Размер инфузории туфельки: — — Paramecium caudatum

Разведение инфузории и способы фильтрации

Post Views: 2 082

4.9

(13)

1 Кто такая инфузория?

2 Разведение инфузории в домашних условиях (способы)

3 Как выловить живую пыль на корм мальку? (способы фильтрации от среды)

В этой статье поговорим о таком стартовом корме для мальков, как инфузория, которая входит в состав живой пыли, про разведение инфузории в домашних условиях и способах фильтрации её от среды на корм мальку.

Кто такая инфузория?

Инфузория-туфелька (лат. Paramecium caudatum) – вид инфузорий, одноклеточных организмов из группы альвеолят. Обычно инфузориями-туфельками называют и другие виды рода Paramecium. Встречаются повсеместно, в пресных водах. Получила своё название за постоянную форму тела, напоминающую подошву туфли. Размер инфузории туфельки составляет 0,1-0,3 мм. Питается инфузория бактериями, микроводорослями, грибами (дрожжами). Инфузория находит свою добычу, чувствуя наличие химических веществ, которые выделяют скопления бактерий.

Размеры инфузории, как замечал я, сильно зависят от кормления. Если оно полноценное, используются разные источники пищи, например бактерии и/или дрожжевые клетки, одноклеточные водоросли, кисломолочные бактерии, то инфузория будет крупная, если кормить ее только дрожжами, то туфля будет мелкая.

Плывя в толще воды, инфузория вращается вокруг продольной оси. Скорость движения – около 2-2,5 мм/c. Размножаются инфузории половым и бесполым способами.
Они используются аквариумистами в качестве стартового кормового организма для мальков икромечущих рыб. Скорость размножения инфузорий – высокая, что очень удобно и позволяет получить достаточное количество живого корма, как малых объемов культиватора, так и в короткие сроки.

На живом корме мальки растут гораздо лучше и быстрее, чем на покупных, искусственных кормах промышленного приготовления. Но по сравнению с коловратками, инфузория менее питательна. Скорость движения её быстрее, что не совсем хорошо для малоподвижных мальков, инфузория больше интересна своими темпами размножения. Лучше использовать ее в сочетании с коловратками и другими кормами.

Разведение инфузории в домашних условиях (способы)

Культивируют организм в ёмкостях от 3 литров и более. Для этих целей отлично подходят обычные стеклянные банки. В них очень удобно следить за состоянием культуры, выбирать правильную дозировку корма. Но самое главное для разведения — это сама культура, которую Вы можете купить тут.

В качестве корма используют сухие корки банана, листья салата, крапивы, морковь, вареные злаки и многое другое. Все это лучше задавать в сухом виде, иначе сок этих растений может спровоцировать брожение в культиваторе, что приведет к гибели инфузории. Эти корма выступают в роли питания для бактерий, а бактерии в свою очередь поедаются простейшими.

Еще в качестве корма отлично подходят дрожжи, молоко. Эти же корма поедаются самой инфузорией в толще воды. Часть их, оседая на дно, служит кормом для тех же бактерий, а бактерии дополнительным кормом для инфузории.

Подготовка емкости

Для разведения инфузории первым делом нужно приготовить ёмкость. Промываем её раствором соды/соли. Моющими средствами и химией пользоваться нельзя.
На 2/3 заполняем банку кипятком, доводим до комнатной температуры. Всё это делается для того, чтобы в так называемом маточнике, не было посторонних микроорганизмов, как коловраток, так и инфузорий других видов, которые будут составлять пищевую конкуренцию.

Способы разведения инфузории

Существует, по моему мнению, два способа разведения и кормления простейшего.

Первый — это в ёмкости с периодическим добавление небольшого количества корма. Данный способ больше подходит для поддержания маточной культуры в живом состоянии, когда в ней нет необходимости.

Начинается он с запуска стартовой культуры инфузории в подготовленную ёмкость с водой и добавления небольшого количества корма.

В качестве корма используются пекарские сухие дрожжи, молоко, сухие детские смеси. Предварительно разводим небольшое количество в воде, после чего добавляем в культуру до небольшого помутнения. На начале культивации, пока инфузория не размножилась, достаточно будет нескольких капель суспензии. Данную процедуру повторяем раз в 2-3 дня. С увеличением количества инфузории увеличивается и дозировка корма.

Перезапуски осуществляются по мере необходимости, когда культиватор загрязняется продуктами жизнедеятельности простейших или при грубом перекорме. Определяется это по появлению сильных обрастаний на стенках и дне ёмкости, а также при появлении сильного неприятного запаха из-за активного гниения корма в воде, с которым не справляется инфузория. Перезапуск подразумевает перелив части культуры инфузории в чистую ёмкость с добавлением свежей воды.

Важно обрастания в виде слизи могут привести к гибели культуры, именно они свидетельствуют о сильном перекорме. Слизь это выделения бактерий в анаэробной среде, то есть в среде где мало или нет кислорода.

Обрастания должны быть в виде твердых хлопьев или налета, они свидетельствуют об устоявшемся процессе разложения органики и достаточном количестве кислорода в культиваторе.

Второй способ — это запуск культуры простейшего в подготовленный “бульон из бактерий”, для того чтобы получить вспышку размножения инфузории с последующим скармливанием мальку. Этот способ подходит непосредственно в момент выкорма мальков, позволяет получить большое количество инфузории. Тут уже о чистоте культуры заботиться особо не нужно, просто максимально раскармливаем туфлю и даем мальку.

В качестве корма можно использовать сухие корки банана, морковь, листья крапивы, салата, злаки и так далее, на которых будут размножаться бактерии, а бактерии в свою очередь станут кормом для инфузорий.

Промываем листья, корки в проточной воде и запускаем в ёмкость наполненную водой. Злаки, к примеру пшеницу, лучше поварить минут 10. Большое количество корок или листьев закладывать не нужно. Они могут спровоцировать слишком сильный рост бактерий, которые задушат инфузорию на старте.

Ставим банку на несколько дней в затененное место. Появление мути и неприятного запаха свидетельствуют о росте числа бактерий, которые участвуют в процессе гниения, в этот момент и добавляем инфузорию в емкость. Она начинает размножаться, и через 2-3 дня, зависит от численности изначальной культуры, полностью заполнит банку. Вода начнет светлеть, сильный запах гнили – пропадать, в этот момент нужно сцеживать её и давать мальку.

Работать такая система будет до тех пор, пока полностью не перегниют остатки корма. Также можно периодически добавлять суспензию дрожжей, молоко, смеси, по такому же принципу как описано в первом способе. Это будет поддерживать высокие темпы размножения простейшего.

Как выловить живую пыль на корм мальку? (способы фильтрации от среды)

Среда, в которой размножаются инфузории, сильно загрязнена продуктами жизнедеятельности бактерий и простейших. Добавлять такую воду в малявочник нельзя, так как это может погубить мальков. Чтобы этого избежать, нам необходимо очистить инфузорию от этой среды, в которой она выращивалась.

Есть несколько способов. Первый: Процедить раствор с инфузорией через фильтровальную бумагу или синтетическую ткань с мелкой ячейкой (такую ткань еще называют мельничный газ), и аккуратно ополоснуть её в воде с мальком. Ткань должна быть очень мелкая, и фильтрация должна происходить не сливом среды с живой пылью через сачок, а опусканием самого сачка в культиватор, с последующим зачерпыванием одноклеточных. Если сливать воду через сачок, инфузория выдавливается напором воды, повреждается и погибает, толк нулевой. На видео я использовал мельничный газ № 140 или 160, возможно можно использовать и меньшие номера газа, так как с этими очень туго уходит вода.

Второй способ: Налить среду с инфузорией в колбу\бутылку, не доливая 2-3 см до края горлышка, которое затыкаем ватой, немного погруженной в раствор. Сверху в оставшееся пространство аккуратно наливаем чистой воды. Бутылку закрываем тканью, а горлышко выводим на свет. Инфузория будет переплывать в сторону света через вату в чистую воду. Оттуда её можно собирать пипеткой или спринцовкой, после чего отправлять к мальку. Этот способ подойдет для небольшого количества малька, он достаточно долгий и малоэффективный.

Третий способ: Это перелив среды с инфузорией из культиватора в высокую емкость (желательно конической формы). Спустя 5-10 минут большая часть инфузории в этом стакане поднимется к поверхности из-за нехватки кислорода на дне. В этот момент аккуратно сливаем максимальное количество среды со дна стакана спринцовкой, не затягивая инфузорию. После чего наливаем чистой воды. Данная процедура повторяется несколько раз, пока вода не просветлеет. Как вода станет достаточно чистой, обычно 2-3 промывки, содержимое выливается в малявочник. На мой взгляд, это самый эффективный способ из всех представленных.

Инфузорией малёк кормится от трех до семи дней, до тех пор, пока достаточно не подрастет, чтобы есть более крупный корм. Самый лучший для малька, по моему мнению, это – науплии артемии. Как их выводить науплии артемии из цист — читать в этой статье. При затяжном кормлении простейшим малёк начнет гибнуть из-за нехватки питания, поэтому своевременный перевод на науплии или другие питательные корма очень важен.

Добавляю ссылки на статьи по стартовым кормам для мальков икромечущих и живородящих рыбок.

Насколько публикация полезна?

Нажмите на звезду, чтобы оценить!

Средняя оценка 4.9 / 5. Количество оценок: 13

Оценок пока нет. Поставьте оценку первым.

---

Магазин культур живых кормов и растений
Мой канал на Ютубе
 
Мой канал на Рутубе
Мой блог AQUA-TROPICA. RU
Группа в ВК
Группа в Одноклассниках 
Телеграм канал

Туфельки-убийцы • Сергей Глаголев • Научно-популярные задачи на «Элементах» • Биология

История изучения каппа-частиц довольно длительная и местами драматичная. Ее ранние этапы описаны в статье Джона Приера (J. R. Preer, 2006. Sonneborn and the Cytoplasm). Статья эта написана в 2006 году — примерно через 60 лет после того, как сам Приер начал работу с каппа-частицами. А открыл их в конце1930-х годов Трейси Соннеборн — один из крупнейших протозоологов XX века.

К концу 1940-х годов Соннеборн наоткрывал столько случаев и вариантов цитоплазматической наследственности у инфузорий, что это привело его к созданию теории плазмагенов (см. Наследственность цитоплазматическая). Он считал, что каждый ген создает свою самореплицирующуюся копию, которая присутствует в цитоплазме и размножается там. Но как раз в это же время другие ученые выдвинули предположение, что каппа-частицы — эндосимбиотические бактерии. Приеру и его сотрудникам удалось это доказать. Сначала Приер установил, что каппа-частицы можно элиминировать из клеток с помощью рентгеновских лучей. Попутно выяснилось, что размер «мишени» столь велик, что ее можно увидеть в световой микроскоп! И действительно — в цитоплазме туфелек удалось увидеть Фёльген-положительные (окрашенные по методу Роберта Фёльгена, то есть содержащие ДНК) частицы размером около 1 мкм. Затем с помощью электронного микроскопа удалось получить более детальные картинки, которые подтвердили, что каппа-частицы имеют морфологию клеток бактерий (рис. 4).

Наконец удалось выделить бактерий из инфузорий-киллеров и культивировать их в лаборатории, изучить их дыхание и другие биохимические процессы. Эти и другие факты постепенно убедили Соннеборна, что «теория плазмагенов мертва». В одном из своих писем в 1976 году он писал: «it was awful of me to be so attached to a pet idea. That was an ordeal between my mind and my heart and it took a while for the mind to win and the heart to accept. Impersonal scientific objectivity is a goal to be sought by hard self-discipline; we are not born with it.»

Тем временем изучение каппа-частиц (теперь носящих имя Caedibacter taeniospiralis и отнесенных к гамма-протеобактериям) продолжалось. Кроме генетических аспектов ученых интересовали и многие другие. Одна линия исследований была посвящена взаимоотношению туфелек-хозяев с симбионтами. Ясно, что способность избавляться от конкурентов — полезный признак. Но как влияют бактерии на туфелек, если конкурентов нет? Недавно было показано, что бактерии оказывают заметное влияние на транскриптом туфелек и заставляют клетки потреблять больше энергии. Оказалось, что конечный эффект при этом зависит от условий среды — состава пищи, температуры и других факторов. В одних условиях скорость роста популяции и конечная плотность возрастают, в других — снижаются. Иногда каппа-частицы из симбионтов могут превращаться в паразитов. Может быть, именно поэтому даже гомозиготные «киллерные» штаммы туфелек иногда избавляются от каппа-частиц.

Другие ученые сосредоточились на каппа-частицах как орудии убийства. Выяснилось, что среди каппа-частиц есть «блестящие» (светопреломляющие, «bright») и «неблестящие» («non-bright»). Только «неблестящие» бактерии могут делиться; только «блестящие» могут, выделяясь в среду, убивать чувствительные штаммы. Внутри «блестящих» бактерий обнаружились удивительные белковые конструкции — R-тела (рис. 5). Это свернутые в тугую «катушку» ленты из небольших структурных белков семейства Reb, нерастворимые и устойчивые к действию большинства денатурирующих агентов.

Когда «блестящих» бактерий заглатывают туфельки чувствительных штаммов, после слияния их пищеварительных вакуолей с лизосомами и понижения pH R-тела разворачиваются, превращаясь в спирали с заостренными концами. Длина их увеличивается примерно в 40 раз, и они пробивают стенку бактерии и мембрану пищеварительной вакуоли. При этом из клеток C. taeniospiralis в клетку жертв поступает смертельный яд неизвестного состава (рис.  6).

Доказать это удалось, заставив трансгенных кишечных палочек производить R-тела. Скармливание таких кишечных палочек или очищенных R-тел чувствительным штаммам туфелек не приводило к их гибели (хотя R-тела исправно разворачивались). Так что действуют они, вероятно, не как смертельный стилет, а как шприц, делающий смертельную инъекцию.

Интересно, что белки R-тел у C. taeniospiralis закодированы на плазмиде, которая, вероятно, ведет свое происхождение от бактериофага (J. Jeblick, J. Kusch, 2005. Sequence, transcription activity, and evolutionary origin of the R-body coding plasmid pKAP298 from the intracellular parasitic bacterium Caedibacter taeniospiralis). В этой же плазмиде, видимо, закодирован и смертельный для туфелек токсин (хотя точно это не выяснено). Эта ситуация напоминает многие другие случаи «тройного» симбиоза бактерий, вирусов и их хозяев (см. Уникальный случай тройного симбиоза: вирус помогает бактерии защищать тлю от врагов, «Элементы», 29.08. 2009).

Интерес к R-телам сильно возрос, когда оказалось, что они широко распространены среди свободноживущих симбиотических и паразитических бактерий, а также встречаются у патогенных амёб (акантамёб, способных вызывать кератит у человека). В большинстве случаев неизвестно, имеют ли отношение родственники каппа-частиц и R-тела к патогенности их хозяев. Но для одного случая взаимодействия азотфиксирующих бактерий с бобовыми показано, что в определенных условиях с помощью R-тел бактерии могут убивать клетки растения-хозяина.

Замечательно, что после разворачивания R-тела могут сворачиваться обратно при повышении pH. Такие устройства в конце концов привлекли внимание нанотехнологов. Двое ученых из Бостона (см. J. K. Polka and P. A. Silver, 2016. A tunable protein piston that breaks membranes to release encapsulated cargo) получили с помощью направленного мутагенеза гены, кодирующие R-тела с разной чувствительностью к pH, и клонировали их в сферопласты (клетки, лишенные клеточной стенки) кишечных палочек. Затем они показали, что при определенном значении pH эти R-тела развертываются и разрывают сферопласты. А это — один из путей к созданию нового способа доставки лекарств в клетки! Так что «экзотические фокусы» туфелек и их симбионтов могут оказаться новым словом в медицине.

А что же K-гены? Увы, ничего. То есть пока про них почти ничего не известно. Известно только, что доминирование K над k на самом деле неполное — содержание каппа-частиц в гетерозиготных туфельках примерно вдвое меньше, чем в гомозиготах KK. Ни белок, кодируемый этим геном, ни тем более механизм защиты киллеров от смерти при заглатывании «блестящих» бактерий не открыты. А ведь у туфелек есть еще альфа-, гамма-, дельта-, лямбда-, мю-, ню-, сигма- и тау-частицы…

ОБОРОТОВ

Главная страница

• Нужна помощь? 1-888-442-5830

Извините, но эта ссылка либо устарела, либо неточна,
либо на сервере ее сегодня просто нет. Пожалуйста, повторите поиск!

Извините, но эта ссылка либо устарела, либо неверна,
, либо на сервере ее сегодня просто нет. Пожалуйста, повторите поиск!

Вернуться на главную

Подберем альтернативу…

Вернуться на главную

Магазин Женские

• Горячий список
• Новые поступления

• Одежда
• Платья

• Обувь
• Сумки

• Аксессуары
• Красота

Лучшие дизайнеры

• Акация Купальники
• эль от алессандры
• ББ Дакота
• Голубая жизнь
• Верный бренд

• ФЛИНН СКАЙ
• Для любви и лимонов
• Свободные люди
• Джои
• Любовники + друзья

• Мара Хоффман
• Марыся Плавать
• МАТЬ
• НБД
• Паркер

• Тряпка и кость
• РАЙ
• Дневники Джетсета
• Тулароза
• Уайлдфокс Кутюр

Свяжитесь с нами

Телефон

• США: +1 888 442 5830 (НА АНГЛИЙСКОМ И ИСПАНСКОМ)
• ВНУТРЕННИЙ : +1 562 926 5672 (ТОЛЬКО НА АНГЛИЙСКОМ ЯЗЫКЕ)
• ФАКС: +1 714 459 7488

Электронная почта

sales@REVOLVE. com

Мы ответим в течение 24 часов.0001

Мир

---

Мэдди Буракофф

Associated Press

Опубликовано:  19 апреля 2023 г., 13:19

Метки : Наука

---

Подпишитесь на нашу рассылку новостей

---

5 часов назад

Заключенный смерть приводит к широкому счету за серьезные изменения в тюрьме округа Харрис

5 часов назад

«Сюрпризом было то, что ее поймали»: отставной армейский босс Сары Хартсфилд называет подозреваемого в убийстве «умным кнутом»

4 часа назад

Беглец из Миссисипи, пойманный в Хьюстоне, не будет бороться за экстрадицию

Будь первым получить майку для Texans лучший выбор драфта!

Мир

Мэдди Буракофф

Associated Press

Опубликовано: 000Z»> 19 апреля 2023 г., 13:19

Теги: Наука

На этой фотографии, предоставленной исследователями, аспирант Корнельского университета Браян Виланова Куэвас собирает образец мазка с поверхности кораллов в Сент-Томасе, Виргинские острова США, в сентябре 2022 года. Крошечный одноклеточный организм Виной всему массовая гибель морских ежей в Карибском море в 2022 году, сообщили исследователи в среду, 19 апреля 2023 года, в журнале Science Advances. (Ян Хьюсон/Корнельский университет через AP)

НЬЮ-ЙОРК — В прошлом году морские ежи в Карибском море начали заболевать — сбрасывать свои шипы, вымирать и повергать экосистемы рифов в хаос. Теперь ученые думают, что они поймали убийцу в этом загадочном морском убийстве.

Крошечный одноклеточный паразит виноват в массовом вымирании, сообщили исследователи в среду в журнале Science Advances.

«Дело закрыто», — сказала автор исследования Майя Брейтбарт, морской микробиолог из Университета Южной Флориды.

Эти длинноиглые морские ежи, или Diadema antillarum, представляют собой колючие черные существа, которые прячутся в рифах по всему Карибскому морю. По словам Брейтбарта, они играют ключевую роль в качестве «газонокосилок» рифа, поедая водоросли, растущие на кораллах.

Но в январе 2022 года у этих животных начали проявляться странные симптомы — их острые шипы свешивались и отваливались, их лапы-присоски теряли хватку — прежде чем массово вымирать от Виргинских островов до Пуэрто-Рико и Флориды.

Для ученых-морелогов это было дежа вю: очередная смертность пронеслась по региону в 1980-х годов и сократили популяцию морских ежей примерно на 98%.

Это дело так и не было раскрыто. Но на этот раз в дело вступила международная группа исследователей, которая взяла образцы у больных и здоровых ежей по всему Карибскому морю, чтобы найти генетические ключи.

Они не видели признаков вирусов или бактерий, сказал автор исследования Ян Хьюсон, изучающий морские болезни в Корнельском университете. Но они обнаружили следы крошечных одноклеточных организмов, называемых инфузориями, которые проявлялись только в больных ежах.

Хотя большинство инфузорий не вызывают заболеваний, этот вид был связан с другими водными вспышками, что делает его главным подозреваемым, сказал Хьюсон.

Чтобы подтвердить поимку убийцы, ученые поместили паразитов в аквариумы со здоровыми ежами, выращенными в неволе, чтобы посмотреть, как они отреагируют. Из 10 ежей, столкнувшихся с крошечными существами, 60% погибли — после появления тех же симптомов, которые исследователи наблюдали в дикой природе.

Возможно, этот же паразит стал причиной гибели в 1980-х годов, но ученые не могут быть уверены, сказал Брейтбарт.

И еще не придумали, как лечить больных мальчишек. Но они надеются, что знание источника гибели поможет сохранить рифы, особенно после того, как они узнают больше о том, как распространяются паразиты, сказал Брейтбарт.

Эти смерти ежей и другие стрессы уже изменили рифы, добавил Дон Левитан, морской ученый из Университета штата Флорида, который не участвовал в исследовании.