Содержание

НАЧИНАЮЩЕМУ БИОТЕХНОЛОГУ. ЗАВЕДИ СЕБЕ ТУФЕЛЬКУ!

НАЧИНАЮЩЕМУ БИОТЕХНОЛОГУ. ЗАВЕДИ СЕБЕ ТУФЕЛЬКУ!

Гиндуллина А.Р. 1

1Муниципальное бюджетное общеобразовательное учреждение средняя общеобразовательная школа с углубленным изучением отдельных предметов № 2 г. Туймазы муниципального района Туймазинский район Республики Башкортостан.

Аверьянова  Л.М. 1

1Муниципальное бюджетное общеобразовательное учреждение средняя общеобразовательная школа с углубленным изучением отдельных предметов № 2 г. Туймазы муниципального района Туймазинский район Республики Башкортостан.

Текст работы размещён без изображений и формул.
Полная версия работы доступна во вкладке «Файлы работы» в формате PDF

Введение

Актуальность исследования. Современные технологии открывают новые возможности и дают шанс каждому овладеть методами научного исследования. Ведь именно при проведении исследований появляются разные способности: гуманитарный талант, естественнонаучный склад ума, умение работать с приборами.

Зная о моем интересе к исследованиям, мои родители подарили мне цифровой микроскоп, который позволяет анализировать полученные в ходе изучения изображения на компьютере, исследовать и рассматривать объекты, как в микроскоп, так и непосредственно на экране монитора. Кроме того, цифровой микроскоп позволяет продемонстрировать изображение широкой аудитории, а также передавать и сохранять полученные результаты.

Я решила начать свою исследовательскую работу с одноклеточных организмов, которые широко распространены на Земле. Одноклеточные организмы устроены просто и поэтому являются простейшими. В пресных водоемах часто встречается инфузория-туфелька, и я заинтересовалась возможностью выращивания инфузории-туфельки в домашних условиях, а также сравнением ее изображения с изображениями инфузории-туфельки в других информационных источниках.

Гипотеза исследования: инфузория-туфелька, выращенная в домашних условиях, по своему строению будет совпадать со строением инфузорий-туфелек, представленных в других информационных источниках.

Объектом исследования является простейший одноклеточный организм инфузория-туфелька.

Предмет исследования – особенности жизнедеятельности и строения инфузории-туфельки.

Цель исследования – изучение выращенной в домашних условиях инфузории-туфельки с помощью цифрового микроскопа.

Задачи исследования:

— изучить особенности строения и жизнедеятельности инфузории-туфельки;

— создать условия и способы разведения инфузории-туфельки дома;

— исследовать инфузорию-туфельку под цифровым микроскопом.

Методы исследования: анализ и изучение литературы, наблюдение, практическая работа по выращиванию живого организма, приготовление микропрепарата и практическое изучение инфузории-туфельки под микроскопом.

Сроки проведения исследования: сентябрь-октябрь 2018 года.

В ходе исследования были рассмотрены работы Васина А.Е., Трофимовой Л.В., Мячиной О.А., Гуляевой В.В., Присныго А.В., Волынкина Ю.Л., Кампос Н.Н, Пасечкина В.В. в которых исследуются простейшие одноклеточные организмы.

Практическая значимость исследования состоит в том, что его материалы и обобщения способствуют расширению знаний о простейшем одноклеточном организме инфузории-туфельке.

Глава 1. Теоретическая часть.

1.1. Особенности строения и жизнедеятельности инфузории-туфельки

Среди органических существ много примитивных организмов, которые дали толчок развитию жизни и от них произошли более сложные организмы. К простейшим формам жизни относится инфузория-туфелька. Свое название она получила благодаря своему веретенообразному телу, который напоминает подошву туфли. Стоит отметить, что к обширному типу инфузорий относятся около 7 тысяч видов высокоорганизованных простейших1.

У инфузории-туфельки (Paramaecium caudatum) плотный наружный слой цитоплазмы, поэтому она сохраняет постоянную форму тела2. На брюшной стороне тела находится околоротовое углубление – перист. Реснички на стенках перистома являются своеобразным ловчим аппаратом, которые загоняют пищу в ротовое отверстие. Еда попадает в пищеварительную вакуоль, которая сначала движется в сторону заднего конца тела, а потом возвращается к переднему концу. Переваренная пища всасывается в цитоплазму. А не переваренные остатки еды выводятся из организма порошицей.

Исследователи считают туфельку одним из самых прожорливых простейших. Это связано с тем, что она питается непрерывно. Инфузории питаются бактериями, дрожжами и водорослями3.

Тело инфузории покрыто примерно 10-15 тысячами ресничек. Благодаря их веслообразным движениям инфузория-туфелька все время движется.

Инфузория-туфелька отличается от других групп простейших тем, что в ее цитоплазме расположены два ядра: большое и малое. При размножении малое ядро отходит от большого и разделяется на две части, расходящиеся к переднему и заднему концам тела. Затем делится большое ядро.

Васин А.Е. отмечает, что инфузории-туфельки обладают очень тонким химическим чувством. Они могут различать в воде небольшие доли различных растворенных солей и кислот, а также тяжелые металлы и ядовитые вещества. В связи с этим, в лабораториях инфузории применяются для обнаружения в воде примесей4.

Таким образом, инфузория-туфелька относится к одним из самых простейших одноклеточных организмов. Внутри клеточной мембраны находится все необходимое для жизнедеятельности организма.

Глава 2. Практическая часть.

2.1. Условия и способы разведения инфузорий

При наличии хорошего питания инфузории-туфельки очень быстро размножаются. Исследователи отмечают, что в экспериментальных условиях плотность инфузорий туфелек доходит до 50 тысяч особей на кубический сантиметр5.

Небольшие пресноводные водоемы являются местом обитания инфузории-туфельки. В домашних условиях их также можно разводить, если залить водой из пруда пучок обычного сена.

В домашних условиях для разведения инфузории лучше воспользоваться чистой культурой и получить ее самому. На стекло капают несколько капель воды из пруда и добавляют щепотку соли. Рядом с этой каплей со стороны света располагают каплю свежей отстоянной воды. Капли соединяются водным мостиком. Инфузория-туфелька устремляется в сторону света и свежей воды быстрее других микроорганизмов.

Для разведения инфузории в домашних условиях используют сосуды от 3 литров и более из стекла. Я взяла трехлитровую банку6.

Питательной средой для инфузории является высушенные корки тыквы, банана, дыни, нарезанная кружочками морковь, рыбий корм, молоко, водоросли, дрожжи, сено.

Я решила использовать наиболее распространенный способ с использованием сенного настоя. Для того чтобы приготовить настой из сена берут 10 грамм сена и помещают в 1 литр воды, кипятят в течение 20 минут. В воде сохраняются споры бактерий, которые развиваются в сенные палочки и служат пищей для инфузорий. Отфильтровав эту воду необходимо разбавить с равным количеством отстоявшейся воды и добавить культуру инфузории-туфельки.

Настой хранится в течение месяца в прохладном месте. Высушенную кожуру бананов при внесении ополаскивают и добавляют лист 3 см на 2 литра воды. Два раза в неделю необходимо подкармливать инфузории банановой кожурой. При этом важно не передозировать питание, так как быстро размножающиеся бактерии могут оставить инфузории без кислорода. При правильном питании в банке появляются кусочки прозрачной слизи.

2.2. Исследование инфузории под цифровым микроскопом

Для исследования инфузории-туфельки под микроскопом применяются покровные и предметные стекла. Капля исследуемого вещества при помощи пипетки помещается на предметное стекло и прижимается покровным стеклом. Я проводила исследование при помощи цифрового микроскопа COSVIEW Miview MV200UM. Микроскоп позволил определить, что в капле воды из банки содержатся инфузории-туфельки. Кроме того, при помощи микроскопа получилось определить не только наличие простейших организмов, но и рассмотреть их строение. Первый раз я посмотрела инфузорию-туфельку при 80-кратном увеличении, где можно увидеть находящиеся в постоянном движении скопление клеток длиной 0,2-0,3 мм

7.

Позже я поменяла настройку объектива и установила увеличение в 200 раз. Картина стала крупнее и появилась возможность различить внутренне строение инфузории-туфельки8.

Стоит отметить, что строение инфузории-туфельки под микроскопом совпадает с иллюстрациями в различных информационных источниках. Я решила еще раз поменять настройку объектива и настроила увеличение на 500 раз. При таком увеличении видны основные элементы строения животной клетки. Цитоплазма, ядро и другие форменные элементы животной клетки просматриваются очень хорошо

9.

Таким образом, инфузорию-туфельку можно легко вырастить в домашних условиях. Поэтому это часто делают аквариумисты, так как инфузория-туфелька является отличнейшим кормом для мальков рыб. Кроме того, я также обнаружила, что изображения, полученные в ходе моей работы с микроскопом, совпадают с изображениями инфузорий-туфелек, которые приведены в других источниках.

Благодаря данному исследованию я не только расширила и пополнила свои знания об инфузории-туфельке, но и совершенствовала навыки работы с цифровым микроскопом.

Заключение

Инфузория-туфелька представляет собой простейший одноклеточный организм. В ходе исследования я убедилась, что инфузории-туфельки можно вырастить в домашних условиях. Для этого необходимо приготовить чистую культуру инфузории и питательную среду, например сенной настой.

Использование в ходе исследование цифрового микроскопа оказало содействие в подробном изучении и рассмотрении строения инфузории-туфельки. Несмотря на то, что тело инфузорий состоит всего лишь из одной клетки, они представляют научный интерес для многих исследователей.

Стоит отметить, что инфузория питается другими простейшими, а также сама служит кормом для личинок рыб и амфибий. Именно поэтому инфузории интенсивно выращивают на рыболовных хозяйствах.

В процессе исследования гипотеза подтвердилась. Инфузорию-туфельку можно вырастить в домашних условиях и ее строение будет совпадать со строением клеток инфузорий, представленных в других информационных источниках.

Наблюдая за жизнью простейшего одноклеточного организма со сложным латинским названием Paramecium caudatum или инфузория-туфелька, я еще раз убедилась, что природа удивительна и совершенна.

Список использованной литературы

Научная литература.

Биология: Лабораторный практикум/ сост. Т.В.Баранова.- Комсомольск-на-Амуре: Изд-во АмГПГУ, 2010. – 174 с.

Васин А.Е. Адаптация инфузорий Paramecium multimicronucleatum к солям некоторых тяжелых металлов // Вестник Самарского государственного университета, 2006. С. 13 — 17.

Пасечник В.В. Биология. 5 класс. М.: Дрофа, 2012. – 143 с.

Присный А. В., Волынкин Ю. Л., Кампос Н. Н. Механизмы устойчивости инфузорий к химическим повреждениям и их преодоление летальными концентрациями синтетических поверхностно активных веществ (СПАВ) // Научные ведомости Белгородского университета, 2009. С. 45 — 49.

Трофимова Л.В., Мячина О.А., Гуляева В.В. Ресничные инфузории и водоемы // Вестник Челябинского государственного педагогического университета, 2010. С. 311 — 316.

Электронные ресурсы.

1. Словарь биологических терминов. [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://licey.net/free/6-biologiya/25-slovar_biologicheskih_terminov.html — Загл. с экрана.

Приложение 1

Строение инфузории-туфельки

Приложение 2

Банка с культурой инфузорий, подкормленная банановой кожурой

Приложение 3

Работа с цифровым микроскопом.

Исследование инфузории-туфельки

Приложение 4

Инфузории-туфельки под цифровым микроскопом.

80 кратное увеличение

Приложение 5

Инфузории-туфельки под цифровым микроскопом.

200 кратное увеличение

Приложение 6

Инфузории-туфельки под цифровым микроскопом.

500 кратное увеличение

1 Трофимова Л.В., Мячина О.А., Гуляева В.В. Ресничные инфузории и водоемы //Вестник Челябинского государственного педагогического университета, 2010. С. 312.

2 Словарь биологических терминов. [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://licey.net/free/6-biologiya/25-slovar_biologicheskih_terminov.html — Загл. с экрана.

3 Присный А.В., Волынкин Ю.Л., Кампос Н.Н. Механизмы устойчивости инфузорий к химическим повреждениям и их преодоление летальными концентрациями синтетических поверхностно активных веществ (СПАВ) //Научные ведомости Белгородского университета, 2009. С. 45.

4 Васин А.Е. Адаптация инфузорий Paramecium multimicronucleatum к солям некоторых тяжелых металлов // Вестник Самарского государственного университета, 2006. С. 13.

5 Пасечник В.В. Биология. 5 класс. М.: Дрофа, 2012. С. 54.

6 См. приложение 2.

7 См. приложение 4.

8 См. приложение 5.

9 См. приложение 6.

Просмотров работы: 136

Инфузория-туфелька (простейшие пресных водоемов). Сосущие инфузории, дидиний. Обитатели почвы | Биология. Реферат, доклад, сообщение, краткое содержание, лекция, шпаргалка, конспект, ГДЗ, тест

Многие виды одноклеточных жи­вотных способны активно плавать с помощью жгутиков или ресничек. Эти мелкие организмы, обитающие в толще воды, относятся к особой экологической группе — планктону. Один из таких организмов — инфузория-туфелька.

Инфузорию-туфельку назвали так потому, что форма ее клетки на­поминает женскую туфельку. Животное достигает в длину 0,2-0,3 мм. Поверхность клетки имеет многочисленные реснички (приблизительно 15 тыс.). Благодаря их согласованной работе инфузория-туфелька может достаточно быстро плавать (2—3 мм/с), вращаясь вокруг своей продольной оси (рис. 44). На брюшной стороне хорошо заметно предротовое углубление, на дне которого расположен клеточный рот. Через него в цитоплазму поступает пища (в основном — клетки бактерий), которая переваривается в пищеварительных вакуолях. Непереваренные остатки пищи выводятся через специальное образование — порошицу.

Рис. Сосущие инфузории

Особая группа простейших — сосущие инфузории — во взрослом состоянии не пе­редвигаются и не имеют ресничек (см. рис.). От тела этих инфузорий во все стороны на­правлены длинные расширенные на вер­хушках выросты — щупальца. Если другой представитель простейших дотронется до верхушки щупальца, то сразу же прилипнет к нему. Через щупальце сосущая инфузория высасывает содержимое жертвы.

Обратите внимание: клетка инфузории-туфельки имеет два ядра — большое и малое. Большое ядро руководит процессами образования органических веществ, а малое — обеспечивает хранение наследствен­ной информации и ее передачу от материнской клетки дочерним во время деления или обмена ядрами (рис. 45).

Рис. 44. Инфузория-туфелька: 1 — микрофотография; 2 — схема строения клетки
Рис. 45. Обмен наследственной информацией между двумя клетками инфузории-туфельки
Рис. 51. 1. Дидиний

Среди инфузорий существуют и хищники, например дидиний (рис. 51. 1). Несмотря на небольшие размеры (до 0,15 мм) — это опас­ный враг инфузории-туфельки. Передний конец клетки дидиния вытянут в хоботок, на котором расположен клеточный рот. Хищная инфузория вначале ввинчивается в тело инфузории-туфельки с помощью хоботка, а потом заглатывает добычу полностью. На протяжении суток дидиний может съедать около 12 инфузорий-туфелек. Материал с сайта http://worldofschool.ru

Различные виды инфузорий встречаются также у дна водоемов или на поверхности водных растений.

Обитатели почвы. Между частицами почвы име­ется вода. В ней обитают представители тех же групп простейших, что и в пресных водоемах: голые и раковинные амебы, инфузории и т.д. Они питаются клетками бактерий, водорослей, мертвой органикой. Засушливые периоды переживают в виде цист. Разлагая органические вещества, простейшие принимают участие в процессах почвообразо­вания.

В пресных водоемах обитают различные по строению и образу жиз­ни простейшие. Инфузории в основном плавают в толще воды, при помощи рес­ничек. Некоторые — живут у дна и ведут при­крепленный образ жизни (колониальная инфузория зоотамний).

Почвенные простейшие разлагают органические вещества, принимая участие в процессах почвообразования.

На этой странице материал по темам:
  • Хранение наследственной информации в инфузории туфельке

  • Дидиний простейший одноклеточный

  • Какое простейшее плавает в толще воды

  • Хищная инфузория

  • Хищная дидиния

Вопросы по этому материалу:
  • Какие особенности строения и процессов жизне­деятельности планктонных одноклеточных животных?

Инфузория-туфелька — строение тела, значение в природе

Инфузория-туфелька — это микроорганизм из царства простейшие, подгруппы инфузорий. Латинское название туфельки — парамеция хвостатая (Paramécium caudátum). Только под микроскопом можно увидеть это одноклеточное существо. А оно живет так же, как большие многоклеточные животные — дышит, передвигается, питается и размножается.

Описание

Инфузория-туфелька — не экзотика, она живет в пресных водоемах со спокойной водой, в лесной луже, в аквариуме. Нужно только, чтобы присутствовали источники органических веществ — водоросли, растения, погибшие живые организмы, обыкновенный ил. Благодаря изящной форме, инфузория получила свое название: клетка похожа на подошву миниатюрной туфельки, один конец которой более узкий, а другой — широкий. Для того чтобы внешний вид клетки был постоянным, у туфельки есть эластичная наружная мембрана и сложная система цитоскелета (микрофиламенты и микротрубочки, а также другие опорные органоиды). Размеры клетки — от 0,1 до 0,5 миллиметров.

Рис. 1. Инфузория-туфелька Если в воде увеличивается количество растворенных солей или уменьшается количество жидкости, форма клетки немного меняется — становится более округлой, овальной. Снаружи на клетке заметны многочисленные реснички. Они нужны для перемещения туфельки. Всего ресничек около 10-15 тысяч, они постоянно и согласованно двигаются. Реснички работают, как весла, и перемещают клетку очень быстро.

Важно! Инфузория-туфелька может плыть со скоростью до 2,5 миллиметров в секунду, а это в 5-10 раз больше длины ее тела. Помимо движения вперед, клетка вращается вокруг своей оси. При высыхании скорость движения уменьшается.

Инфузория-туфелька не является беззащитной, для отражения атаки хищников или нападения на противника у нее есть специальные органоиды — трихоцисты. Это мелкие тельца, похожие на веретено, они находятся между ресничками. В случае необходимости, например, при нападении врага — трихоцисты стреляют, то есть сильно удлиняются и поражают противника. На месте выстреливших ниточек вырастают новые, всего их обычно около 5-8 тысяч.

Строение клетки

Далее рассмотрим все особенности строения и жизнедеятельности этого микроорганизма.

Ядра и процессы размножения

В клетке инфузории-туфельки два ядра:

  • Большое ядро похоже на фасолину и называется макронуклеус. В нем находятся гены, которые регулируют образование белков в клетке. То есть большое ядро контролирует процессы обмена веществ и бесполое размножение.
  • Малое ядро называется микронуклеус. Оно контролирует половое размножение. Клетка после разрушения малого ядра остается жизнеспособной.

Поперечное деление, то есть бесполое размножение, идет у инфузорий-туфелек очень быстро, если есть хорошее питание. При этом материнская клетка разделяется на две дочерние, в них достраиваются недостающие органеллы. Такое деление происходит до двух раз в сутки. В результате полового размножения численность популяции не возрастает. Смысл полового процесса — обмен генетической информацией между двумя особями. Благодаря этому повышается выживаемость микроорганизмов, они лучше адаптируются к изменяющейся окружающей среде. Для полового размножения две инфузории как бы склеиваются между собой в области перистома. Защитная мембрана частично исчезает, а из цитоплазмы формируется своеобразный мостик. Этот тип полового процесса называется конъюгация. Макронуклеусы распадаются, а микронуклеусы делятся путем мейоза (при этом виде деления количество хромосом уменьшается в два раза). Затем три из получившихся четырех ядер также разрушаются, а оставшееся в каждой клетке ядро делится путем митоза. Таким образом, в каждой дочерней клетке образуются два новых ядра — мужское и женское. По образованному мостику туфельки обмениваются мужскими ядрами, в каждой новой особи женское и мужское ядра сливаются. Вновь образуются макро- и микронуклеусы. После этого инфузории отходят друг от друга.

Рис. 2. Строение инфузории-туфельки

Питание и пищеварение

В основном пищей для инфузорий-туфелек служат бактерии и одноклеточные водоросли. Интересно, что эти простейшие очень прожорливы, они питаются почти непрерывно, останавливаются только на период размножения. На одной стороне тела есть углубление с отверстием, которое называется перистом, или клеточный рот. Вокруг него реснички длиннее, чем в остальных участках клетки. Работая, они направляют воду с пищевыми частицами в рот и далее в глотку. В ее задней части пищевые частицы скапливаются, а затем в окружении жидкости проникают в цитоплазму, образуя фагосому, или пищеварительную вакуоль. Процесс пищеварения занимает примерно час. Пищеварительная вакуоль движется по определенной траектории: к заднему концу, потом описывает окружность по часовой стрелке. В это время в фагосоме пища с помощью ферментов переваривается. Сначала среда в фагосоме кислая, потом реакция меняется на щелочную. В цитоплазму попадают питательные вещества, которые используются для дальнейшей жизнедеятельности. Непереваренные остатки пищи в пищеварительной вакуоли удаляются из клетки в определенном месте. Оно называется порошица и находится позади ротового углубления. Фагосома сливается с наружной мембраной клетки и почти сразу отделяется от нее, распадаясь на много мелких пузырьков. Они перемещаются в сторону дна глотки и формируют новые пищеварительные вакуоли.

Дыхание

Растворенный в воде кислород проникает в клетку диффузно через всю ее поверхность. Органические соединения окисляются с выделением энергии, которая используется в процессах жизнедеятельности. Если кислорода в воде мало, инфузория-туфелька может использовать другие пути получения энергии (гликолиз — анаэробный, то есть не требующий кислорода, процесс).

Осморегуляция

За удаление лишней жидкости и некоторых продуктов обмена веществ отвечают две сократительные вакуоли. Они похожи на цветок, в котором серединка — это резервуар, а лепестки — приводящие каналы. Они вбирают в себя воду и перемещают ее в резервуар. При заполнении он отделяется и выбрасывает излишки жидкости через пору.

Важно! Инфузорию всегда окружает вода, а ее наружная оболочка проницаема для жидкости. Поэтому сократительные вакуоли трудятся напряженно: в течение часа они удаляют из клетки столько жидкости, сколько занимает объем самой клетки.

Особенности жизнедеятельности

У инфузории-туфельки есть свойство раздражимости. Это значит, что она отвечает на действие факторов окружающей среды (раздражителей) изменением своего поведения. Раздражители — это температура, различные растворенные в воде вещества, освещение. У простейших нет нервной системы, органов чувств и рефлексов. Раздражение воспринимает вся клетка целиком. Реакцией на действие раздражителя будет таксис — это движение в сторону действующего агента или от него. Это можно продемонстрировать с помощью опытов:

  • На предметное стекло поместим две капли воды — с туфельками и чистую воду и соединим их. Затем в воду с микроорганизмами добавим кристаллы соли. Туфельки начнут быстро перемещаться в чистую воду, потому что высокое содержание соли губительно для микроорганизмов.
  • И наоборот, если в воду с инфузориями ничего не добавлять, а к чистой воде капнуть настой с бактериями, то туфельки переберутся в сторону бактерий, то есть к пищи.
  • Если через воду с этими микроорганизмами пропускать слабый электрический ток, они выстраиваются вдоль линии тока, а затем перемещаются в сторону катода. Это явление называется гальванотаксис. Оно демонстрирует способность инфузорий реагировать на воздействие раздражителей изменением поведения и связано это, по-видимому, с физико-химическим воздействием электрического тока.

Благоприятные условия для инфузории — это температура около 15-24 градусов тепла. При похолодании туфельки впадают в анабиоз и переходят в форму цисты. В этом состоянии они могут существовать годами. В обычных же условиях продолжительность их жизни около суток.

Рис. 3. Сходство и отличие эвглены зеленой и хламидоманада

Сходство и отличия от эвглены зеленой

Эвглена зеленая — тоже одноклеточный микроорганизм, то есть единственная клетка, которая существует автономно.

Сходства

  • Оба микроорганизма — одноклеточные;
  • Живут в воде;
  • Являются эукариотами, то есть имеют оформленные ядра;
  • Поддерживают постоянную форму тела благодаря плотной клеточной стенке.

Отличия

  • У инфузории — два ядра, а у эвглены — только одно.
  • Туфелька размножается бесполым и половым путем, а эвглена — только делением.
  • Передвижение инфузории обеспечивают множество ресничек, а эвглена плавает с помощью жгутика.
  • Инфузория-туфелька бесцветная, а эвглена — зеленая из-за наличия специального пигмента — хлорофилла.
  • Питается инфузория органическими веществами путем фагоцитоза. Эвглена, помимо этого, может фотосинтезировать, то есть получать питание из углекислого газа и воды на свету с помощью хлорофилла.
  • У эвглены зеленой есть светочувствительный глазок, у инфузории такой орган отсутствует.

Место в пищевой цепочке

Инфузории-туфельки употребляют в пищу бактерии и водоросли, а сами являются кормом для мальков многих рыб и амфибий. С этой целью инфузорий даже нарочно размножают в рыбных хозяйствах и используют для кормления личинок аквариумных рыбок. То есть инфузория-туфелька образует звено в пищевой цепочке между одноклеточными и многоклеточными организмами.

Интересные факты

Инфузории-туфельки обладают способностью различать малейшие концентрации химических веществ в воде. С такой чувствительностью им легче находить колонии бактерий, то есть пищу. А в лаборатории эту суперспособность иногда используют для определения примесей в воде. Проводилась даже дегустация высушенной массы инфузорий. Оказалось, что на вкус они напоминают курицу или сухой творог. В белке инфузорий есть все необходимые аминокислоты. Его состав похож на казеин. Скопления инфузорий-туфелек можно увидеть невооруженным глазом, и это реально даже в домашних условиях. Достаточно положить маленький кусочек морковки в банку с водой и поставить ее в темное теплое место. Воду можно взять из природного водоема, но подойдет и водопроводная вода. Лучше всего брать воду с небольшим количеством ила из аквариума — там точно есть туфельки. Через пару дней в мути, которая окружает морковь, сначала можно будет при помощи микроскопа обнаружить инфузорий. А немного позже, когда уменьшится количество кислорода в воде, ближе к поверхности появятся скопления белых точек — это и есть скопления инфузорий. Инфузория-туфелька — удивительный представитель одноклеточных микроорганизмов. Она устроена примитивно и в то же время сложно. В природе инфузория-туфелька занимает свою экологическую нишу. Она стала отличной моделью для изучения всех  основных процессов жизнедеятельности. Кроме того, этих простейших используют в качестве корма для рыб и как маркер загрязнения жидкости. Как выглядит этот микроорганизм и особенности его жизнедеятельности вы можете посмотреть в видео.

Предыдущая

БиологияПроисхождение человека — основные теории и версии появления человека на земле

Следующая

БиологияТеория эволюции Дарвина — основные положения

Строение сосущих инфузорий

Многие виды одноклеточных жи­вотных способны активно плавать с помощью жгутиков или ресничек. Эти мелкие организмы, обитающие в толще воды, относятся к особой экологической группе — планктону. Один из таких организмов — инфузория-туфелька.

Инфузорию-туфельку назвали так потому, что форма ее клетки на­поминает женскую туфельку. Животное достигает в длину 0,2-0,3 мм. Поверхность клетки имеет многочисленные реснички (приблизительно 15 тыс.). Благодаря их согласованной работе инфузория-туфелька может достаточно быстро плавать (2—3 мм/с), вращаясь вокруг своей продольной оси. На брюшной стороне хорошо заметно предротовое углубление, на дне которого расположен клеточный рот. Через него в цитоплазму поступает пища (в основном — клетки бактерий), которая переваривается в пищеварительных вакуолях. Непереваренные остатки пищи выводятся через специальное образование — порошицу.

Сосущие инфузории

Особая группа простейших — сосущие инфузории — во взрослом состоянии не пе­редвигаются и не имеют ресничек (см. рис.). От тела этих инфузорий во все стороны на­правлены длинные расширенные на вер­хушках выросты — щупальца. Если другой представитель простейших дотронется до верхушки щупальца, то сразу же прилипнет к нему. Через щупальце сосущая инфузория высасывает содержимое жертвы.

Обратите внимание: клетка инфузории-туфельки имеет два ядра — большое и малое. Большое ядро руководит процессами образования органических веществ, а малое — обеспечивает хранение наследствен­ной информации и ее передачу от материнской клетки дочерним во время деления или обмена ядрами.

Среди инфузорий существуют и хищники, например дидиний. Несмотря на небольшие размеры (до 0,15 мм) — это опас­ный враг инфузории-туфельки. Передний конец клетки дидиния вытянут в хоботок, на котором расположен клеточный рот. Хищная инфузория вначале ввинчивается в тело инфузории-туфельки с помощью хоботка, а потом заглатывает добычу полностью. На протяжении суток дидиний может съедать около 12 инфузорий-туфелек.

Различные виды инфузорий встречаются также у дна водоемов или на поверхности водных растений.

Обитатели почвы. Между частицами почвы име­ется вода. В ней обитают представители тех же групп простейших, что и в пресных водоемах: голые и раковинные амебы, инфузории и т.д. Они питаются клетками бактерий, водорослей, мертвой органикой. Засушливые периоды переживают в виде цист. Разлагая органические вещества, простейшие принимают участие в процессах почвообразо­вания.

В пресных водоемах обитают различные по строению и образу жиз­ни простейшие. Инфузории в основном плавают в толще воды, при помощи рес­ничек. Некоторые — живут у дна и ведут при­крепленный образ жизни (колониальная инфузория зоотамний).

Почвенные простейшие разлагают органические вещества, принимая участие в процессах почвообразования.

Как живут простейшие » Детская энциклопедия (первое издание)

Простейшие животные Размножение простейших

Жгутиконосец эвглена зеленая. X — зеленые хроматофоры

В наших пресных водоемах среди простейших животных можно найти различные виды амёб, эвглен и инфузорий. Строение у амёбы более простое, чем у многих других простейших. Тело крупной амёбы — протея, например — представляет собой комочек полужидкой протоплазмы с ядром. У амёбы нет твердой оболочки, и потому она способна изменять форму тела. Амёба — ползающее животное. Когда она ползет по листу водного растения, у нее образуются в том направлении, куда она двигается, выпячивания протоплазмы. Постепенно в эти выпячивания как бы перетекает остальная протоплазма амёбы. Такие выпячивания названы ложноножками или псевдоподиями. С помощью псевдоподий амёба не только передвигается, но и захватывает пищу. Выпуская псевдоподии, она обхватывает ими бактерию или микроскопическую водоросль; добыча вскоре оказывается внутри амёбы.

Инфузория туфелька

Другие простейшие передвигаются иначе. У многих из них, например у живущих в пресных водах эвглен, есть тонкие, нитевидные жгутики. Жгутики совершают сложные колебательные движения, и животные довольно быстро передвигаются в воде жгутиками вперед. Тело жгутиковых представляет собой также одну клетку с протоплазмой и ядром. В отличие от амёб у них плотная оболочка, и потому форма их тела более определенная.

Наконец, простейшие с наиболее сложным строением — инфузории — отличаются тем, что их тело покрыто множеством мелких ресничек. Инфузории плавают при помощи колебательных движений этих ресничек. Процесс питания у инфузорий сложнее, чем у амёб. У обычной в наших пресных водах инфузории — туфельки — на брюшной стороне тела заметно углубление, также покрытое ресничками. На дне углубления в оболочке, покрывающей тело инфузории, есть отверстие. Это «рот» инфузории. Он ведет не прямо в протоплазму, а в короткую трубочку — своего рода глотку. Инфузория туфелька питается бактериями. Колебания ресничек загоняют бактерию в глотку туфельки до самой протоплазмы. Протоплазма выделяет особую жидкость, которая в виде капельки окружает бактерию. В этой капельке, или пищеварительном пузырьке, есть особые ферменты — вещества, которые растворяют бактерию. Переваренная пища всасывается из пищеварительного пузырька в протоплазму, а в нем остаются лишь непереваримые остатки. Пищеварительный пузырек приближается к определенному месту в задней части инфузории, где в оболочке есть особое отверстие, сжимается, и непереваренные остатки пищи выбрасываются наружу.

Если присмотреться к живой инфузории, можно заметить, что в определенных местах тела у нее появляются и внезапно исчезают какие-то светлые пузырьки. При температуре + 16° у инфузории туфельки сокращение пузырьков происходит через каждые 20 — 25 секунд.

Это так называемые сократительные пузырьки, или сократительные вакуоли. В них собирается избыток воды, накапливающийся в протоплазме, а также жидкие продукты жизнедеятельности инфузории. Когда пузырьки сокращаются, их содержимое через особые отверстия в оболочке выталкивается наружу.

У инфузории, разнообразные формы

Простейшие — амёбы, жгутиковые, инфузории и др. — дышат всей поверхностью тела. Они поглощают из воды растворенный в ней кислород и выделяют в воду углекислый газ.

Инфузории, как и другие простейшие, реагируют на внешнее раздражение — свет, тепло, различные химические вещества. Внешнее раздражение действует на простейших по-разному. Так, например, если к капельке воды с инфузориями приложить кристаллик соли, то по мере растворения соли инфузории будут собираться на противоположной стороне капли. Если край стеклышка, на котором находится капля с инфузориями, осторожно подогревать, то инфузории сначала будут передвигаться к подогреваемому краю стекла. К умеренному теплу инфузории относятся положительно. При дальнейшем же нагревании инфузории соберутся на противоположной, неподогреваемой стороне капли. Следовательно, к более высокой температуре они относятся отрицательно.

Если вы нашли ошибку, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter.

Простейшие животные Размножение простейших

Исследовательская работа учащегося «Невидимые пришельцы аквариума»

Муниципальное бюджетное учреждение дополнительного образования детский эколого-биологический центр « Натуралист» г. Амурска Амурского муниципального района Хабаровского края

 

Невидимые пришельцы аквариума


 

Автор: Чиркова Валентина Леонидовна

воспитанница МБОУ ДОД ДЭБЦ

« Натуралист»,

ученица 4 «А» класса МБОУ НОШ №7

Руководитель: Шкуркина Анна Андреевна,

педагог дополнительного образования

ДЭБЦ «Натуралист»,

г. Амурск,

2016 г.


 

Аннотация

В данной работе отражены результаты исследования разных образцов воды по выявлению в них наличия одного из одноклеточных организмов- инфузории – туфельки. Так же в работе собран материал об особенностях обитания, строения и жизнедеятельности данного простейшего организма.


 

Содержание:

Введение…………………………………………………………………………………………..2

Теоретическая часть……………………………………………………………………………………….3

Практическая часть…………………………………………………………….…….….8

Выводы и рекомендации……………………………………….……………………….9

  1. Кто такая инфузория…………………………………………………………………3

    Как разводить инфузорию…………………… …………………………………….4

    Интересные факты из жизни простейших…………….…………………………………………………………….6

      Методы и материалы…………………………………………………….…………..8

      Полученные результаты……………………………………………….……….…..8

      Заключение…………………………………………………………………………………..….10

      Список используемой литературы……………………………………………………………………………………….11

      Приложение № 1 :Мой аквариум

      Приложение № 2: Фотографии взятия проб

      Приложение № 3: Фотографии образцов воды

      Тезисы по тексту работы

      -В ходе работы решается проблема: живут ли инфузории в воде с органическими остатками или нет.

      -Мы решили рассмотреть разные образцы воды на наличие в них инфузории- туфельки

      Цель нашей работы: выявить, обитает ли инфузория туфелька только в воде, где есть органические остатки с бактериями

      — Нами была выдвинута гипотеза нашей работы: мы предположили, что инфузория туфелька обитает только в той воде, где есть остатки растений или животных.

      -Определенны объект исследования, предмет исследования и актуальность.

      -Мы рассмотрели особенности строения, обитания и жизнедеятельности инфузории туфельки, а также интересные факты из опытов с простейшими организмами.

      -Для проведения опыта мы использовали метод наблюдения.

      — Нами были рассмотрены 7 образцов воды.

      — В ходе наблюдения мы получили определенные результаты

      Наша гипотеза подтвердилась: инфузории обитают в воде, в которых есть органические остатки животных и растений.

      -В работе мы предлагаем рекомендации как не допустить усиленного размножения в аквариуме инфузории.

      -Представлен список используемой литературы и приложения

      Введение

      Я начинающий аквариумист. Пол года назад я завела дома аквариум с рыбками- гуппи и скалярии. (Приложение 1)Через некоторое время вода в аквариуме начала мутнеть. Это вызвало у меня беспокойство, ведь я не знала, могут ли рыбы погибнуть от этого или нет. Я стала искать необходимую информацию в интернете. И вот что выяснила. Оказывается, если вода становиться зеленовато-мутной, то в этом виноваты водоросли, которые размножаются очень быстро, когда в аквариуме очень тепло и много света. А если вода становиться мутно-белая, как в моем случае, то это значит, что очень быстро начали размножаться бактерии и инфузории. Что такое бактерии, я имела представление, а вот об инфузории- туфельке я слышала первый раз. Что за необычный пришелец поселился в моем аквариуме? Я выяснила, что просто так бактерии и инфузории не плодятся. Инфузории питаются бактериями и размножаются когда их много. Бактерии же, размножаются, когда в воде много отходов корма или кто-то умер в аквариуме. Я проверила свой аквариум: все рыбы живы. А вот на дне я увидела очень много остатков корма, которые рыбы не съели. Я беспокоилась, что рыбам не хватит корма, и поэтому давала им корм в больших количествах, чем нужно было.

      Я решила узнать про инфузорию подробнее. Первое, на что я обратила внимание, это то, что инфузория обитает в той воде, где есть органические остатки. К органическим остаткам относят разложившиеся остатки растений и животных. Эти остатки являются кормом для бактерий, а бактериями, уже в свою очередь питаются инфузории, которые при этом начинают быстро размножаться Получается, что органические остатки корма рыб привили к увеличению инфузорий в моем аквариуме, и как следствие, к помутнению воды.

      Я решила выяснить, действительно ли остатки корма могли привести к тому, что в аквариуме размножились инфузории и вода потемнела.

      Поэтому я вместе с моими руководителями поставила следующую цель: выявить, обитает ли инфузория туфелька только в воде, где есть органические остатки с бактериями. Для достижения поставленной нами цели мы решали следующие задачи:

      Исследовать литературу по данной теме.

      Подобрать методы исследования.

      С помощью подобранных нами методов выявить, в каких образцах воды находиться инфузория туфелька.

      Из полученных нами результатов сделать выводы.

        Гипотеза нашей исследовательской работы: мы предположили, что инфузория туфелька обитает только в той воде, где есть остатки растений или животных.

        Объект исследования: Инфузория- туфелька

        Предмет исследования: Среда обитания инфузории-туфельки

        Актуальность: Данная проблема актуальна для меня, так как это позволит мне предотвратить помутнение воды в моем аквариуме, поможет научиться правильно содержать рыб и заботиться о них, чтобы они не погибли. Кроме того, инфузория имеет большое значение в природе и жизни каждого человека. Нам необходимо знать, как инфузория может повлиять на жизнедеятельность людей и какое место в природе занимает этот одноклеточный организм.

        Техническое оснащение исследований (оборудование). Световые микроскопы с револьверным механизмом с увеличением до 40 раз, электронный микроскоп (микроскоп с насадкой-фотокамерой), фотоаппарат, пипетка, стеклянные колбы, стеклянная палочка, предметные стекла.
        Методы исследования: наблюдение и эксперимент

        1 Теоретическая часть.

        1.1 Кто такая инфузория

        Откуда взялось название «инфузория туфелька»? Вы не будете удивлены, если взглянете под микроскопом на живую инфузорию или даже на ее изображение Если вы исследуете под микроскопом каплю воды из пруда, одно из маленьких существ, которое вы увидите, будет иметь вытянутую форму, напоминающую туфельку: один конец ее закруглен, а другой — заужен.

        Трудно поверить, но это маленькое существо можно определить как животное на том основании, что оно, как и другие животные, добывает себе пропитание само, поедая микроскопические растения и другие организмы (а растения, как мы знаем, сами производят для себя пищу), и ему приходится передвигаться в поисках пищи.
        Это животное — инфузория-туфелька. Ее тело почти полностью покрыто тоненькими, похожими на волоски жгутиками, которые мы называем ресничками. Эти реснички равномерно двигаются, подобно тысячам маленьких весел, заставляя тело двигаться вперед, назад или по кругу.


         

        Где живут инфузории


        Живут инфузории практически везде: в пресных и соленых водах, почве, и число их видов, по разным источникам от 7 до 10 тысяч. Некоторые виды приспособились к жизни во влажной почве. Немалое количество видов инфузорий ведет паразитический образ жизни. Хозяевами для паразитических инфузорий являются самые разнообразные беспозвоночные и позвоночные животные до высших обезьян и человека включительно. Добыть туфельку можно в любом стоячем водоеме. Обильно населены ею небольшие, непроточные пруды с опавшей листвой, маленькие торфяные болота, загородные ямы с гниющими органическими веществами.Такие водоемы часто издают характерный сероводородный запах и обычно кишат множеством различных инфузорий, в особенности у берега.[1]

        Размножение инфузории

        Как и все живые организмы, инфузория-туфелька способна размножаться. Во взрослом состоянии она может разделиться надвое и образовать два независимых организма. Инфузория также может размножаться, меняясь определенными частицами тела с другой инфузорией. Но хорошо размножаются инфузории только при комнатной температуре18—22 °С.

        Туфельки размножаются быстро, деление происходит не реже раза в сутки и через неделю при благоприятных условиях их можно увидеть даже невооруженным глазом в виде массы беловатых подвижных точек , в верхней части сосуда.[2]

        Строение инфузории

        В инфузориях примечательно то, что они способны выполнять многие из жизненных функций, которые выполняет человек и крупные животные, осуществляя все это в одной-единственной клетке, в то время как в человеческом теле эти функции выполняются миллионами клеток, собранных в определенный орган для выполнения специфических заданий.
        Но определенная специализация функций есть и в одноклеточной инфузории-туфельке. Внутри клетки есть две шарообразные массы, причем одна больше другой. Это ядра. Меньшее ядро выполняет функции размножения. Большее — все остальные функции организма.
        Инфузория-туфелька — это один из сотни тысяч различных видов микроорганизмов, открытых и изученных человеком. (Микроорганизмы слишком малы, чтобы их можно было исследовать без сильной лупы или микроскопа). Первые живые существа на земле, вероятно, были чем-то вроде этих микроскопических животных.[3]

        Движение инфузории

        Длина тела их около 1/6—1/3 мм. и при этом вращается вправо вдоль продольной оси тела.

        Столь активное движение туфельки зависит от работы большого количества тончайших волосковидных придатков — ресничек, которые покрывают все тело инфузории. Количество ресничек у одной особи инфузории туфельки равняется 10—15 тыс.!

        Каждая ресничка совершает очень частые веслообразные движения — при комнатной температуре до 30 биений в секунду. Во время удара назад ресничка держится в выпрямленном положении. При возвращении же ее в исходную позицию (при движении вниз) она движется в 3—5 раз медленнее и описывает полукруг.[1]

        При плавании туфельки движения многочисленных покрывающих ее тело ресничек суммируются. Действия отдельных ресничек оказываются согласованными, в результате чего получаются правильные волнообразные колебания всех ресничек. Волна колебания начинается у переднего конца тела и распространяется назад. Одновременно вдоль тела туфельки проходят 2—3 волны сокращения. Таким образом, весь ресничный аппарат инфузории представляет собой как бы единое функциональное физиологическое целое, действия отдельных структурных единиц которого (ресничек) тесно связаны (координированы) между собой.[4]

        1.2 Как разводить инфузорию

        Обычно инфузорий разводят в искусственных условиях. Для кормления мальков чаще всего используют туфельку (Paramaecium caudatum), размеры которой обычно колеблются от 0,1 до 0,3 мм . Для разведения инфузорию туфельку добывают таким образом: воду из водоема наливают в три стеклянные банки, в одну из них кладут взятые со дна веточки, гниющие листья и прочие разлагающиеся растительные остатки, в другую собирают различные растения , в третью — ил, взятый со дна. Таким образом, в трех банках будут созданы различные условия для жизни туфелек. После заполнения водой банки нужно просмотреть и удалить из них всех ракообразных, насекомых и их личинок, так как большинство этих животных поедают инфузорий. Летом можно также взять пробу со дна высохшего водоема, а зимой — грунт из-подо льда. Банки ставят на светлое место (не под прямые лучи солнца) при комнатной температуре и закрывают стеклами. После того как банки простоят 2—3 дня, их слегка встряхивают и просматривают на свет. При этом можно определить, много ли туфелек в сосуде и нет ли там ее врагов — водных насекомых и ракообразных. Взяв каплю воды из банки на предметное стекло, просматривают ее с помощью микроскопа или лупы. Туфелек легко отличить от других животных по их быстрому плавному движению. Тело у них веретеновидное, напоминающее по форме подошву туфли. Под малым увеличением микроскопа хорошо видно, как при движении вперед они вращаются вокруг своей оси. Инфузории часто массами скапливаются у кусочков органических остатков, листочка или у поверхностной бактериальной пленки, где они питаются бактериями. При неравномерном освещении сосуда подавляющее большинство туфелек собирается у более освещенной стенки. В закрытом сосуде и вообще при недостатке кислорода в воде они держатся у поверхности. Если размножение происходит недостаточно быстро, можно добавить в воду 1—2 капли кипяченого молока, но обычно через 2—3 дня инфузорий бывает вполне достаточно. В таком случае берут каплю воды у стенки, расположенной со стороны света, и тщательно просматривают ее под микроскопом при малом увеличении. Если в пробе не обнаруживается никаких животных, кроме туфельки, то культура пригодна для массового разведения. В противном случае большая капля воды с максимальной концентрацией инфузорий располагается на чистом стекле, рядом с ней, со стороны света, располагается капля свежей отстоявшейся воды. Обе капли соединяются с помощью отточенной спички водным мостиком; туфельки устремляются в сторону свежей воды и света с большей скоростью, чем все остальные микроорганизмы. Размножаются туфельки очень быстро, поэтому вначале для разведения нет необходимости в их больших количествах.[5]

        При разведении туфелек можно употреблять различные сосуды, наиболее удобны стеклянные банки. Наилучшей является вода с температурой около 26°; достаточно хорошие результаты получаются при комнатной температуре, но сохранять культуру можно при гораздо более низкой температуре (+10° и даже ниже). Длительное содержание культуры при оптимальной температуре приводит к их бурному размножению, а затем к быстрому исчезновению. Лучше всего при разведении инфузорий использовать три трехлитровые банки. В одной из них отстаивается вода, доливаемая взамен убывшей, а в двух поддерживается культура инфузорий. Из них по очереди берутся туфельки из мест их наибольшей концентрации с помощью резиновой груши со стеклянным наконечником. Для кормления многих рыб, мальки которых не выносят присутствия бактерий, следует с помощью той же резиновой груши со стеклянным наконечником перенести из банки раствор с большой концентрацией туфелек в чистую литровую банку. Здесь инфузории содержатся сутки — двое, за это время они поедают всех бактерий и таким образом дезинфицируют воду. Инфузорий, взятых из последнего сосуда с помощью той же груши, переносят в аквариум для кормления мальков. Туфелек можно культивировать на банановой кожуре. Кожуру спелых неповрежденных бананов высушивают и затем хранят в сухом помещении; сушеную кожуру промывают и в небольшом количестве (1—3 см2) помещают в культуру. Наиболее простым является разведение туфелек на снятом, сыром или кипяченом молоке. Молоко нужно добавлять по 1—3 капли раз в несколько дней (лучше меньше, чем больше). При образовании осадка на дне или мути на стенках сосуда банку следует вымыть, налить отстоянную воду и поместить в нее культуру туфелек. Необходимо всегда держать в запасе куль туру туфелек, которой можно заменить погибшую, так как культура на молоке очень нестойка (особенно легко погибает при его избытке). В молочном растворе туфельки питаются размножающимися там в огромном количестве молочнокислыми бактериями. Можно разводить туфелек на сенном настое. Для этого в чистую кастрюлю или колбу кладут 10 г лугового сена на литр воды и кипятят в течение 15—20 мин. За это время погибают все простейшие и их цисты, но сохраняются споры бактерий. После кипячения остывший настой фильтруют через воронку с ватой, разливают в сосуды и закрывают ватно-марлевыми тампонами. Через 2—3 дня из спор развиваются сенные палочка, служащие пищей для инфузорий. В таком виде настой можно по мере надобности добавлять в культуру. Сохраняется он в течение месяца. Туфелек можно разводить на сушеных листьях салата, помещенных в мешочек из марли, и на пекарских дрожжах. Для выкармливания мальков некоторых рыб необходимо освободить культуру от бактерий и взвешенных в воде органических частиц. Для этого можно рекомендовать два способа. Первый из них описан выше: он основан на том, что туфельки служат естественными санитарами пресных вод, уничтожающими бактерий. При втором, более быстром, способе богатую культуру инфузорий помещают в цилиндр, сверху на жидкость кладут вату и затем осторожно на вату доливают свежую воду. Через полчаса большинство туфелек перемещаются в свежую воду и вместе с нею их переносят грушей в сосуд с мальками. Для постоянного поступления инфузорий в аквариум с мальками можно над ним поставить банку с инфузориями и повесить через край льняную нитку, по ней настой вместе с кормом будет медленно капать и служить источником питания молодых рыб.[7]


         

        1.3 Интересные факты из жизни простейших

        Одноклеточные завидуют

        В 1999 году, профессор Шейн Эггхэд и его коллеги из Университета Питтсбурга провели крупномасштабные исследования в области изучения зависти у инфузорий-туфелек. Исследовательскую команду ожидал неожиданный ошеломительный успех. Суть эксперимента заключалась в том, что за движение ресничками каждую инфузорию награждали порцией когерентного пучка света. После того как инфузории «поняли» схему, и стали шевелиться всякий раз, когда им хотелось света, эксперимент немного изменили. Давать свет стали только восьми заранее промаркированным инфузориям. Остальные же, завидев это, обижались, отползали в другой угол, и сидели там без движения. Опыт показал, что амебы способны проявлять такое примитивное чувство, как зависть.[3]
        Бесстрашные одноклеточные

        Всемирно известный микробиолог Айзек Хардкок в середине ХХ века провел весьма интересный эксперимент. Группе солнечников было предложено две зоны: в одной была пища, но в небольшом количестве, а в другой они могли получить большое количество еды, но при этом случайным образом подвергались ударам тока. Подавляющее большинство солнечников предпочитало пойти на осознанный риск, чтобы получить больше еды. Более того — даже когда вероятность получить удар тока была увеличена до 10 к 1, солнечники смело продолжали рисковать в ожидании выигрыша![3]

        Простейшие могут презирать

        Исследователи из Университета Дьюка стали свидетелями необычного поведения эвглены зеленой. Опыт состоял в том, что одна группа ученых закрывала свет и орошала колонию эвглены слабым раствором уксусной кислоты, а другая группа наоборот — включала свет и давала колониям живительный раствор. Спустя две недели, эвглены запомнили каждого из них. Как только в комнату заходили «плохие» исследователи, эвглены демонстративно сокращали вакуоли, выбрасывая остатки переработанной пищи, и пытались наброситься на своих мучителей даже через стекло пробирки. Когда же приходила вторая группа, то они просто радостно махали жгутиками.[3]

        Хищные инфузории

        Не обошлось в мире инфузорий без хищников. Инфузория туфелька может стать жертвой другой инфузории — дидиния.

        Дидиний меньше туфельки примерно в 5 раз. Порой дидиний нападают на свою добычу целым «отрядом» из 4—5 инфузорий. Они протыкают оболочку своей жертвы твёрдыми хоботками, а затем, постепенно расширяя ротовые отверстия, заглатывают её целиком!

        При этом дидиний страшно раздувается. В день один дидиний может съесть 10—12 туфелек[6]

        Самые способные среди простейших

        Был проведен эксперимент: туфельку помещали в капилляр, настолько узкий, что туфелька с трудом могла повернуться в нем. Плывя по капилляру, инфузория останавливалась у его закрытого конца и пыталась там повернуться, что ей удавалось лишь после долгих усилий и при сильной деформации всего тела. Сначала процесс длился около 4—5 мин.; было отчетливо видно, с каким трудом давалась эта процедура животному. Но со временем она проходила все легче. В некоторых случаях после 12-часового пребывания в капилляре туфельке удавалось повернуться за 1—2 сек. В сравнении с начальной реакцией процесс поворота занял примерно в 180 раз меньше времени.

        В одном опыте туфельку вначале раздражали током в красном поле, а в зеленом она могла плавать свободно. Отношение общего времени пребывания инфузории в красном поле ко времени пребывания в зеленом составило 11:94, т. е. наблюдалось отчетливое предпочтение инфузорией зоны, в которой ее не раздражали. Затем дрессировку изменили: туфельку раздражали в зеленом поле и не раздражали в красном. Полученное соотношение времени пребывания в обоих полях составляло 0:30. Еще одно изменение — соотношение 0:36. Все это относится к одной туфельке, которая в короткое время научилась избегать раздражающего поля.

        Здесь использовался в качестве раздражителя туфельки постоянный ток напряжением в 220 в. Дрессировка заключалась в том. что когда туфелька, находившаяся в темной половине, пересекала границу между светом и темнотой, она получала короткий удар электрическим током. Животное реагировало на это мгновенной остановкой и поворотом назад. Если инфузория поворачивала в темную половину, ее оставляли в покое. Но если она направлялась в сторону света, на нее действовали током; и так поступали до тех пор, пока туфелька не стала останавливаться в темной части. Уже после 45 мин. дрессировки инфузории на границе между светом и темнотой неожиданно поворачивали назад, еще не получив удара электрическим током.[7]


         

        2.Практическая часть:

        2.1 Методы и материалы.

        Для выявлений наличия инфузории туфельки в образцах воды мы использовали метод наблюдения. Для проведения опыта мы взяли 7 образцов воды:

        Вода из аквариума

        Вода из фильтра Аквариума

        Вода из крана

        Вода из поддона цветка

        Вода с почвогрунтом

        Талая вода (снег)

        Вода из колодца ( п. Индивидуальный)

          Техническое оснащение исследования (оборудование). Световые микроскопы с револьверным механизмом с увеличением до 40 раз, электронный микроскоп (микроскоп с насадкой-фотокамерой), фотоаппарат, пипетка, стеклянные колбы, стеклянная палочка, предметные стекла.
           

          Все пробы воды были взяты в один день. (Приложение 2). Начало эксперимента – 4 .02. 2013 г. Пробы воды были взяты пипеткой и были собраны в колбы. Далее каждой колбе был присвоен соответствующий номер. Колбы были помещены в учебный кабинет ДЭБЦ « натуралист». Условия нахождения образцов воды: 1) температура- 20-22 оС;2)Свет: освещение электрического света без воздействия прямых солнечных лучей.

          Все образцы воды находились в равных условиях. К моменту исследования образцы воды уже находились в кабинете ровно 3 дня. Образцы на наличие инфузории были исследованы 7.02.2013 г.

          2.2 Полученные результаты

          Мы определили, какая информация нам необходима для исследования.

          Мы определили, где будем брать воду для исследования.

          Нами были взяты образцы воды, которые мы пронумеровали ( Приложение2) и составлена следующая таблица ( Таб. 1 )

            Характеристика образцов воды на наличие органических остатков и степени прозрачности (Таб. 1)

            пробы

            Место пробы воды

            Наличие органических остатков

            Описание прозрачности воды

            1

            Аквариум

            Есть

            Вода белого цвета, мутная

            2

            Фильтр Аквариума

            Есть

            Вода прозрачная, бесцветная

            3

            Вода из под крана

            Нет

            Вода прозрачная, бесцветная

            4

            Вода из поддона цветка

            Есть

            Вода мутная, имеет зеленоватый оттенок

            5

            Вода с почвогрунтом

            Есть

            Вода прозрачная с сероватым оттенком

            6

            Талая вода ( снег)

            Нет

            Вода прозрачная, бесцветная

            7

            Вода из колодца (п. Индивидуальный)

            Нет

            Вода прозрачная, бесцветная


             

            По прошествии 3-ех дней мы каждый образец воды исследовали под электронным микроскопом на наличие в них инфузории-туфельки.

            Далее нами была заполнена следующая таблица

              Таблица 2 . Наличие инфузории в разных образцах воды

              пробы

              Место пробы воды

              Наличие органических остатков

              Наличие инфузории- туфильки

              1

              Аквариум

              Есть

              Есть

              2

              Фильтр Аквариума

              Есть

              Есть

              3

              Вода из под крана

              Нет

              Нет

              4

              Вода из поддона цветка

              Есть

              Есть

              5

              Вода с почвогрунтом

              Есть

              Есть

              6

              Талая вода (снег)

              Нет

              Нет

              7

              Вода из колодца (п. Индивидуальный)

              Нет

              Нет

              Затем происходил анализ полученных результатов. В ходе наблюдения мы выяснили, что инфузории находятся только в тех образцах воды, где есть органические остатки животных и растений. ( Приложение 3)

              Таким образом, мы подтвердили свою гипотезу.

                Выводы и рекомендации.

                Выводы:

                1.Мы изучили литературу по данной теме.

                2.Подобрали метод для исследования.

                3. С помощью подобранного нами метода выявили, в каких образцах воды находиться инфузория туфелька

                4. Наша гипотеза подтвердилась: Инфузории находятся в тех образцах воды, где находятся органические остатки водорослей и животных.

                Поэтому теперь я знаю, почему в моем аквариуме вода стала мутной: это быстро размножились маленькие, невидимые глазом инфузории- пришельцы.

                Вот наши рекомендации как предотвратить помутнение воды в аквариуме.

                Просто так бактерии и инфузории не плодятся. Инфузории питаются бактериями и размножаются когда их много. Бактерии же, размножаются когда в воде много отходов корма или кто-то умер в аквариуме. Если нет улиток или сомов, поедающих остатки пищи, то плодятся бактерии. При достатке света, ещё и водоросли могут расплодиться — вода зацветёт. Если рыб не кормить несколько дней, то они найдут и съедят все остатки корма, бактериям нечем будет питаться и их съедят инфузории. Затем большая часть из них погибнет и от недостатка пищи, но не все. Останется небольшая часть инфузорий и будет контролировать размножение бактерий. Полезные бактерии в фильтре и грунте переработают растворенную органику в воде и она станет кристально чистой. [6]

                Заключение

                Простейшие организмы, в том числе и инфузории, играют большую роль в жизни природы и человека. Простейшие — источник питания для других животных. В морях и в пресных водах простейшие, прежде всего инфузории и жгутиковые, служат пищей для мелких многоклеточных животных. Черви, моллюски, мелкие ракообразные, а также мальки многих рыб питаются преимущественно одноклеточными. Этими мелкими многоклеточными, в свою очередь, питаются другие, более крупные организмы. Самое большое из когда-либо живших на Земле животных — голубой кит, как и все другие усатые киты, питается очень мелкими ракообразными, населяющими океаны. А эти рачки питаются одноклеточными организмами. В конечном счете существование китов зависит от одноклеточных животных и растений.[8]

                Простейшие — участники образования горных пород. Рассматривая под микроскопом размельченный кусочек обыкновенного писчего мела, можно видеть, что он состоит преимущественно из мельчайших раковинок каких-то животных. Морскиепростейшие (корненожки и радиолярии) играют весьма важную роль в образовании морских осадочных горных пород. В течение многих десятков миллионов лет их микроскопически мелкие минеральные скелеты оседали на дно и образовывали мощные отложения. В древние геологические эпохи при горообразовательном процессе морское дно становилось сушей. Известняки, мел и некоторые другие горные породы в значительной мере состоят из остатков скелетов морских простейших. Известняки с давних пор имеют огромное практическое значение как строительный материал.[9]

                Изучение ископаемых остатков простейших играет большую роль в определении возраста разных слоев земной коры и нахождении нефтеносных слоев.

                Борьба с загрязненностью водоемов — важнейшая государственная задача. Простейшие — показатель степени загрязненности пресных водоемов. Каждому виду простейших животных необходимы для существования определенные условия. Одни простейшие живут только в чистой воде, содержащей много растворенного воздуха и не загрязненной отходами фабрик и заводов; другие приспособлены к жизни в водоемах средней загрязненности. Наконец, есть и такие простейшие, которые могут жить в очень загрязненных, сточных водах. Таким образом, нахождение в водоеме определенного вида простейших дает возможность судить о степени его загрязненности.

                Простейшие — возбудители болезней человека и животных. Среди простейших очень многие ведут паразитический образ жизни. Они поселяются в различных органах человека и животных и часто бывают причиной тяжелых заболеваний. К болезням, вызываемым простейшими, относятся, например, малярия и кожный.[8]

                Итак, простейшие имеют огромное значение в природе и в жизни человека.
                 

                Литература
                1.Грин Н., Стаут У., Тейлор Д. Биология в 3-х томах. Пер. с англ. М.: Мир, 1990

                2.Ян Дембовскии. Психология животных. М, ИЛ, 1959.

                3.Сетевой журнал «Живая Планета» 30 ноября 2009
                4. http://аquаdоmі k.ru

                5 http://zoo.rin.ru/cgi-bin/index.pl?idr=11&art=63

                6 http://www.aquaria.com.ua/infuzoria.html

                7 http://petsmania.ru/publ/43-1-0-113

                8 http://paramecia.narod.ru/inf.htm

                9http://www.zoodrug.ru/topic1857.html

                 

                Приложение 1


                 

                Мой аквариум


                 


                 


                 

                Приложение 2


                 


                 


                 


                 


                 


                 


                 


                 


                 


                 


                 

                Рис 1 Проба воды из под крана Рис 2 проба воды из поддона цветка


                 


                 


                 


                 


                 


                 


                 


                 


                 


                 


                 


                 

                Рис. 3 образец почво- грунта Рис. 4 образец снега


                 

                 


                 


                 


                 


                 


                 


                 


                 


                 

                Рис 5 Образец воды из аквариума и фильтра


                 


                 


                 

                Рис 6 Образцы воды для исследования


                 


                 


                 


                 


                 

                Приложение 3


                 


                 


                 


                 


                 


                 


                 


                 

                Рис 1 Образец из фильтра аквариума Рис 2 Образец из аквариума

                Рис 3 Образец из поддона цветка Рис 4 Инфузория и водоросль (поддон цветка)


                 

                Рис 5 Инфузория –трубач( Образец почвогрунта) Рис. 6 Инфузории в воде с почвогрунтом

                 

                Видеоурок по биологии 7 класс тема Инфузория туфелька

                Скорость воспроизведения 0 0

                03:39

                Поговорим сегодня и более сложном представителе простейших — инфузории туфельки. Это одноклеточное животное длиной 0,5 мм имеет веретеновидную форму тела, отдалённо напоминающую туфлю. 

                О том, какое строение имеет инфузория и какое значение имеет в природе, поговорим на нашем уроке.

                Следующие уроки

                02:20

                Инфузории — обзор | ScienceDirect Topics

                Balantidium coli

                Balantidium coli — крупнейшее кишечное простейшее человека и единственная инфузория (рис. 87-5). 279 Это редкая причина диареи и воспалительного колита. Размер трофозоитов варьируется от 60 до 70 мкм (длина может достигать 150–200 мкм), обычно он имеет яйцевидную форму и имеет большое почковидное макронуклеус с маленьким микроядром, часто лежащим в его вогнутости (рис. 87-6).Спереди у него есть цитозома туннельной формы, а сзади небольшое отверстие в клеточной мембране, называемое цитопигом. В цитоплазме есть множество вакуолей и иногда внутриклеточные эритроциты. Он покрыт продольными рядами ресничек, которые помогают продвигать организм. Форма кисты также большая, от 40 до 60 мкм, от округлой до овальной, с гладкими стенками. Может быть видно характерное ядро.

                Человек — случайный хозяин этого патогена, который часто обитает в толстой кишке многих млекопитающих.Свиньи, вероятно, являются одним из основных источников заражения человека, поскольку они обычно заражаются. 280, 281 Группа случаев заражения людей в Папуа-Новой Гвинее продемонстрировала тесную связь людей со свиньями, 282 , как и случаи в сельской местности в Венесуэле. 283 О крупной вспышке балантидиаза было сообщено с островов Трук в Микронезии, где было постулировано, что источники воды были загрязнены фекалиями свиней после тайфуна. 284 Однако у мусульман из Ирана не было контакта со свиньями, что указывает на наличие других источников инфекции. 285 Паразит обнаружен у земноводных и насекомых. 286

                Хотя о симптоматической инфекции B. coli сообщалось из Америки, Африки и Латинской Америки, она остается необычной. В Соединенных Штатах он был обнаружен менее чем в 0,1% стула и только в трех штатах. 70 Эта низкая распространенность в Соединенных Штатах аналогична таковой в других странах с умеренным климатом. 286, 287 Описаны случаи у содержащихся в неволе, низинных горилл и других приматов. 288, 289

                Клиническая инфекция варьируется от бессимптомной, что составляет более 50% случаев, до хронической, перемежающейся диареи и потери веса, до острой дизентерии примерно в 5% случаев. 288, 290 Диарея характеризуется жидким стулом в несколько раз в день, болями в животе и спазмами и может быть связана с кровью и слизью. Аппендицит, перфорация кишечника с перитонитом и смертью, а также диссеминированная инфекция печени и легких были зарегистрированы, но встречаются редко. 290–295 Большинство случаев тяжелой внелегочной инфекции произошло у хозяев с ослабленным иммунитетом. 296, 297

                При экспериментальной инфекции B. coli , по-видимому, вызывает заболевание путем инвазии слизистой оболочки от терминального отдела подвздошной кишки в прямую кишку с последующим воспалением. 298 Эти данные подтверждаются сигмоидоскопическими и патологическими образцами человеческой инфекции. 286, 290, 299 Проникновению через слизистую оболочку может способствовать действие гиалуронидазы. 300 Чаще всего язвы множественные и поверхностные, но они могут прогрессировать до глубоких язв с перфорацией. Язвы могут напоминать язвы, образованные Entamoeba histolytica .

                Диагноз ставится при обнаружении трофозоитов в свежем стуле или соскобах язв из толстой кишки. В то время как кисты могут быть обнаружены в кале при обследовании O&P, чаще ставят диагноз, обнаруживая трофозоиты. 285, 286, 290 B. coli можно выращивать на искусственных средах, 38 , но этот метод недоступен.Эффективно лечение тетрациклином, йодохинолом и метронидазолом (см. Таблицу 87-2). 221, 282, 286, 301, 302

                Молекулярная филогения инфузорий циртофорид (Protozoa, Ciliophora, Phyllopharyngea)

                4 J 900 W (2012) Молекулярная филогения инфузорий циртофорид (Protozoa, Ciliophora, Phyllopharyngea). PLoS ONE 7 (3): e33198. https: // doi.org / 10.1371 / journal.pone.0033198

                Редактор: Дирк Стейнке, Институт биоразнообразия Онтарио — Университет Гвельфа, Канада

                Поступила: 29 октября 2011 г .; Одобрена: 6 февраля 2012 г .; Опубликован: 12 марта 2012 г.

                Авторские права: © 2012 Gao et al. Это статья в открытом доступе, распространяемая в соответствии с условиями лицензии Creative Commons Attribution License, которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии указания автора и источника.

                Финансирование: Работа поддержана Китайским фондом естественных наук (проект № 31030059). Финансирующие организации не играли никакой роли в дизайне исследования, сборе и анализе данных, принятии решения о публикации или подготовке рукописи.

                Конкурирующие интересы: Авторы заявили об отсутствии конкурирующих интересов.

                Введение

                В системе, представленной Линном [1], подкласс Cyrtophoria, сильно дивергентная группа инфузорий, включает 2 порядка, 9 семейств и 46 родов [1] — [6].На большинстве схем эта группа изображена как четко очерченный монофилетический ансамбль. Однако они отличаются друг от друга отношениями и систематическим положением между конституционными родами, потому что относительно небольшое количество морфогенетических критериев может использоваться в таксономии и систематическом анализе [7] — [11].

                По сравнению с огромным количеством морфотипов, известных на сегодняшний день, молекулярная информация Cyrtophoria относительно редка. Например, только 6 родов cyrtophorian имеют доступные последовательности SS рРНК в базе данных GenBank, и было проведено очень мало молекулярных исследований, касающихся филогении этой группы, но см. [12] — [17].Среди них Snoeyenbos-West et al. [13] впервые предоставили молекулярную поддержку монофилии циртофориан, что было снова подтверждено Li & Song [15], [16]. Тем не менее, вышеупомянутые исследования в основном сосредоточены на взаимоотношениях таксонов более высокого уровня на основе очень ограниченного выбора видов, в то время как систематические договоренности между группами более низкого уровня, в которых проживает наибольшая путаница и споры, не были прояснены [15], [16].

                В данной работе мы секвенировали ген SS рРНК 18 видов, представляющих 17 родов, а затем провели филогенетический анализ.Наша цель состоит в том, чтобы расширить понимание филогении этой чрезвычайно запутанной группы, особенно сосредоточив внимание на отношениях между родами / семьями, и предоставить дополнительную молекулярную информацию для будущих исследований этого сообщества.

                Материалы и методы

                Источник организмов и морфологическая идентификация

                Виды, секвенированные в настоящем исследовании, были собраны в северном и южном Китае (рис. 1, таблица S2). Культивирование и морфологическое исследование этих видов проводились согласно Pan et al.[18]. Идентификация видов проводилась на основе литературных источников [8], [19], [20]. Терминология и систематическая схема следуют Линн [1].

                Рисунок 1. Схематические диаграммы морфовидов, представляющих роды, секвенированные в настоящем исследовании [19].

                Кладограмма по системе классификации Линн [1]. Стрелки указывают на перенос нескольких видов: Microxysma от Hartmannulidae к Dysteriidae; Pithites и Trochochilodon от Dysteriida до Hartmannulida.

                https://doi.org/10.1371/journal.pone.0033198.g001

                Извлечение ДНК, ПЦР-амплификация и секвенирование

                Выделение клеток и выделение геномной ДНК проводили согласно Gong et al. [21]. Праймерами, использованными в настоящем исследовании, были EukA и EukB [22]. Полимеразная цепная реакция (ПЦР) следовала протоколу Yi & Song [23].

                Вторичная структура интрона

                Три интрона в последовательности SS рРНК Aegyriana oliva были идентифицированы путем выравнивания нескольких циртофорных инфузорий без интронов с использованием CLUSTAL W 1.83 [24]. Вторичная структура интронов была предсказана Базой данных последовательностей и структур интронов группы I (GISSD) [25] с использованием модели ковариации (CM) начального выравнивания интронов IC1 и IE в пакете INFERNAL V0.81 (http: / /infernal.janelia.org/).

                Филогенетические анализы

                Последовательности

                , недавно полученные в этом исследовании, были депонированы в базе данных GenBank с номерами доступа, перечисленными в таблице 1. Другие последовательности, используемые для построения филогенетического дерева, были получены из базы данных GenBank (таблица 1).Набор данных 1 включает представителей всех классов Ciliophora и был согласован с моделью «Ciliophora» с использованием Hmmer 2.3.2 [26]. Набор данных 2 был уменьшен до двух классов, Phyllopharygea и Nassophorea, что было согласовано с моделями «Phyllopharyngea» и «Nassophorea». Неопределенно выровненные сайты были уточнены с помощью Gblocks v.0.91b [27], что дало выравнивание 1557 и 1455 символов для набора данных 1 и набора данных 2 соответственно. Из-за более конкретной модели, используемой для выравнивания последовательностей, филогенетические деревья, построенные с использованием набора данных 2, имеют ту же топологию, что и деревья из набора данных 1, но с немного более высоким значением начальной загрузки / апостериорной вероятностью (рис.2, S1, S2).

                Рисунок 2. Филогенетические деревья (BI / ML), полученные из набора данных 2 малых субъединичных генов рибосомной РНК.

                Виды, секвенированные в настоящем исследовании, выделены жирным шрифтом. Числа в узлах представляют значение байесовской апостериорной вероятности и значения начальной загрузки от максимального правдоподобия. Сплошные кружки представляют полную поддержку начальной загрузки в обоих алгоритмах.

                https://doi.org/10.1371/journal.pone.0033198.g002

                Байесовский вывод (BI) был выполнен с помощью MrBayes 3.1.2 [28] с использованием эволюционной модели GTR + I + G, указанной в MrModeltest v.2 [29]. Программа была запущена для 1 000 000 поколений с частотой дискретизации 100 и прожигом 2 500. Все деревья, оставшиеся после отбрасывания выгораний, использовались при вычислении апостериорных вероятностей с использованием консенсуса по правилу большинства.

                Программа Modeltest 3.7 [30] выбрала GTR + I + G (набор данных 1: G = 0,5422, I = 0,2922; набор данных 2: G = 0,5628, I = 0,2835) по критерию AIC как лучшую модель, которая затем использовалась для анализ максимального правдоподобия (ML).Дерево ML было построено с помощью программы PhyML v2.4.4 [31]. Надежность внутренних ветвей оценивалась непараметрическим методом начальной загрузки с использованием 1000 повторов.

                Дерево максимальной экономии (MP) было построено на основе информативных сайтов (набор данных 1: 655 сайтов; набор данных 2: 648 сайтов) с PAUP * 4.0b10 [32]. Надежность внутренних ветвей оценивалась с помощью начальной загрузки 1000 реплик.

                Семь анализов ML с ограничениями были выполнены PAUP * 4.0b10 [32] в соответствии с ограничениями, перечисленными в таблице 2. Полученные ограниченные топологии затем сравнивались с неограниченной топологией ML с использованием теста Approximately Unbiased (AU) [33], реализованного в CONSEL v0.1 [34]. Для всех ограничений внутренние отношения внутри ограниченных групп не были определены, как и отношения между остальными таксонами.

                Номенклатурные акты

                Электронная версия этого документа не представляет собой опубликованную работу в соответствии с Международным кодексом зоологической номенклатуры (ICZN), и, следовательно, номенклатурные акты, содержащиеся в электронной версии, недоступны в соответствии с этим Кодексом из электронного издания.Таким образом, отдельное издание этого документа было подготовлено методом, обеспечивающим получение множества идентичных и надежных копий, и эти копии были одновременно доступны (с даты публикации, указанной на первой странице этой статьи) с целью обеспечения общедоступного и постоянного научная запись в соответствии со статьей 8.1 Кодекса. Отдельное издание только для печати доступно по запросу в PLoS, отправив запрос в PLoS ONE, 1160 Battery Street, Suite 100, Сан-Франциско, Калифорния 94111, США вместе с чеком на 10 долларов (для покрытия печати и почтовых расходов), подлежащего оплате на « Публичная научная библиотека ».

                Кроме того, эта опубликованная работа и содержащиеся в ней номенклатурные акты были зарегистрированы в ZooBank, предлагаемой системе онлайн-регистрации для ICZN. LSID ZooBank (идентификаторы наук о жизни) могут быть решены, а связанная информация просмотрена через любой стандартный веб-браузер, добавив LSID к префиксу «http://zoobank.org/». LSID для этой публикации: Gao et al., Статья в PLoS ONE: urn: lsid: zoobank.org: act: 68A7A13F-341B-4F85-A898-6A30D3391516.

                Результаты

                Филогенетические деревья

                Топологии всех деревьев в целом согласуются со схемами классификации, предложенными предыдущими исследователями (Таблица S1).Класс Phyllopharyngea представляет собой монофилетическую кладу с четырьмя отдельными группами: Cyrtophoria, Chonotrichia, Suctoria и Rhynchodia. Cyrtophoria состоит из двух отдельных групп: Dysteriida и Chlamydodontida, причем Chonotrichia вложена в Dysteriida (см. Обсуждение ниже). Suctoria и Rhychodia позиционируются как периферические ветви Cyrtophoria, тогда как класс Nassophorea является ближайшей «внешней группой» по отношению к классу Phyllopharyngea. Эти результаты также согласуются с предыдущими отчетами [12], [13], [15], [16].

                Отряд Dysteriida является монофилетической кладой, состоящей из двух хорошо разделенных групп, семейств Dysteriidae и Hartmannulidae. Внутри Dysteriidae Mirodysteria всегда относились к виду Dysteria . Microxysma объединяется с Trochilia , а не с видами Chlamydodontida, как предполагалось в предыдущих схемах (Таблица S1). В пределах Hartmannulidae недавно секвенированные Aegyriana сгруппировались с Trichopolliella , которые затем сгруппировались с Hartmannula и Heterohartmannula . Trochiliodes образуют базальную ветвь из указанных выше четырех родов. В отличие от двух вышеупомянутых семейств, порядок ветвления Plesiotrichopidae не был однозначно разрешен в настоящих топологиях. Trochochilodon всегда появлялся как периферическая ветвь от Dysteriida (+ Chonotrichia) (рис. 2, S1, S2). Однако положение Pithites не определено; он сгруппировался с видами Lynchellidae в MP-дереве из набора данных 2 (с низким значением начальной загрузки, рис. S2), но разветвился вне и параллельно Chlamydodontida на других деревьях (рис.2, S1).

                Отряд Chlamydodontida был разделен на три четко определенных семейства: Chlamydodontidae, Chilodonellidae и Lynchellidae. В семействе Chlamydodontidae Paracyrtophoron гнездится в пределах Chlamydodon . С другой стороны, топология семейства Chilodonellidae совпадает с предыдущими схемами (Таблица S1), в которых Pseudochilodonopsis сформировали кладу с Chilodonella и затем сгруппировались в два вида из Trithigmostoma .В семействе Lynchellidae впервые секвенированы и проанализированы четыре рода: Chlamydonella , Chlamydonellopsis , Lynchella и Coeloperix . Они последовательно образуют монофилетическую кладу во всех топологиях и, таким образом, соответствуют концепции семейства Lynchellidae согласно Янковскому [35]. Внутри этих четырех родов были выделены две группы; один — Chlamydonella и Chlamydonellopsis , а другой — Lynchella и Coeloperix .Тесное родство Coeloperix и Lynchella является истинным отражением их сходной морфологии с небольшой разницей (присутствие CSB в Lynchella по сравнению с отсутствием в Coeloperix ) [36].

                Вид Chonotrichia, Isochona sp., Сгруппированный с харманнулидами, в то время как единственные секвенированные роды Rhynchodia, Hypocoma , образовали сестринскую кладу с монофилетической кладой Suctoria, которая базально ответвляется от всех циртофориев (рис.2, S1, S2).

                Анализы интронов в гене SS рРНК

                Aegyriana oliva

                Мы обнаружили три интрона группы I (376–446 нуклеотидов) в гене рРНК SS Aegyriana oliva (рис. 3). Они находятся в положениях 516, 943 и 1506 гена рРНК SS E. coli (J01695), которые названы Aol.S516, Aol.S943 и Aol.S1506 вслед за Johansen и Haugen [37]. Предсказанная вторичная структура показала, что Aol.S516 был аффилирован с группой IE1, в то время как Aol.S943 и Aol.S1506 были аффилированы с группой IC1 (рис. 3B – 3D).

                Рисунок 3. Три интрона группы I в малой субъединице гена рибосомной РНК Aegyriana oliva .

                A. Сводная информация об интронах группы I у инфузорий. Виды, представленные в настоящем исследовании, выделены жирным шрифтом. B – D. Вторичная структура трех интронов, предсказанная базой данных GISSD. B. Aol. S516. C. Aol. S943. Д. Aol. S1506.

                https://doi.org/10.1371/journal.pone.0033198.g003

                Обсуждение

                Отряд Chlamydodontida — парафилия

                Несмотря на то, что все три составляющих семейства были монофилетическими группами, наши результаты последовательно показали, что отряд Chlamydodontida был парафилетическим сообществом. Более того, тест AU в этом исследовании с расширенным набором последовательностей (10 родов, 13 видов) опроверг возможность того, что Chlamydodontida является монофилетической кладой (таблица 2, ограничение 2, p = 0.01) и подтвердили достоверность филогенетических результатов. Это согласуется с другими исследованиями, хотя только четыре вида были включены в предыдущие молекулярные деревья [12], [13], [15], [16].

                Основываясь на паттернах ресничек и структуре макронуклеуса, Гонг [19] отнес семейства с соседними гетеромерными макронуклеусами, Chilodonellidae и Lynchellidae, к подотряду Chlamydodontina, в то время как поместил Chlamydodontidae (+ Gastronautidae) с центральноядерным гетеромером.Это отнесение согласуется со схемой, предложенной de Puytorac [4] (Таблица S1), но не подтверждается нашими филогенетическими результатами, в которых эти три семейства образовали отдельные монофилетические клады. Соответственно, тест AU отклонил возможность того, что Chilodonellidae и Lynchellidae принадлежат к монофилетической группе (таблица 2, ограничение 3, p = 0,007), предполагая, что признак макронуклеуса не может быть сильным диагностическим признаком для различения монофилетических групп.

                Связь между

                Paracyrtophoron и Chlamydodon

                В нашем анализе Paracyrtophoron гнездились внутри видов Chlamydodon .Однако Paracyrtophoron можно легко отличить от Chlamydodon по отсутствию поперечно-полосатой полосы (CSB) по периферии соматического поля [38]. Такие несоответствия могут быть приписаны эволюционному сценарию, согласно которому CSB является конвергентным признаком с некоторыми членами Lynchellidae, что может не отражаться в последовательностях SS рРНК. Более того, тест AU не опровергает возможность того, что Chlamydodon является монофилетической кладой (таблица 2, ограничение 1, p = 0.169). На данный момент имеющиеся данные не могут подтвердить парафилию Chlamydodon .

                Microxysma является представителем семейства Dysteriidae.

                Основными особенностями, позволяющими отличить Hartmannulidae от Dysteriidae, являются форма тела и строение левых вентральных кинетий [5]. У Hartmannulidae тело заметно уплощено в дорсовентральном направлении, а левые вентральные кинетии обычно развиты и продолжаются с правыми, тогда как у Dysteriidae тело в основном сильно уплощено с двух сторон, а левые кинетии чрезвычайно уменьшены и ограничены экваториальной областью [9]. ] — [11].

                Во всех предыдущих схемах классификации на основе морфологии (таблица S1) Microxysma относилась к семейству Hartmannulidae. Но это отнесение не подтверждается нашими молекулярными деревьями, в которых Microxysma был размещен отдельно от видов Hartmannulidae. Более того, возможность того, что Microxysma и виды Hartmannulidae являются монофилетическими, также была опровергнута тестом AU (таблица 2, ограничение 7, p = 0,002). Фактически, существует большая морфологическая разница между Microxysma и хартманнулидами.В Microxysma сильно укороченные левые кинетии выродились в ограниченную область, которая практически отличается от таковых у типичных видов хартманнулид, кинети которых покрывают большую часть левой стороны. Скорее, двусторонне сжатая Microxysma разделяет основной паттерн инфузорий с видами Dysteriidae, т.е. грамм. правые кинети расположены по узкому вентральному краю с уменьшенным левым полем кинетис [19]. По сравнению с другими типичными дистериидами, цилиарный паттерн Microxysma подобен таковому у dysteriid Trochilia , что может объяснить его соседнее положение с последним во всех топологиях молекулярных деревьев.Таким образом, как морфологические, так и молекулярные данные предполагают, что Microxysma следует переносить от Hartmannulidae к Dysteriidae.

                Парафилий семейства Plesiotrichopidae и систематические позиции

                Trochochilodon и Pithites , с установлением нового семейства Pithitidae n. fam

                Семейство Plesiotrichopidae было создано Деру [8], и его диагноз был приблизительно установлен по наличию « Chilodonella -подобной инфрацилиатуры и адгезивного аппарата, расположенных по центру вентральной впадины».Как показано в Таблице S1, Plesiotrichopidae были предварительно отнесены к отряду Dysteriida в большинстве классификационных схем [1], [2], [4], [5], [9], однако на сегодняшний день отношения / систематические положения таксоны этого семейства никогда не исследовались с использованием молекулярной информации. Мы дополнили эти знания анализом филогении этого семейства на основе данных последовательностей гена SS рРНК двух родов, Trochochilodon и Pithites . Это указывает на то, что два рода систематически удалены друг от друга, что делает семейство Plesiotrichopidae парафилетическим сообществом.Эти результаты хорошо соответствуют морфологическим и морфогенетическим различиям между двумя родами: и структура буккального аппарата, и процесс формирования во время бинарного деления значительно отличаются друг от друга [8], [18], [39]. Топология также предполагает, что ни один из них не должен быть помещен в текущий отряд Dysteriida, потому что Trochochilodon сгруппированы вне отряда Dysteriida, а Pithites расположены базально по отношению к другим cyrtophorians.Следовательно, как молекулярные, так и морфологические / морфогенетические данные ставят под сомнение схему расположения их в одном семействе.

                К сожалению, систематическое положение и определение семейства Plesiotrichopidae до сих пор остаются нерешенными. Проблема в том, что молекулярные данные для типового рода Plesiotrichopus полностью отсутствуют, и не многие таксономические признаки могут быть использованы для характеристики родов внутри семейства. В результате доступно небольшое количество свидетельств, позволяющих определить, какое из них близко к типовому роду.Другая путаница возникает из-за присутствия доминантной трубчатой ​​структуры (секреторных каналов) у Plesiotrichopus , которая отсутствует у Pithites и Trochochilodon . Если это критический признак этого семейства, оба Pithites и Trochochilodon должны быть перенесены из текущего таксона. В настоящее время семейство Plesiotrichopidae относится к таксону incertae sedis .

                Что касается филогении, не было обнаружено тесной связи между Pithites и dysteriids.Более того, возможность того, что Pithites и Dysteriidae образуют монофилетическую кладу, также была отклонена тестом AU (таблица 2, ограничение 6, p = 0.002), что также подтверждается морфологическими особенностями. Например, таксоны в отряде Dysteriida диагностируются по наличию адгезивной органеллы (обычно гибкого подита), которая отсутствует у Chlamydodontida [1], [2], [5], [8], [39], тогда как У Pithites такой органеллы нет. Хотя нить из секретарного канала (характер Plesiotrichopus ) была упомянута в Pithites Деру и Драгеско [40], это не подтверждается в наблюдениях Пэна in vivo [18].Кроме того, Pithites разделил левую и правую кинетии, чего никогда не было у dysteriids (по сравнению с непрерывными). Учитывая, что Pithites занимает периферическое положение по отношению к Chlamydodontida в большинстве топологий, не имеет подита и обладает уникальной оральной структурой (апикально расположенной, несколько фрагментов кинети, излучаемых вокруг цитостома), он может принадлежать к изолированному таксону (по крайней мере) в семействе уровень и должен быть переведен из Dysteriida в отряд Chlamydodontida. Поэтому мы предлагаем здесь новое семейство Pithitidae n.fam. с типовым родом Pithites в отряде Chlamydodontida (урна: lsid: zoobank.org: act: 68A7A13F-341B-4F85-A898-6A30D3391516). Семейство характеризуется сочетанием следующих признаков: (1) пелагические формы с почти несжатой формой тела и апикально расположенным цитозотмом; (2) хорошо развитые соматические кинетики как на левом, так и на правом поле с заметной зоной без ресничек между ними; (3) ротовой аппарат, состоящий из нескольких кинетических фрагментов вокруг цитостома; и (4) без подита, но имеющий «тигмотаксическое поле» субкаудально около меридиана вентральной стороны, где расположена нитевидная адгезивная органелла [39].

                Между тем, относительно очевидно, что род Trochochilodon также должен быть передан от Dysteriida к Chlamydodontida. Согласно наблюдениям Пан [41], этот Chilodonella -подобный таксон очень похож на виды хламидодонтид. Первый отличается от второго только наличием двух преоральных кинетий (против трех у хламидодонтидов), а поле без ресничек между левыми и правыми соматическими кинетиями незаметно (доминирует у некоторых хламидодонтидов; рис.1). Что касается положения, выявленного в нашем топологическом анализе на основе SS рРНК, разумно сделать вывод, что этот организм может представлять собой промежуточную форму, более близкую к хламидодонтидам, чем к дистериидам [8]. Однако вопрос о том, принадлежит ли он к семейству Plesiotrichopidae, все еще требует дальнейшего изучения, поскольку молекулярная информация о типовом роде Plesiotrichopus в настоящее время отсутствует.

                Таким образом, можно сделать три вывода: (1) современное семейство Plesiotrichopidae состоит из парафилетических клад, и большинство из них систематически неясны; (2) и Pithites , и Trochochilodon должны быть переданы из отряда Dysteriida, и они, вероятно, принадлежат к Chlamydodontida; и (3) на основе морфологической / морфогенетической и молекулярной информации новое семейство Pithitidae n.fam. предлагается для рода Pithites .

                Данные

                Isochona sp. может происходить от неправильно идентифицированного организма

                Isochona sp., Единственный секвенированный вид подкласса Chonotrichia, в наших результатах был расположен базально по отношению к другим хартманнулидам. Однако морфологически хонотрихи представляют собой узкоспециализированную группу с множеством уникальных признаков, например стиль жизни прикрепления (или aufwuchs) с корпусом в форме колбы, неслитым процессом конъюгации и сильно уменьшенной инфрацилиатурой, которая расположена по спирали и ограничена стенкой холера и т. д.[2], [11]. Все вышеперечисленные критерии указывают на то, что их следует четко отличать от таксонов циртофоров. Разумным объяснением нашего филогенетического результата является неправильная идентификация материала. Виды Chonotrichia непригодны для культивирования и, как формы перифитона, они легко смешиваются с другими прикрепляющимися инфузориями при отборе проб. Более того, к настоящему времени секвенирована только одна популяция / вид ( Isochona sp.) Из этого подкласса. Таким образом, последовательность, представленная в базу данных GenBank, скорее всего, принадлежит неправильно идентифицированному организму, то есть циртофориду, а не хонотриху.

                Мелкое исследование отряда Дистериида

                Как указано выше, Pithites и Trochochilodon были переданы из отряда Dysteriida в Chlamydodontida, а Isochona , вероятно, является хартманнулидом. Это оставляет отряд Dysteriida монофилетической кладой с двумя хорошо поддержанными группами, Dysteriidae и Hartmannulidae. Четкое разделение этих двух семейств ожидалось на основе их отличительной морфологии: виды у Dysteriidae имеют «левовентральные соматические кинети в качестве средневентрального посторального поля, обычно отделенные от переднего преорального поля», а виды у Hartmannulidae имеют «левовентральные соматические кинетики». , что может быть довольно коротким, как непрерывное поле »[5].

                Кроме того, Dysteriidae и Hartmannulidae обнаруживаются как тесно связанные сестринские группы (Fig. 2, BI / ML: 1.00 / 92), и они оба имеют очень сходную вторичную структуру области V2. Это соответствует тому факту, что они оба охватывают порядковый признак, такой как дорсовентрально сжатая форма тела, нетигмотактические вентральные реснички и соседние гетеромерные макронуклеусы [5].

                Интроны I группы в циртофоридах

                Сообщалось о четырех интронах группы I в гене рРНК SS трех инфузорий, два из них — у Tokophrya lemnarum и один — у Acineta sp.и Trichopodiella faurei по каждая [12], [13]. В нашей текущей работе Aegyriana oliva является четвертым описанным реснитчатым веществом, охватывающим интроны, а также первым зарегистрированным реснитчатым веществом, имеющим три интрона, а именно Aol.S516, Aol.S943 и Aol.S1506. S943 был впервые описан в Trichopodiella faurei [12], тогда как интрон S1506 был описан только в Tokophrya lemnarum [13]. Насколько нам известно, Aol.S516 является первым интроном, обнаруженным в положении 516 гена рРНК SS реснитчатого.

                На основе консервативной вторичной структуры, консервативных ядер нуклеотидных областей и филогенетического анализа интроны группы I были разделены на пять основных групп: IA, IB, IC, ID и IE [42]. Aol.S943 и Aol.S1506 принадлежат к группе IC, так же как четыре ранее описанных интрона рРНК SS и девять интронов рРНК LS. Напротив, Aol.S516 является единственным интроном IE группы I, обнаруженным до сих пор у инфузорий (Fig. 3A). Интересно, что все перечисленные выше виды, включающие интроны SS рРНК, относятся к классу Phyllopharyngea, тогда как интроны LS рРНК описаны только в тетрагименидном роду Tetrahymena (рис.3A), который принадлежит к классу Oligohymenophorea, группе, далекой от cyrtophorians [1]. Что касается различных структурных особенностей и разбросанных систематических положений этих интронов, еще слишком преждевременно оценивать их эволюционное значение.

                Гипотрихозные инфузории (Protozoa: Ciliophora) из временного пруда в Аргентине, с переописанием Apoamphisiella hymenophora (Stokes, 1886) Berger, 1999

                Бергер, Х. (1999) Монография по Oxytrichidae (Ciliophora, Hypotrichia). Monographia Biologicae , 78, 1–1080.

                Бергер, Х. (2006) Монография по Urostyloidea (Ciliophora, Hypotricha). Monographia Biologicae , 85, 1–1304.

                Бергер, Х. (2008) Монография по Amphisiellidae и Trachelostylidae (Ciliophora, Hypotricha). Monographia Biologicae , 88, 1–737.

                Бергер Х. (2011) Монография по Gonostomatidae и Kahliellidae (Ciliophora, Hypotricha). Monographia Biologicae , 90, 1–741.

                Боррор, А.С. (1972) Ревизия отряда Hypotrichida (Ciliophora, Protozoa). Протозоология, журнал , 19, 1–23.
                http://dx.doi.org/10.1111/j.1550-7408.1972.tb03407.x

                Корлисс, Дж. (1960) Проблема омонимов среди родовых названий ресничных простейших с предложением нескольких новых названий. Протозоология, журнал , 7, 269–278.
                http://dx.doi.org/10.1111/j.1550-7408.1960.tb00741.x

                Dragesco, J. (2003) Infaciliature et morphometrie de vingt espèces de ciliés hypotriches recoltès au Rwanda et Burundi, comprenant quadrinu Kahliella п.sp. Pleurotricha multinucleata n. sp. et Laurentiella bergeri n. sp. Travaux du Muséum National d’Histoire Naturelle «Grigore Antipa» , 45, 7–59.

                Dragesco, J. & Dragesco-Kernéis, A. (1986) Ciliés libres de l’Afrique intertropicale. Введение в connaissance и l’étude des ciliés. Faune Tropicale , 26, 1–159.

                Dragesco, J. & Njine, T. (1971) Комплименты la connaissance des ciliés libres du Cameroun. Анналы факультета наук, Федеральный университет Камеруна , 7–8, 97–140.

                Эренберг, К.Г. (1831) Über die Entlwicklung und Lebensdauer der Infusionsthiere; nebst ferneren Beiträgen zu einer Vergleichung ihrer organischen Systeme. Abhandlungen der Preussischen Akademie der Wissenschaften, Physikalisch-Mathematische Klasse , 1831, 1–154.

                Engelmann, T.W. (1862) Zur Naturgeschichte der Infusionsthiere. Zeitschrift für wissenschaftliche Zoologie , 11, 347–393.

                Фойсснер, В. (1982) Ökologie and Taxonomie der Hypotrichida (Protozoa: Ciliophora) einiger österreichischer Böden. Archiv für Protistenkunde , 126, 9–17.

                Фойсснер, В. (1984) Infraciliatur, Silberliniensystem und Biometrie einiger neuer und wenig bekannter terrestrischer, limnischer und mariner Ciliaten (Protozoa: Ciliophora) aus den Klassen Kinetofragminophora, Colpomenophora und Polyhyhyna. Stapfia , 12, 1–165.

                Фойсснер В. (1992) Оценка видового богатства почвенных простейших с использованием «незатопляемого метода чашки Петри». В : Ли, Дж. Дж. И Сольдо, А.Т. (ред.), Протоколы в протозоологии . Общество протозоологов, Allen Press, США, B-10.1.

                Фойсснер В. (1997) Инфузории почвы (Protozoa: Ciliophora) из вечнозеленых дождевых лесов Австралии, Южной Америки и Коста-Рики: разнообразие и описание новых видов. Биология и плодородие почв , 25, 317–339.
                http://dx.doi.org/10.1007/s003740050322

                Фойсснер, В. (2006) Биогеография и распространение микроорганизмов: обзор с упором на простейших. Acta Protozoologica , 45, 111–136.

                Фойсснер В. (2008) Разнообразие и распространение протистов: некоторые основные соображения. Биоразнообразие и сохранение , 17, 235–242. http://dx.doi.org/10.1007/s10531-007-9248-5

                Foissner, W., Agatha, S. & Berger, H. (2002) Инфузории почвы (Protozoa, Ciliophora) из Намибии (Юго-Западная Африка) ), с акцентом на двух контрастирующих средах, регионе Этоша и пустыне Намиб. Денис , 5, 1–1063.

                Фойсснер, В., Блаттерер, Х., Бергер, Х. и Кохманн, Ф. (1991) Taxonomische und ökologische Revision der Ciliaten des Saprobiensystems — Группа I: Cyrtophorida, Oligotrichida, Hypotrichia, Colpodea . Informationsberichte des Bayer, Landesamtes für Wasserwirtschaft 1/91, 478 стр.

                Фойсснер, В. и Гшвинд, К. (1998) Таксономия некоторых пресноводных инфузорий (Protozoa: Ciliophora) из Германии. Berichte der naturwissenschaftlich-medizinischen Vereinigung в Зальцбурге , 12, 25–76.

                Фойсснер В. и Стоук Т. (2008) Морфология, онтогенез и молекулярная филогения Neokeronopsis (Afrokeronopsis) aurea ноя. подген., ноя. спец. (Ciliophora: Hypotricha), новая флагманская инфузория Африки, подтверждает гипотезу CEUU. Acta Protozoologica , 47, 1–33.

                Грим, Дж. (1970) Gastrostyla steinii : Infraciliature. Труды Американского микроскопического общества , 89, 486–497.
                http://dx.doi.org/10.2307/3224558

                Граймс, Г.W. & L’Hernault, S.W. (1978) Строение и морфогенез вентральной инфузории у Paraurostyla hymenophora . Протозоология, журнал , 25, 65–74.
                http://dx.doi.org/10.1111/j.1550-7408.1978.tb03869.x

                Grolière, C.A. (1975) Descriptions de quelques ciliés hypotriches des tourbières a sphaignes et des étendues d’eau acides. Protistologica , 11, 481–498.

                Гупта Р., Камра К. и Сапра Г. Р. (2006) Морфология и деление клеток окситрихид Architricha indica ноя.ген., ноя. sp. и Histriculus histrio (Müller, 1773), Corliss, 1960 (Ciliophora, Hypotrichida). Европейский журнал протистологии , 42, 29–48.
                http://dx.doi.org/10.1016/j.ejop.2005.09.004

                Hardoim, E.L. И Хекман, C.W. (1996) Сезонная последовательность биотических сообществ на водно-болотных угодьях тропической влажно-сухой климатической зоны: IV. Свободноживущие саркодины и инфузории Пантанала в Мату-Гросу, Бразилия. Internationale Revue gesamten Hydrobiologie , 81, 367–384.
                http://dx.doi.org/10.1002/iroh.19960810307

                Хембергер, Х. (1985) Neue Gattungen und Arten hypotricher Ciliaten. Archiv für Protistenkunde , 130, 397–417.
                http://dx.doi.org/10.1016/S0003-9365(85)80051-8

                Международная комиссия по зоологической номенклатуре. (1999) Международный кодекс зоологической номенклатуры , четвертое издание. Международный фонд зоологической номенклатуры, Лондон. xxix + 306 pp.

                Kahl, A. (1932) Urtiere oder Protozoa I: Wimpertiere oder Ciliata (Infusoria) 3.Спиротрича. In : Dahl, F. (Ed.), Die Tierwelt Deutschlands 25 . Густав Фишер, Йена, стр. 399–650.

                Küppers, G.C. И хлопки, M.C. (2010) Морфология и заметки о морфогенезе при делении клеток Deviata polycirrata n. sp. и Deviata bacilliformis (Gelei, 1954) Eigner, 1995 (Ciliophora: Kahliellidae) из Аргентины. Журнал микробиологии эукариот , 57, 273–284.
                http://dx.doi.org/10.1111/j.1550-7408.2010.00474.x

                Küppers, G.C. И хлопки, M.C. (2012) Пресноводные инфузории (Protozoa, Ciliophora) из Аргентины: аннотированная и обновленная подборка. In : Thangadurai, D., Busso, C.A., Abarca Arenas, L.G. И Джаябалан С. (ред.), Границы исследований биоразнообразия . IK International Publishing, Нью-Дели, Индия, стр. 61–100.

                Кюпперс, Г.К., Лопретто, E.C. & Claps, M.C. (2006) Pelagostrobilidium wilberti n. sp. (Oligotrichea, Choreotrichida): морфология и морфогенез. Журнал эукариотической микробиологии , 53, 477–484.
                http://dx.doi.org/10.1111/j.1550-7408.2006.00129.x

                Küppers, G.C., Claps, M.C. & Lopretto, E.C. (2007a) Описание Notohymena pampasica n. sp. (Ciliophora, Stichotrichia). Acta Protozoologica , 46, 221–227.

                Кюпперс, Г.К., Лопретто, E.C. & Claps, M.C. (2007b) Описание Deviata rositae n. sp., новый вид инфузорий (Ciliophora, Stichotrichia) из Аргентины. Журнал микробиологии эукариот , 54, 443–447.
                http://dx.doi.org/10.1111/j.1550-7408.2007.00284.x

                Küppers, G.C., Claps, M.C. И Лопретто, E.C. (2009) Инфузории (простейшие) из высушенных отложений временного пруда из Аргентины. Revista Mexicana de Biodiversidad , 80, 581–592.

                Küppers, G.C., da Silva Paiva, T., do Nascimento Borges, B., Harada, M.L., González Garraza, G. & Mataloni, G. (2011) Антарктическая инфузория, Parasterkiella thompsoni (Foissner) nov.gen., nov comb., отмеченные на торфяниках Аргентины: морфология, морфогенез, молекулярная филогения. Европейский журнал протистологии , 47, 103–123.
                http://dx.doi.org/10.1016/j.ejop.2011.01.002

                Lundin, F.C. И Уэст, Л. (1963) Свободноживущие простейшие Верхнего полуострова Мичиган . Northern Michigan College Press, Marquette, Michigan, 175 pp.

                Lynn, D.H. (2008) Ресничные простейшие. Характеристика, классификация и руководство по литературе, 3-е изд. .Springer, Dordrecht, Нидерланды, 628 стр.

                Müller, O.F. (1773) Vermium terrestrium et fluviatilium, seu animalium infusoriorum, helminthicorum et testaceorum, non marinorum, succincta Historia . Heineck & Faber, Havniae & Lipsiae, 135 стр.

                Ольмо-Рискес, J.L. (1998) Diversidad local y global de los protozoos ciliados de hábitats de agua dulce . Докторская диссертация Тесиса, Мадридский университет, Испания, 108 стр.

                Пэтч, Б. (1974) Die Aufwuchsciliaten des Naturlehrparks Haus Wildenrath.Monographische Bearbeitung der Morphologie und Ökologie. Arbeiten aus dem Institut für landwirtschaftliche Zoologie und Bienenkunde , 1, 1–82.

                Пайва Т.С. &, Сильва Нето, I.D. da (2004a) Сравнительное морфометрическое исследование трех видов Apoamphisiella Foissner, 1997 (Ciliophora: Hypotrichea) из Бразилии, включая описание Apoamphisiella foissneri sp. п. Zootaxa , 505, 1–26.

                Пайва Т.С. И Сильва Нето, И.D. da (2004b) Описание Parentocirrus brasiliensis sp. п. (Ciliophora: Spirotrichea), новый протист инфузорий, присутствующий в активном иле. Zootaxa , 504, 1–10.

                Пайва Т.С. И Сильва Нето, I.D. da (2004c) Ресничные простейшие из лагуны Кабиунас (Рестинга-де-Джурубатиба, Макаэ — Рио-де-Жанейро) с акцентом на виды-индикаторы качества воды и описание Oxytricha marcili sp. п. Бразильский журнал биологии , 64, 467–478.
                http: // dx.doi.org/10.1590/S1519-69842004000300010

                Пайва Т.С. И Сильва Нето, I.D. da (2005) Deviata estevesi sp. п. (Ciliophora: Spirotrichea), новый протист из инфузорий из лагуны отдыха в Рио-де-Жанейро, Бразилия. Acta Protozoologica , 44, 351–362.

                Пайва Т.С. И Сильва Нето, I.D. da (2006) Pseudourostyla pelotensis sp. ноя (Ciliophora, Stichotrichia, Urostylida): новый псаммофильный инфузорий из южной Бразилии. Zootaxa , 1247, 43–58.

                Пайва Т.С. И Сильва Нето, I.D. da (2007) Морфология и морфогенез Strongylidium pseudocrassum Wang and Nie, 1935, с переопределением Strongylidium Sterki, 1878 (Protista: Ciliophora: Stichotrichia). Zootaxa , 1559, 31–57.

                Пайва Т.С. И Сильва Нето, I.D. da (2009) Морфология и делительный морфогенез Nudiamphisiella interrupta Foissner, Agatha & Berger, 2002 (Ciliophora: Stichotrichia) на основе бразильского штамма. Европейский журнал протистологии , 45, 271–280.
                http://dx.doi.org/10.1016/j.ejop.2009.04.001

                Пайва, Т.С., Борхес, Б.Н., Харада, М.Л. И Сильва Нето, I.D. da (2009) Сравнительное филогенетическое исследование Stichotrichia (Alveolata: Ciliophora: Spirotrichea) на основе последовательностей 18S-рДНК. Генетика и молекулярные исследования , 8, 223–246. http://dx.doi.org/10.4238/vol8-1gmr529

                Пайва, Т.С., Борхес, Б.Н., Сильва Нето, И.Д. да и Харада, М. (2012) Морфология и филогения 18S рДНК Hemicycliostyla sphagni (Ciliophora, Hypotricha) из Бразилии с переопределением рода Hemicycliostyla . Международный журнал систематической и эволюционной микробиологии , 62, 229–241.
                http://dx.doi.org/10.1099/ijs.0.x00001-0

                Seckt, H. (1924) Estudios hidrobiológicos en la Argentina. Revista de la Universidad Nacional de Córdoba , 11, 55–110.

                Stein, F. (1859) Der Organismus der Infusionsthiere nach eigenen Forschungen in systematischer Reihenfolge bearbeitet. I. Abtheilung. Allgemeiner Theil und Naturgeschichte der hypotrichen Infusionsthiere .W. Engelmann, Leipzig, I – XII, 206 pp., Tafeln I – XIV.

                Stokes, A.C. (1886) Некоторые новые гипотрихозные инфузории. Труды Американского философского общества , 23, 21–30.

                Stokes, A.C. (1887) Некоторые новые гипотрихозные инфузории из американских пресных вод. Летопись и журнал естествознания , Серия 5, 20, 104–114.
                http://dx.doi.org/10.1080/00222938709460018

                Wilbert, N. (1975) Eine verbesserte Technik der Protargolimprägnation für Ciliaten. Микрокосмос , 64, 171–179.

                Чудеса геномной акробатики: реснитчатые простейшие как пример

                В недавнем посте я рассмотрел биологическую информацию, которая опосредуется гистоновым кодом, и ее значение для дебатов о разумном замысле. Однако есть несколько других важных форм биологической информации, которые существуют в клетке, которые не зависят от последовательности ДНК. В этой статье будет рассмотрен пример того, как клетка может реорганизовывать и перестраивать свою собственную последовательность ДНК.Наиболее ярким известным примером этого являются простейшие с ресничками или инфузории, поэтому мы представим их здесь в качестве примера.

                Инфузории — большое семейство простейших эукариот. В одной клетке они обладают как минимум двумя ядрами: как минимум одним маленьким «микронуклеусом» зародышевой линии и как минимум одним большим соматическим «макронуклеусом», феномен, известный как «ядерный диморфизм» (Prescott, 1994; Prescott, 2000; Juranez и Липпс, 2007). Во время митоза молекулы РНК и белка, необходимые для репродукции, кодируются макронуклеусом, тогда как микронуклеус кодирует весь геном, необходимый для мейоза (но не активен в транскрипции генов).Хромосомы, принадлежащие макронуклеусу, существуют в большом количестве копий, но несут только активные гены, которые управляют работой клетки. Напротив, микроядерные хромосомы обладают полным геномом и, следовательно, содержат множество последовательностей, отсутствующих в макронуклеусе.

                Половое размножение ресничных простейших

                Инфузории подвергаются половому размножению путем конъюгации: то есть две клетки объединяются и соединяются цитоплазматическим мостиком. Обратите внимание, что конъюгация нерепликативна и выполняется с целью замены старых генов в ядрах.Само деление клеток происходит во время вегетативного роста — бесполым путем бинарного деления.

                После соединения двух клеток цитоплазматическим мостиком в микронуклеусе каждой из двух клеток происходит мейоз. В результате между двумя клетками образуются четыре микроядра. Три из этих четырех микроядер впоследствии дегенерируют, а четвертое подвергается делению путем митоза, в результате чего общее количество гаплоидных микроядер между двумя клетками достигает четырех. Одно из дочерних ядер от каждой клетки («мигрирующее ядро») затем мигрирует через цитоплазматический мост, чтобы слиться с другим дочерним микроядром («неподвижным ядром»).Результатом является создание диплоидного ядра в каждой из двух клеток. Это ядро ​​снова подвергается митотическому делению. Одно из образовавшихся ядер становится новым микроядром, тогда как другое становится новым макронуклеусом (исходный макронуклеус в каждой клетке распадается).

                В новом макронуклеусе должны быть удалены некодирующие последовательности ДНК, которые прерывают генные локусы (называемые внутренними исключенными последовательностями или IES), в дополнение к ограниченным микроядрами генам, кодирующим белок (Chen et al ., 2014). Это достигается интерференцией РНК. Считается, что сегменты ДНК помечены для удержания с помощью различных эпигенетических модификаций, опосредованных piRNAs (Fang et al ., 2012). Поскольку оставшиеся фрагменты, известные как макронуклеарные последовательности (MDS), обычно скремблируются или инвертируются, они должны быть реорганизованы путем перестановок и инверсий для создания функциональных генов (Chen et al ., 2014). Формирование нового макронуклеуса направляется молекулами РНК, как длинными, так и небольшими некодирующими РНК, из старого макронуклеуса (Mochizuki et al ., 2002; Nowacki et al ., 2008; Новацки и др. , 2011; Fang et al., 2012; Ерлици и Ландвебер, 2014).

                Расшифровка генома

                Инфузория Oxytricha trifallax обладает более чем 16 000 уникальных хромосом, каждая из которых содержит от одного до восьми генов (90 процентов содержат только один ген) и в среднем 3,2 КБ каждый (поэтому их часто называют «нанохромосомами») (Swart et al ., 2014). Организм удаляет около 95 процентов своего генома зародышевой линии, что приводит к серьезной фрагментации его хромосом (Chen et al ., 2014). Сотни тысяч оставшихся частей впоследствии сортируются и переупорядочиваются (Chen et al ., 2014). Таким образом, соматический ядерный геном формируется посредством матриц РНК и сигналов, исходящих от макронуклеуса родительской клетки. Сяо Чен из Принстонского университета и его соавторы объясняют (Chen et al ., 2014):

                Запрограммированные перестройки ДНК в одноклеточном эукариоте Oxytricha trifallax полностью перестраивают свою зародышевую линию в соматическое ядро ​​во время развития.Этот сложный, опосредованный РНК путь устраняет некодирующие последовательности ДНК, которые прерывают генные локусы, и реорганизует оставшиеся фрагменты путем инверсий и перестановок с образованием функциональных генов. Здесь мы сообщаем о геноме зародышевой линии Oxytricha и сравниваем его с соматическим геномом, чтобы представить глобальный взгляд на его массовые перестройки генома. Замечательно зашифрованная архитектура генома содержит> 3500 скремблированных генов, а также> 800 предсказанных генов, ограниченных зародышевой линией, экспрессируемых и некоторых посттрансляционно модифицированных во время перестройки генома.Генные сегменты для разных соматических локусов часто переплетаются друг с другом. Отдельные генные сегменты могут вносить вклад в несколько различных соматических локусов. Конечные сегменты-предшественники из соседних соматических локусов картируются очень близко друг к другу, часто перекрываясь. Эта сборка генома обеспечивает черновик зашифрованного генома и мощную модель для изучения перестройки генома.

                Джеймс Шапиро из Чикагского университета резюмирует сложность этого процесса (Shapiro, 2013).

                Процесс сложный и включает в себя устранение большей части ДНК, специфичной для зародышевой линии (до 90%, в зависимости от вида), а также повторную сборку скремблированных последовательностей зародышевой линии в точные кодирующие последовательности. Тысячи процессов разрезания и сплайсинга ДНК, участвующих в развитии каждого нового макронуклеуса, происходят регулярно и надежно в течение нескольких часов. Акробатика ДНК в макронуклеарном развитии представляет собой наиболее сложный известный пример быстрой реструктуризации с целью формирования новой функциональной архитектуры генома в пределах одного поколения клеток.

                Стефан Юранек и Ханс Иоахим Липпс также используют аналогию с акробатикой для описания этого замечательного процесса (Juranek and Lipps, 2007):

                Во время макроядерной дифференцировки у простейших с ресничками происходит удивительная «ДНК-гимнастика», которая включает вырезание ДНК, удаление ДНК, реорганизацию ДНК и ДНК-специфическую амплификацию.

                К сожалению, на данный момент точные механизмы, участвующие в этих событиях дескремблирования генома, плохо изучены.Тем не менее, чтобы получить краткое изложение того, что уже было установлено, в частности, в отношении участия молекул РНК и эпигенетических модификаций, читатели могут обратиться к обсуждению в Yerlici and Landweber (2014), стр. 5-13. Понятно одно: сегменты ДНК, называемые «последовательностями-указателями», фланкируют последовательности, предназначенные для макронуклеаров, и служат своего рода системой шифрования. Геном также кодирует молекулы РНК, которые маркируют сегменты ДНК, которые необходимо переместить, таким образом, служа своего рода системой дешифрования.

                Эволюционная загадка

                Каковы последствия этого процесса для эволюционной биологии? Проблема в том, что программирование для этого сложного процесса геномной перестройки должно быть уже на месте, до деградации, скремблирования и повторной сборки ДНК зародышевой линии . Геном, который нельзя прочитать, приведет к мертвому, нежизнеспособному организму. Как же тогда такие процессы могут быть объяснены эволюционными процессами? Естественный отбор бессилен заглянуть в будущее и спланировать его.

                Еще одна проблема связана с удалением внутренних исключенных последовательностей (IES), некодирующих участков ДНК, которые необходимо удалить. Удаление этих последовательностей на самом деле является фундаментальным для экспрессии генов, поскольку многие из них, а на самом деле большинство из них прерывают кодирующие белок участки генов, то есть экзоны. Чен и др. . (2014) обратите внимание, что,

                [М] остальная функциональная информация зашифрована в [микронуклеусе], а развитие макроядра — это процесс расшифровки. Большинство IES прерывают экзоны (84.7%), что делает их удаление строгим требованием для экспрессии генов.

                Подразумевается, что сложный процесс удаления этих некодирующих последовательностей должен осуществляться одновременно с наличием этих внутренних последовательностей, которые прерывают экзоны — в противном случае эти кодирующие участки ДНК будут нефункциональны и быстро устранены с помощью очищающий отбор (чтобы предотвратить трату энергии на перенос и транскрипцию сломанного гена). Ген, который не может быть выражен в виде белка, также больше не находится в процессе эволюционной консервации и, вероятно, содержит вредные мутации, которые в дальнейшем инактивируют или «ломают» ген.Следовательно, присутствие этих внутренних последовательностей, которые прерывают экзоны, должно существовать одновременно с механизмом их удаления. Но существует потребность в механизме их удаления только после того, как экзоны уже прерваны этими последовательностями. Объяснение такого рода явлений с помощью небольших последовательных модификаций, как предполагал Дарвин, кажется проблематичным.

                Значение для дизайна

                Если неуправляемые, бессмысленные силы случайной изменчивости, на которые действует естественный отбор, не могут объяснить происхождение таких явлений, есть ли еще какая-то причина, которая может? Необязательно иметь докторскую степень по молекулярной биологии, чтобы определить, что какая бы ни была причина таких явлений, как это, должна быть причина, обладающая способностью предвидения и планирования — причиной, которая может заглядывать в будущее и визуализировать сложность, объединяя все необходимое для реализации сложной конечной цели.Но целенаправленные причины принципиально неотличимы от разумного замысла.

                Цитированная литература:

                Чен, Х. и др. . (2014) Архитектура зашифрованного генома выявляет огромные уровни геномной перестройки во время развития. Ячейка 158: 1187-1198.

                Фанг, В., Ван, X., Брахт, Дж. Р., Новацки, М., и Ландвебер, Л. Ф. (2012). Piwi-взаимодействующие РНК защищают ДНК от потери во время перестройки генома Oxytricha. Cell 151: 1243–1255.

                Джуранек, С.А., Липпс, Х.Дж. (2007) Новое понимание макроядерного развития инфузорий. Международный обзор цитологии 262: 219–51.

                Mochizuki, K., Fine, N.A., Fujisawa, T., Gorovsky, M.A. (2002) Анализ гена, связанного с piwi, предполагает участие малых РНК в перестройке генома у Tetrahymena. Cell 110: 689–699.

                Новацки М., Шетти К., Ландвебер Л.Ф. (2011) РНК-опосредованное эпигенетическое программирование перестроек генома. Ежегодный обзор геномики и генетики человека 12: 367–89.

                Новацки, М., Виджаян, В., Чжоу, Ю., Шотанус, К., Доук, Т.Г., и Ландвебер, Л.Ф. (2008). РНК-опосредованное эпигенетическое программирование пути перестройки генома. Природа 451: 153–158.

                Прескотт, Д. (2000) Геномная гимнастика: уникальные способы эволюции и обработки ДНК инфузорий. Nature Reviews Genetics 1 (3): 191–8.

                Прескотт, Д. (1994). ДНК мерцательных простейших. Microbiology Reviews 58, 233–267.

                Шапиро, Дж.А. (2013) Как меняется сама жизнь: Геном чтения и записи. Physics of Life Reviews 10: 287-323.

                Swart, E. S. et al. (2014). Макроядерный геном Oxytricha trifallax: сложный эукариотический геном с 16000 крошечных хромосом. PLoS Biology 11 (1): e1001473.

                Ерлици, В. и Landweber, L.F. (2014) Запрограммированные перестройки генома у инфузорий Oxytricha . Microbiology Spectrum 2 (6).

                Фото: Oxytricha trifallax , [общественное достояние], через Wikimedia Commons.

                Детали — Структура сообществ простейших инфузорий в городских водотоках и их использование в окружающей среде как индикаторы

                Название

                Структура сообществ простейших инфузорий в городских водотоках и их использование в окружающей среде как индикаторы

                По

                Дебастиани, Ч.
                Мейра, Б.Р.
                Lansac-Tôha, F. М.
                Велью, Луис Фелипе Мачадо
                LANSAC-TÔHA, F. А.

                Тип

                Артикул

                Дата публикации

                01.01.2016

                Оригинальная публикация

                Instituto Internacional de Ecologia

                Субъекты

                избыток , разнообразие , Протисты , трофический , городской поток

                Автор

                BHL SciELO

                Язык

                Английский

                Опубликовано

                Instituto Internacional de Ecologia

                Скачать МОДЫ

                Наземные и полупустынные инфузории (Protozoa, Ciliophora) из Венесуэлы и Галапагосов

                Об этой книге

                Язык: английский

                Очень разнообразное сообщество инфузорий было обнаружено в 71 образце из наземных и полуземных местообитаний из западной половины Венесуэлы (67 образцов) и из Галапагосских островов (4).Инфузории, соответственно, их цисты покоя, были повторно активированы из высушенных на воздухе образцов с использованием метода чашки Петри без заливки. Виды были идентифицированы путем сочетания наблюдения вживую, импрегнации серебром и сканирующей электронной микроскопии.

                Фаунистические и таксономические результаты суммированы в главе 3.1.1, т.е. в подробном списке видов, показывающем их распространение и частоту: (i) Всего 459 видов инфузорий зарегистрировано в наземных и полупустынных инфузориях (Protozoa, Ciliophora) из Венесуэлы и Галапагосов , 421 из Венесуэлы и Галапагосских островов и 38 из других мест по всему миру.Большинство видов — новые записи для исследованных территорий. (ii) 120 видов (28%) являются новыми для науки, 82 из Венесуэлы, в том числе 13 из Галапагосских островов (20%) и 38 из различных мест по всему миру; Переописано 50 видов. (iii) На основании этих данных установлено 44 новых рода и подрода, четыре новых семейства (Lingulotrichidae, Deviatidae, Urosomoididae, Apometopidae) и новый подотряд (Woodruffina). (iv) Онтогенез описан для 10 видов: Platyophryides macrostoma , Cinetochilides terricola , Protospathidium salinarum , Notodeviata halophila , Idiodeviata australia 00060006 , Oxytricha pulvillus и Lepidothrix dorsiincisura .(v) 656 типовых и купонных слайдов были сданы на хранение в Биологический центр Музея Верхней Австрии в Линце (LI). (vi) Было идентифицировано и описано восемь видов, ранее известных только по их молекулярным последовательностям (рис. 124, 294): Maryna зонтичная , Maryna meridiana , Bursaria ovata , Platyophryides macrostoma , Sagittarides oblongistoma , Sagittaria venezuelensis , Apowoodruffia salinaria и Condylostomides coeruleus .

                252 из 459 видов инфузорий встречаются только на одном или двух участках, показывая неоднородное распределение большинства видов и высокую долю редких видов. Ни один вид не встречался во всех выборках, а эвриодомная Colpoda inflata чаще всего встречалась в 73% выборок. Только 14 видов имеют частоту = 40%, и большинство из них часто встречается в почвах по всему миру. Если исключить образцы гнилого тропического леса, то в среднем 34 вида на образец.

                С учетом общего количества видов и доли новых видов можно выбрать семь местных центров разнообразия инфузорий: (i) Самая богатая выборка (126 видов, девять неописанных) — это номер (56), i.е., грязь и почва из плоских эфемерных луж в национальном парке Моррокой на северном побережье Венесуэлы. (ii, iii) образцы (52) и (61) взяты из тропического леса в национальном парке Анри Питтье, где обитает 101 и 91 вид, соответственно. (iv) Следующее по богатству место — это номер (23), то есть Махаджа (высоко удобренная почва саванны) с 83 видами, в том числе тремя неописанными. (v) Далее следует участок (54), т.е. грязь и почва из сильно засоленной прибрежной лужи с 78 видами, из которых 10 не описаны.(vi) Всего 117 видов, 16 неописанных, встречались в 10 лахах (литогельмах на выходах гранита в саванне). (vii) В четырех образцах с Галапагосских островов обнаружено 68 видов, из которых по крайней мере 13 не были описаны. Некоторые из новых таксонов являются флагманскими видами с весьма вероятным ограниченным распространением.

                Отзывы клиентов

                Исследование морфологии инфузорий простейших с использованием подхода инженерного проектирования

                Исследование морфологии инфузорий Protozoa с использованием подхода инженерного проектирования

                Автор (ы)

                E.Л. Бенджамин, М. В. Коллинз и Д. МакЛ. Робертс

                Аннотация

                Хотя клеточный морфогенез — это область микробиологии, которая широко известна. изучены, очень мало известно о том, каким образом клетки формируют сами или как они оптимизируют свою форму для окружающей среды. Существует обширная литература по форме тела, анатомии и жизненному циклу множества одноклеточные микроорганизмы, включая прокариоты и эукариоты. Однако что касается самой морфологии, здесь не хватает общих эмпирические отношения, позволяющие объединить определенные особенности, которые могут привести к биологически оправданной генерической форме.В этом документе содержится краткое обзор предмета вместе с оценкой экспериментального подхода которые можно использовать в предполагаемом общем контексте инженерного проектирования. Ключевые слова: морфология, морфогенез, прокариоты, эукариоты, конфокальный микроскоп, микротрубочка, кинетики, ротовая полость, ротовой аппарат, цитоскелет, простейшие, инфузории, жгутиконосцы, простейшие. 1. Введение Форма клетки сама по себе является характерным свойством вида. Было бы больше всего выгодно, если бы параметры поверхности можно было использовать непосредственно как символы сами по себе, особенно если их значения могут использоваться в качестве вектора для определения местоположение в некотором (морфо-) пространстве, и с расстоянием между такими местоположениями быть мерой различия между людьми.

                Добавить комментарий

                Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *