Sanmartin ML, Leiro J (2007) Активность нестероидного противовоспалительного препарата индометацин in vitro на скутикоцилиатном паразите выращиваемой камбалы.Vet Parastiol 148: 318–324

Google Scholar

176.

Yoshinaga Y, Im HJ, Ogawa NK (2011) Эффективность ионофоров in vitro и in vivo против Cryptocaryon tearans . Аквакультура 321: 167–172

CAS Google Scholar

177.

Picón-Camacho SM, Ruiz de Ybáñez MR, Holzer AS, Arizcun Arizcun M, Muñoz P (2011) Лечение in vitro теронной стадии простейших инфузорий Cryptocaryon раздражает .Dis Aquat Org 94: 167–172

PubMed Google Scholar

178.

Arregui L, Serrano S, Linares M, Perez-Uz B, Guinea A (2007) Вклад инфузорий в биоагрегацию: лабораторные анализы с аксеническими культурами Tetrahymena thermophila . Int Microbiol 10: 91–96

PubMed CAS Google Scholar

179.

Calilliere-Ethuin P, Duyme F, Tonon F, Jeanfils J, De Coninck J (1998) Оптимизация роста Tetrahymena rostrata с использованием пищевых побочных продуктов в качестве источника азота.Biotechnol Tech 12: 177–181

Google Scholar

180.

Legault RO, Delisle C (1967) Острая инфекция, вызванная Glugea hertwigi Weissenberg у молодых годовалого корюшка радужной корюшки Osmerus eperlanus mordax (Mitchill). Can J Zool 45 (6): 1291–1292

PubMed Google Scholar

181.

Tobback E, Decostere A, Hermans K, Haesebrouck F, Chiers K (2007) Yersinia ruckeri инфекции лососевых рыб.J Fish Dis 30: 257–268

PubMed CAS Google Scholar

182.

Monaghan SR, Kent ML, Watral VG, Kaufman RJ, Lee LEJ, Bols NC (2009) Культуры животных клеток в исследовании микроспоридий: их общие роли и их конкретное использование для микроспоридий рыб. In Vitro Cell Dev Biol Anim 45: 135–147

PubMed Google Scholar

183.

Weidner E, Sibley LD (1985) Фагоцитированные внутриклеточные микроспоридии блокируют закисление фагосом и слияние фагосом и лизосом.J Protozool 32: 311–317

PubMed CAS Google Scholar

184.

Welch TJ, Wiens GD (2005) Создание вирулентного зеленого флуоресцентного белка с меткой Yersinia ruckeri и обнаружение в тканях форели после внутрибрюшинного и иммерсионного введения. Dis Aquat Org 67: 267–272

PubMed CAS Google Scholar

185.

Power ME, Sotornik D, Pinheiro MDO, Dayeh VR, Butler BJ, Slawson R, Lee LEJ, Lynn DH, Bols NC (2006) Разработка флуоресцентного многолуночного анализа для оценки способности мерцательных простейших Tetrahymena для выявления бактерий в пробах воды.Water Qual Res J Canada 41 (3): 307–315

CAS Google Scholar

186.

Май RC (1970) Кормление личинок морских рыб в лаборатории: обзор. CalCOFI Rep 14: 76–83

Google Scholar

187.

Decamp O, Moss S, Nagano N (2001) Живые простейшие: подходящий живой корм для личинок рыб и креветок? Glob Aquac Advocate 4: 28–29

Google Scholar

188.

Лоуренс C (2007) Разведение рыбок данио ( Danio rerio ): обзор. Аквакультура 269: 1–20

Google Scholar

189.

deConninck J, Verdier-Denantes I, Duyme F, Bouquelet S, Dumortier V (2000) Modeling Tetrahymena thermophila рост и продукция протеазы. J Ind Microbiol Biotechnol 25: 58–61

Google Scholar

190.

Кий Т. (1998) Гетеротрофные протисты — новый вызов в биотехнологии.Protist 149: 17–21

PubMed CAS Google Scholar

191.

Манро И.Г. (1985) Простейшие как источник коммерчески производимых ферментов: обзор. Process Biochem 20: 139–144

CAS Google Scholar

192.

Dive D, Piot JM, Sannier F, Guillochon D, Charet P, Lutrat S (1989) Использование ферментных гидролизатов гемоглобина, приготовленных на экспериментальной установке, в качестве источника азота для выращивания трех видов. из Tetrahymena .Enzyme Microb Technol 11: 165–169

CAS Google Scholar

193.

Saliba R, Dive D, Devis R (1983) Недорогая и практичная среда для выращивания массовых культур Tetrahymena . Protistologica 19: 417–421

Google Scholar

194.

Ethuin P, de Connick J (1996) Расширение масштабов для массового культивирования чувствительного к температуре мутанта Tetrahymena thermophila SJ180.Biotechnol Tech 10: 507–512

CAS Google Scholar

195.

Hellenbroich D, Valley U, Ryll T, Wagner R, Tekkanat N, Kessler W., Ross A, Deckwer WD (1999) Выращивание Tetrahymena thermophila в эрлифтном биореакторе ³ 1,5 м. Appl Microbiol Biotechnol 51: 447–455

PubMed CAS Google Scholar

196.

Speksnijder JE, Bijmolt E (1995) Tetrahymena: простая альтернатива Paramecium .Монитор Zebrafish Sci 3: 4

Google Scholar

197.

Guermazi W, Elloumi J, Ayadi H, Bouain A, Aleya L. (2008) Выращивание Fabrea salina Henneguy (Ciliophora, Heterotrichida) тремя одноклеточными кормами. C R Biol 331 (1): 56–63

PubMed Google Scholar

198.

Пандей Б.Д., Ераги С.Г. (2004) Предварительные эксперименты и массовые культуральные эксперименты на гетеротриховой инфузории, Fabrea salina .Аквакультура 232: 241–254

Google Scholar

199.

Howitz KT, Sinclair DA (2008) Xenohormesis: распознавание химических сигналов других видов. Ячейка 133 (3): 387–391

PubMed CAS Google Scholar

5. ЦИЛИАТЫ | Биологический бум

5. ЦИЛИАТЫ

Тип Ciliophora включает некоторые из самых сложных простейших.Характеристики филума Ciliophora:

1. Инфузории широко распространены в пресноводных и морских средах.

2. Некоторые инфузории являются симбиотическими.

3. У них есть реснички для передвижения. Реснички также используются для создания питающих токов в воде.

4. Имеют жесткую пленку. Он сохраняет свои формы фиксированными.

5. Имеют четкую структуру цитостома (рта).

6. У них есть демографические ядра: более крупное макроядро и одно или несколько более мелких микроядер.

Реснички и другие пелликулярные структуры

1. Реснички: Реснички в целом похожи на жгутики. Но они намного короче и многочисленнее. Они широко распространены по поверхности инфузории. Цилиарное движение — это скоординированные движения. Цилиарные волны проходят по поверхности инфузории.

Многие инфузории могут менять направление биения ресничек и направление движения клеток. У некоторых инфузорий развились специализированные реснички.Реснички могут покрывать внешнюю поверхность простейших. Они могут соединяться, образуя цирри. Чирри используются в движении. Реснички могут быть потеряны в больших участках инфузории.

2. Базальные тельца (кинетосомы): Это корень ресничек. Реснички возникают на
от базальных тел. Базальные тела соседних ресничек повторно соединены между собой. Они образуют сложную сеть волокон. Эти волокна закрепляют реснички и придают форму организму.

3. Трихоцисты: Трихоцисты представляют собой мешковидные пелликулярные структуры.Они расположены перпендикулярно плазматической мембране. Это стержневидные или овальные органеллы. В основном они используются для защиты. В Paramecium они выглядят как «дерево для гольфа». Трихоцисты могут выходить из пленки. Затем они остаются связанными с телом липкой нитью.

ПИТАНИЕ

Механизм кормления

1. Paramecium: Paramecium имеет ресничную бороздку в полости рта вдоль одной стороны тела. Реснички находятся в бороздке рта.Эти реснички подталкивают мелкие частицы пищи к цитофаринксу. В цитофаринксе образуется пищевая вакуоль. Пищевая вакуоль он в раз больше. Затем он отрывается от цитофаринкса и освобождается. Он свободно циркулирует по эндоплазме и происходит пищеварение.

2. Didinium: Некоторые свободноживущие инфузории поедают других простейших или мелких животных. Добыча касается организма, и они захватывают его. Инфузория Didinium питается парамецием. Его добыча больше, чем он сам. Дидиниум образует временное отверстие.Это отверстие сильно выгнуто и захватывает на своей добычи.

3. Сукторианцы: Их реснички прикреплены к субстрату. У них есть щупальца. Их выделения парализуют добычу. Добыча — инфузории или амебы. Щупальца образуют отверстие в пленке жертвы. Затем он всасывает цитоплазму жертвы через крошечные каналы в щупальце. В этом механизме участвуют щупальцевые микротрубочки.

Общий контроль и воспроизведение

Инфузории имеют два типа ядер.

(а) Макронуклеус: Это — крупный полвплоидный макронуклеус. Он регулирует повседневную метаболическую активность.

—————————-

—————————-

(b) Микронуклеусы: Есть одно или несколько меньших микроядер. Это генетический резерв клетки.

Бесполое размножение

Инфузории размножаются бесполым путем поперечным двойным делением.Некоторые размножаются бутонизацией. Почкование происходит у сукториан. Это приводит к образованию реснитчатых, свободно плавающих организмов. Этот организм прикрепляется к субстрату и принимает форму взрослого человека.

Рис: Конъюгация в парамеции (a) Случайный контакт между конъюигантом, (b) Мейоз (c) Взаимный обмен пронуклеусов (d-f), дальнейшее деление

Половое размножение: Спряжение

Инфузории размножаются половым путем путем спряжения. Партнеров называют конъюгантом. Многие виды инфузорий имеют множество типов спаривания. Все эти типы спаривания несовместимы.

1. Первоначальный контакт между людьми носит случайный характер. Пелликулы двух конъюгантов выделяют липкий секрет. Эти выделения способствуют сращиванию двух конъюгантов.

2. Затем инфузории плазматических мембран сливаются. Они остаются спаянными в течение нескольких часов.

3. Макронуклеус не участвует в генетическом обмене. Макронуклеус распадается. Затем он преобразовывается из микроядер дочерних инфузорий.

4. В конъюгантах происходит мейоз и образуются четыре гаплоидных пронуклеуса .

5. Три пронуклии в каждом конъюгате вырождаются. Оставшаяся пронуклия делится митозом. Таким образом, каждый конъюгант теперь имеет два пронуклеуса.

6. Конъюганты взаимно обмениваются пронуклеусами. Пронуклеусы сливаются друг с другом в каждом конъюгате.

7. Конъюаганты отделяются друг от друга, и теперь они называются экзонъюгантами.

8.Каждый exconjugant подвергается серии из трех ядерных делений. Таким образом, в каждом экзонъюганте образуется восемь дочерних ядер. Два выродились.

9. Четыре из оставшихся шести ядер становятся макроядрами. Каждый exconjugant делится на thi. сцена. Теперь у каждого дочернего парамеция есть два макронуклеуса и одно микроядро.

10. Каждое микроядро снова делится. Происходит деление цитоплазмы. Таким образом, из каждого экзонъюганта образуются четыре парамеции.

Рис: Филогения простейших на основе сравнения последовательностей 80S рРНК

Симбиотические инфузории

Большинство инфузорий живут свободно.Однако некоторые из них являются комменсалистскими, мутуалистическими и паразитическими.

1. Balantidium coli: Это важный паразитарный инфузорий. Он обитает в толстом кишечнике человека, свиней и других млекопитающих. Иногда это ресничный питатель. Иногда он производит протеолитические ферменты для переваривания эпителия хозяина. Это вызывает язву в форме флакона. B. coli образуют цисты.

2. Большое количество инфузорий различных видов обитает в рубце многих копытных (копытных).Эти инфузории помогают в процессах пищеварения своих хозяев.

Похожие статьи:

Праймер для микроскопии молекулярных выражений

: специализированные методы микроскопии — галерея изображений с дифференциальным интерференционным контрастом

Галерея изображений «Дифференциальный интерференционный контраст»

Вортицеллы Инфузории

Сегодня известно более 8000 описанных инфузорий.Среди них колоколообразные простейшие, называемые вихрями, которые живут в пресной или соленой воде, часто в колониях, которые могут содержать от пяти до нескольких сотен организмов.

Хотя они часто встречаются группами, у каждой вортицеллы есть свой собственный непромокаемый стебель. Стебель позволяет организмам прикрепляться к водным растениям и животным, подводным объектам или поверхностной пены. Сократительное волокно, известное как мионема , содержится внутри стебля, заставляя его свертываться, как пружина, когда оно стимулируется или нарушается.

Вортицеллы могут использовать свои реснички, чтобы загонять добычу в свои ротовые отверстия. Они поедают бактерии и других мелких простейших, движение их ресничек создает водный поток, похожий на вихрь, действие, которое является основой их прозвища. После того, как пища попала в ротовую полость, простейшие втягивают сократительную ножку, и пища «проглатывается».

Первичный способ размножения вихря — это бесполый процесс деления.Одноклеточное существо делится по длине, в результате чего образуются две дочерние клетки. Одна из дочерних клеток сохраняет исходный стебель, а другая создает временные реснички по нижнему краю. Организм с дополнительными ресничками плывет на новое место и в конечном итоге теряет лишние реснички, вырастает собственный стебель и прикрепляется к субстрату.

НАЗАД В ГАЛЕРЕЮ ИЗОБРАЖЕНИЙ DIC

Вопросы или комментарии? Отправить нам письмо.

© 1998-2021, автор — Майкл В.Дэвидсон и Государственный университет Флориды. Все права защищены. Никакие изображения, графика, сценарии или апплеты не могут быть воспроизведены или использованы каким-либо образом без разрешения правообладателей. Использование этого веб-сайта означает, что вы соглашаетесь со всеми юридическими положениями и условиями, изложенными владельцами.

Этот веб-сайт поддерживается нашей командой

по графике и веб-программированию
в сотрудничестве с оптической микроскопией в Национальной лаборатории сильного магнитного поля
.

Последнее изменение: пятница, 13 ноября 2015 г., 14:19

Количество обращений с 22 апреля 2003 г .: 23579

Для получения дополнительной информации о производителях микроскопов,

используйте кнопки ниже для перехода на их веб-сайты: .