Увеличение численности мышей приводит к увеличению численности: Вариант ЕГЭ по биологии №3 2005 полный с ответами — Сайт Арзамасцевой Л.Н.

Это уже имеет место в Индиане, где Элли Дикман, директор AAA Pest Control, сказала, что технические специалисты заметили всплеск звонков от мышей этой зимой. Призывы к большему количеству мышей в сельских и пригородных домах, а также в городских зданиях продолжались до весны.

«Сейчас я бы сказал, что от 30 до 40 процентов наших звонков связаны с мышами, что довольно удивительно, учитывая время года», — сказал Дикман. «Они просто больше адаптируются и расширяются… и их становится больше».

Как насчет последствий для здоровья человека?

Эксперты также предупреждают о более серьезных последствиях для общественного здравоохранения , учитывая, что белоногие мыши являются естественными резервуарами бактерий болезни Лайма, которые затем могут заражать клещей, способных передавать болезнь Лайма людям.

Бактериальное заболевание, вызывающее лихорадку, утомляемость, боль в суставах и кожную сыпь, а также более серьезные осложнения на суставы и нервную систему, является наиболее распространенным трансмиссивным заболеванием в США.

В штатах Мэн, Вермонт и Нью-Гемпшир до сих пор наблюдался самый большой рост числа зарегистрированных случаев, которые Агентство по охране окружающей среды США отчасти связывает с изменением климата.

53-летний Эллиот Смайт, владеющий фермой недалеко от Рэндольфа, штат Вермонт, сказал, что уделяет больше внимания растущему количеству мышей и клещей, а также собственности после своего 15-летнего сына прошлой осенью заразился болезнью Лайма .

«Живя в сельской местности, как и я, я не особо возражал против мышей, — сказал Смайт. «Но когда они продолжают приходить и превращаются в неприятности… ну, теперь у меня проблема».

Со временем смещение мышей на север может означать, что в более южных регионах США будет меньше грызунов, сказал Флойд, но в районах Среднего Запада, Новой Англии и Канады их может быть больше.

«Нам потребуются дополнительные исследования, чтобы лучше понять, где и как быстро двигаются (мыши)», — сказал он. «Нам также нужно больше узнать о том, какую роль могут играть более влажные условия из-за изменения климата. Нам еще многому предстоит научиться».

Здоровье: Ресурсный центр по эпидемиологии: Крысы и мыши

ВВЕДЕНИЕ
House Mouse
The Rat
, распознавая заражение грызунами
Сохраняйте грызуны на улице
Коммерческие и фермерские постройки
Хищники
ловушки
Электронные устройства
878. Усказание грызунов и грызунов. можно найти в каждом городе и ферме страны и вокруг них. Подсчитано, что на каждого человека, живущего в Соединенных Штатах, приходится одна крыса. Грызуны последовали за человеком почти во все части света. У них нет уважения к социальному классу; они вредители равных возможностей.

Крысы и мыши настолько тесно связаны с человеком, что их называют домашними грызунами. Человек удовлетворяет их три основные потребности: пищу, кров и воду.

Грызуны представляют угрозу для здоровья и мешают нашему экономическому и физическому благополучию.

• Это разрушительные вредители и серьезная угроза безопасности.
• Они разжигают огонь, перегрызая электрические кабели. В следующий раз, когда вы услышите фразу «пожар неизвестного происхождения», подумайте о крысах и мышах.
• Они едят большое количество пищи и еще больше загрязняют их мочой, фекалиями и волосами. Каждый год не менее 20 процентов продуктов питания в мире потребляются или загрязняются крысами и мышами.
• Они повреждают постройки, книги, мебель и даже технику, грызя и закапывая норы.
• Хуже того, они передают болезни людям и другим животным через укусы, перенося блох, вшей, клещей и клещей, а также оставляя свой помет в пище и других материалах, с которыми люди контактируют. Грызуны являются переносчиками бубонной чумы, лихорадки крысиных укусов, лептоспироза, хантавируса, трихинеллеза, инфекционной желтухи, клещевого дерматита, сальмонеллеза, легочной лихорадки и сыпного тифа. Мыши были связаны с астмой.
• Крысы кусают младенцев в их кроватках, потому что запах молока или другой пищи от младенца привлекает крысу, ищущую пищу. Чистый ребенок в чистой кроватке намного безопаснее от нападения крыс. Чтобы защитить ребенка, уберите бутылочку, как только она закончится, и вымойте ему руки и лицо. Сделайте то же самое для всех инвалидов или пожилых людей в вашей семье, которые не могут позаботиться о себе.

Грызунов можно найти в наших домах, супермаркетах, ресторанах, загонах для скота и на фермах. Склады, зерновые мельницы, элеваторы, силосы и зернохранилища особенно уязвимы для заражения грызунами. Грызуны будут есть все, что ест человек или его домашний скот. Они активны ночью. Крыс редко можно увидеть днем, за исключением случаев, когда их популяция чрезвычайно велика. Крысы и мыши могут пролезать в очень маленькие щели, что затрудняет ограничение их движения. Даже если вы их не видите, вы можете услышать их движение после наступления темноты. Если ваш питомец лапает стену или шкаф, возможно, он охотится за затаившимся грызуном. Однако кошки и собаки не являются сдерживающим фактором для грызунов.

Обычно первым признаком серьезной проблемы с грызунами является их помет на кухонном столе, в кухонных ящиках, шкафах или кладовой. Если заражено одно жилище, то, скорее всего, заразятся и ближайшие соседи. Вот почему одному домовладельцу так трудно контролировать грызунов. Грызуны — проблема общества. Эффективный контроль требует, чтобы все домовладельцы в сообществе работали вместе, чтобы устранить источники пищи, воды и жилья. Грызуны настойчивы в своих попытках проникнуть в дом, но вы можете эффективно бороться с ними, если знаете их возможности.

Домовая мышь

Домовая мышь ( Mus musculus ) — самое распространенное млекопитающее на Земле. Родом из Центральной Азии, мышь прибыла в Северную Америку с первыми европейскими колонистами. Мышей теперь можно найти по всей Северной Америке, в каждом штате, включая прибрежную Аляску, и во всей Канаде, кроме самой северной.

• Взрослая мышь имеет маленькое стройное тело весом от ½ унции до унции.
• У них большие, редко опушенные уши; маленькие черные выпуклые глаза; слегка заостренный нос; и ряды чешуи, окружающие их длинный, заостренный, редко опушенный хвост.
• Обычно они имеют мех от светло-коричневого до серого или черного цвета с белым или желтовато-коричневым мехом под ним.
• Продолжительность их жизни составляет 9-18 месяцев, хотя некоторые доживают до двух лет в неволе.

Мышь легко адаптируется. Отличный пловец, бегун, альпинист и прыгун. Он может прыгать на высоту до 12 дюймов. У мышей отличное обоняние, вкус и осязание. Хотя у мышей плохое зрение, у мышей хорошее периферическое зрение, которое позволяет им обнаруживать движение. На открытом воздухе мыши гнездятся в сорняках, мусоре, трещинах в скалах или стенах или строят сеть туннелей под землей с камерами для гнезд и складов и несколькими выходами.

Каждую осень с наступлением холодов мыши вынуждены искать пищу и убежище. Мыши любопытны и проникают в любую дыру или трещину размером до ¼ дюйма. Если им нравится то, что они находят внутри, больше, чем то, что у них было снаружи, у вас будут проблемы с мышами. Мыши будут гнездиться в любом скрытом месте рядом с источником пищи. Их гнезда сделаны из тряпок или бумаги, выстланной мелко нарезанным материалом, и выглядят как свободно сплетенный шар диаметром 4-6 дюймов. Если пища доступна, мышь обычно перемещается не более чем на 10-50 футов от своего гнезда. Мыши территориальны и будут постоянно исследовать, чтобы узнать больше об их окружении. Они запоминают пути, препятствия, пищу, воду, убежище и другие элементы в своей среде обитания. Они быстро обнаруживают новые объекты в своем окружении, и они скорее любопытны, чем боятся чего-либо нового.

Из-за плохого зрения мыши ориентируются с помощью усов, обычно перемещаясь по стене или другому объекту. Если вы не двигаетесь, мышь вас не увидит. Они будут исследовать, когда думают, что они одни… обычно ночью, но и в любое другое время, когда они не обнаруживают движения. Люди обычно видят мышей только тогда, когда они сидят неподвижно, например, когда читают или смотрят телевизор. В отличие от крыс, тот факт, что вы видели мышь, не обязательно означает, что у них высокая плотность популяции.

Семья мышей состоит из доминирующего самца, нескольких самок и их детенышей. Женщины устанавливают свободную иерархию на своей территории. Взрослые мыши заставят своих детенышей разойтись, хотя некоторые самки могут оставаться рядом со своими родителями. Мышь — одно из самых плодовитых млекопитающих.

• Самки мышей начинают размножаться в возрасте 40-45 дней.
• Беременность длится всего 18 дней, в помете 3-12 детенышей (в среднем 5-6).
• Самки мышей производят 12 и более пометов в год.
• Новорожденные мыши лишены меха и слепы. Но они быстро растут. Через 2-3 недели они покрыты шерстью, а глаза и уши открыты. В 3 недели щенки начинают совершать короткие вылазки из гнезда и начинают есть твердую пищу.

Легко понять, почему популяция мышей может экспоненциально расти при правильных условиях. К счастью, размножение заметно замедляется по мере увеличения популяции мышей.

В то время как они будут пить воду, когда она будет доступна, мыши могут жить в сухой среде обитания, получая всю необходимую им воду из пищи, которую они едят. В дикой природе мыши питаются семенами, корнями, листьями и стеблями, личинками жуков, гусеницами, тараканами и падалью, но предпочитают семена и зерно. Хотя мыши могут питаться крохами, обычно они съедают 3 грамма пищи в день (10-15% от массы тела) или около 8 фунтов в год. Когда доступна человеческая пища, продукты с высоким содержанием жира, белка или сахара часто употребляются в пищу, а не семенам и зерну. Некоторые из их любимых человеческих продуктов включают бекон, шоколад, масло и орехи. Мыши от природы любопытны и не стесняются пробовать новые продукты. Они даже съедят клей или мыло, если мыло содержит животный жир.

Мыши грызут любую доступную пищу, съедая небольшими порциями, чтобы найти то, что им нравится больше всего. Таким образом, мыши уничтожают гораздо больше пищи, чем съедают. В год одна мышь производит около 18 000 фекалий. В них будут храниться продукты, что может привести к заражению насекомыми. Хотя это не их предпочтение, мыши будут жить в морозильных камерах, питаясь только замороженной пищей. Обычно это происходит в крупных коммерческих предприятиях, где есть встроенные холодильники.

Крыса

Норвежская крыса ( Rattus norvegicus ) сильна, очень агрессивна и способна адаптироваться к холодному климату.

• Крысы имеют длину 12-18 дюймов и вес до 16 унций.
• Крысиные морды тупые, а тела кажутся толстыми и тяжелыми.
• У них маленькие глаза, голые уши и грубый мех.
• Крысиные хвосты 6-9 дюймов в длину, чешуйчатые и почти голые.
• У них мех от коричневого до темно-серого, с разбросанными черными волосками, а нижняя часть серая, серовато-коричневая или грязно-белая.

Каждый год крыса теряет более 500 000 волос на теле. Если оставить нетронутыми резцы крысы, они вырастут на 4 дюйма за год. Таким образом, крысы должны постоянно жевать, чтобы изнашивать свои резцы. Крысы будут жевать дерево, алюминиевый сайдинг, стеновые панели, штукатурку, панели, мерзлую землю, бетон… все, кроме стекла и большинства металлов.

• Продолжительность их жизни составляет 9-12 месяцев, хотя некоторые крысы живут до 3 лет.
• Они хорошие пловцы, прыгуны и альпинисты, у них острый слух, обоняние, вкус и осязание.
• Они в основном ведут ночной образ жизни, оставляя свои гнезда в поисках корма в сумерках.

Из-за того, что они так искусно прячутся и бегают, крысы могут существовать в больших количествах без ведома своих соседей-людей. В отличие от мыши, крысы боятся всего нового. Тем не менее, они быстро адаптируются к новым местам жизни, новым распорядкам, новым местам питания и новым видам пищи.

Люди чаще видят крыс с апреля по июнь (весеннее размножение), а затем снова в октябре и ноябре по мере смены сезона. Но крысы активны круглый год. На открытом воздухе крысы зарываются в земляные насыпи, вдоль стен, под мусор или бетонные плиты, но всегда располагаются вблизи источников пищи и воды. Крысы ходят по одним и тем же маршрутам, каждую ночь совершая обход в поисках пищи, поэтому они оставляют очевидные ходы в траве. Крысы часто перемещаются под такими объектами, как тюки, доски, зернохранилища и механизмы, чтобы скрыть свое движение. Крыса обычно перемещается не более чем на 150 футов от своего гнезда, но во время сбора урожая крысы уходят гораздо дальше в поисках корма для кукурузы, пшеницы или бобов, оставленных на полях фермы.

На улице или в помещении крысы оставляют явные масляные пятна на своих следах и входных отверстиях. Они могут проникнуть в любое отверстие диаметром более ½ дюйма, что означает, что они могут протиснуться в ваш дом через

• пространство вокруг трубы или канала,
• под дверью (особенно двери гаража, которые остаются открытыми или негерметично),
• через отверстие в сетке или полу,
• или через щель между окном и его рамой.

Крысы проделывают дыры в стенах или полу вскоре после нашествия. Крысиные норы круглые, в среднем 2-3 дюйма в диаметре и обычно находятся всего в нескольких дюймах от пола. Дыры в полах, как правило, расположены близко к стенам. Крысы оставляют характерный мускусный запах, особенно если они ограничены небольшим пространством.

Как и мыши, крысы создают территории и колонии. Доминирующий самец постоянно охраняет свой гарем самок и агрессивно препятствует спариванию других самцов. Самки активно защищают свою группу от чужаков и часто гнездятся вместе. Их гнезда строятся из листьев, бумаги, тряпок, веток и всего, что они могут найти. Крысы ведут ночной образ жизни, но в районах с большой популяцией крыс некоторые низкоранговые крысы будут кормиться днем, потому что другие крысы отказывают им в доступе к еде ночью.

Крысы также очень плодовиты. При достаточном питании и укрытии крысы будут размножаться в течение всего года, хотя зимой рождается меньше пометов.

• Размножение происходит в основном весной и осенью.
• Самка крысы начинает размножаться в возрасте 40-45 дней.
• Самки часто спариваются в течение 18 часов после родов.
• Беременность длится всего 21 день, а в помете 2-14 детенышей (в среднем 7).
• Самки производят 8 и более пометов в год.
• Крысы продолжают размножаться до возраста от 18 до 24 месяцев.
• Новорожденные крысы лишены меха и слепы. Но они быстро растут.
• Через 2-3 недели у них открываются глаза и уши.
• Щенки отнимаются от груди через 3 недели и становятся половозрелыми через 3 месяца. Однако щенки мужского пола должны достаточно развиться, чтобы бросить вызов взрослому самцу за превосходство.

Легко понять, почему популяция крыс может расти в геометрической прогрессии. В идеальных условиях пара крыс может произвести 15 000 потомков за один год. К счастью, размножение заметно замедляется по мере увеличения популяции.

У крыс ненасытный аппетит. Крыса может съедать треть своего веса каждый день. Крыса — настоящее всеядное животное. Он будет есть все, включая мыло, кожу, меха, конфеты, молоко, мясо, овощи, птицу, яйца, зерно, семена, фрукты, орехи, улиток и других грызунов. Крысы ловят рыбу и охотно едят падаль. Вблизи домов крысы питаются кормом для домашних животных, птичьим кормом, семенами трав, мусором, собачьими фекалиями и несъеденной или испорченной пищей, которую мы выбрасываем. Хотя крысы едят почти все, они предпочитают зерно, корм для скота и мясо. В отличие от мышей, которые грызут понемногу, крысы, если это возможно, насытятся за один присест. Крысы будут копить и хранить пищу, что может привести к заражению насекомыми. Как и мыши, крысы будут жить в морозильных камерах, питаясь только замороженной пищей. Крысы едят так много, что одна крыса может оставить после себя 25 000 экскрементов в год . Главный недостаток крысы заключается в том, что она не может долго обходиться без воды, если только ее рацион не обеспечивает достаточного количества воды. Крысам требуется до одной унции воды каждый день.

Количество и поведение крыс меняется в течение года. Многие крысы умирают зимой, так как становится трудно найти еду на открытом воздухе. Размножение зимой сравнительно низкое, поэтому популяция крыс самая низкая. Мягкая зима означает, что меньше крыс погибнет по естественным причинам, поэтому весной можно ожидать большего. Но если с крысами бороться зимой, их будет меньше, чтобы возобновить цикл размножения весной. Тяжелое размножение начинается в марте, когда погода меняется. Весенние дожди подстегивают растительность, которая обеспечивает укрытие и дополнительную пищу. Так что поздней весной крыс больше. Молодым крысам приходится искать пищу и новые гнезда. Летом корма и растительности в избытке, поэтому крысы продолжают размножаться. Пик размножения приходится на начало сентября, когда температура начинает падать. Осенью количество пищи и укрытий начинает уменьшаться, поэтому крысы ищут убежища внутри зданий и домов.

Избавиться от крыс сложно. Отлов или отравление нескольких крыс по соседству мало что даст. Чтобы победить их, сообщество должно сотрудничать в их поимке или убийстве, в то же время морить их голодом, отказывать им в убежище и отключать их источники воды. Лишившись источника пищи, крысы начнут убивать и поедать друг друга, что еще больше снижает заражение.

Распознавание заражения грызунами

Существует двенадцать индикаторов активности грызунов:

• Помет — Обычно первым признаком серьезной проблемы с грызунами является их помет на кухонном столе, в кухонных ящиках и шкафах или в кладовой. Ищите мышиный помет в подсобных помещениях, на чердаках, в гаражах и подвалах. Мышиный помет гладкий с заостренными концами и имеет длину от 1/8 до ¼ дюйма. Крысиный помет имеет форму гранул, затупленных с обоих концов, размером с оливковую косточку и блестяще-черного цвета. Вскоре они становятся серо-белыми. Экскременты разбрасываются случайным образом, но, как правило, рядом с беговыми путями грызунов, местами кормления или рядом с убежищем.
• Следы — Следы грызунов можно увидеть в грязи, пыли или голой грязи. Часто следы оставляют и хвосты грызунов. В доме следы мышей можно увидеть на пыльных поверхностях. Вы также можете проверить следы мыши, посыпав подозрительные участки тонким слоем неароматизированного талька или меловой пыли. Подождите день, а затем посветите фонариком на местность. Если в порошке есть небольшие следы, там побывали мыши.
• Грызение — Крысы должны постоянно жевать, чтобы стирать свои резцы. Ищите дыры в стенах или потолках, а также следы в подпольях, за или под шкафами, прилавками, ваннами, душевыми кабинами или возле водонагревателей или печей.
• Норы — Норы можно найти вдоль канав, стен или заборов, а также под зданиями, мусором, низкой растительностью, поленницами или бетонными плитами.
• Взлетно-посадочные полосы — Крысы ходят по одним и тем же маршрутам каждую ночь в поисках пищи. При этом они оставляют взлетно-посадочные полосы шириной 2 дюйма в грязи или траве, обычно рядом со зданиями или заборами.
• Жирные следы — Жирные следы от трения появляются в результате многократного контакта маслянистой шерсти крысы со стенами или входными отверстиями.
• Пятна мочи — Пятна мочи лучше видны при черном свете.
• Гнезда — Мышиные гнезда можно найти в подсобных помещениях, на чердаках, в гаражах и подвалах. Обычно они сделаны из ткани или измельченной бумаги, выстланной мелко измельченным материалом. Крысиные гнезда выглядят как рыхло сплетенный шар диаметром 4-6 дюймов.
• Частично съеденный корм — Мыши оставляют частично съеденный корм. Хотя крысы съедают большую часть найденной ими пищи, даже они оставляют характерные признаки, такие как раковины или другие несъедобные предметы.
• Живые или мертвые грызуны — Люди обычно видят мышей только тогда, когда они сидят неподвижно, например, когда читают или смотрят телевизор. Крысы ведут ночной образ жизни, но в районах с большой популяцией крыс некоторые низкоранговые крысы будут кормиться днем, потому что им отказывают в доступе к еде ночью. Если вы видите крыс днем, это признак серьезного заражения.
• Звуки — Хотя вы можете их не видеть, вы, вероятно, можете слышать, как грызуны передвигаются после наступления темноты. Если ваш питомец цепляется лапами за стену или шкаф, возможно, он пытается добраться до затаившегося грызуна.
• Запахи — Часто можно почувствовать запах мочи грызунов или их мускусный запах, особенно в плохо проветриваемом помещении.

Держите грызунов на открытом воздухе

Лучший способ борьбы с грызунами — это не допускать их в дом . Так как грызуны любят прятаться в растительности, ваша первая линия защиты — обрезать растительность рядом с вашим домом. Чистые дворы лишают грызунов пищи и крова, необходимых им для размножения, и ограничивают способность молодых грызунов переселяться. Груды скошенной травы или обрезков деревьев являются идеальным убежищем для грызунов, поэтому правильно храните и утилизируйте эти материалы. Постарайтесь оставить пару футов свободного пространства между вашим домом и любой растительностью. Грызуны также любят прятаться под поленницами или пиломатериалами; в брошенных автомобилях, технике и мебели; и под мусорными баками. Так что удалите и правильно утилизируйте весь хлам. Храните любые пиломатериалы или древесину на стеллажах на высоте не менее 12 дюймов от земли и вдали от внешней части дома. Храните мусор и мусорные баки также на стеллажах или на бетонной подушке.

Ежегодно в конце лета или начале осени проверяйте периметр вашего дома, чтобы убедиться в отсутствии щелей, через которые можно было бы войти. Помните, что для входа мыши достаточно отверстия размером с карандаш . Обратите особое внимание на трубы, электропроводку, кабелепроводы, кабели, двери и окна. Даже там, где проходят подземные инженерные трубы, фундамент должен быть надежно герметизирован. Ночью попросите кого-нибудь осветить внутреннюю часть вашего подвала или стены подвала, пока вы будете кружить по периметру дома снаружи. Потенциальные входные отверстия или другие недостатки, о которых вы можете не знать, будут видны при свете. Закройте все обнаруженные отверстия листовым металлом, металлической тканью или проволочной сеткой. Из кусочков жести, вырезанных из кофейных банок, получаются отличные заплатки. Зачеканка не поможет . Закройте необходимые отверстия, такие как вентиляторы и дымоходы, проволочной сеткой толщиной ¼ дюйма. Проволочная сетка размером более ¼ дюйма не подойдет. Замените недостающие кирпичи. Заполните любые углубления под фундаментом бетоном.

Пристроенные гаражи являются серьезными слабыми местами , потому что гаражные ворота редко подходят так близко, как другие двери. Как только грызун проник в пристроенный гараж, остальная часть дома становится легкой добычей. Поэтому, чтобы сделать гараж менее привлекательным, храните свой хлам и мусор в другом месте. Но если вы должны хранить его там, будьте особенно осторожны, чтобы использовать контейнеры в хорошем состоянии с плотно закрывающимися крышками. Никогда не оставляйте пластиковые мешки для мусора в пристроенном гараже. Опять же, посветите ночью по периметру двери гаража, чтобы увидеть, обеспечивает ли она легкий вход. Проверяйте ворота пристроенных гаражей чаще, чем раз в год.

Окна и наружные двери должны подходить по размеру , иметь герметизирующие прокладки и быть закрытыми, когда они не используются. В дверях-сетках не должно быть отверстий. Экраны легко залатать. Все края окон и дверей, подверженные прогрызанию, должны быть покрыты металлом.

Даже луж дадут грызунам столько воды, сколько им нужно для питья . Таким образом, все утечки должны быть устранены, а все колеи и впадины должны быть осушены или засыпаны. Держите все желоба в чистоте, чтобы вода не застаивалась. Убедитесь, что ваш оконный кондиционер не создает лужу. Накройте бассейны и гидромассажные ванны. Слейте воду из купален для птиц и декоративных прудов. Водяные шланги печально известны протечками в местах соединений; поэтому, когда вы закончите пользоваться шлангом, перекройте воду на кране, а не на насадке шланга. Прекратите полив газона на время заражения.

Внешние источники пищи, привлекающие грызунов, включают мусор, корм для собак и кошек, собачьи фекалии, птичий корм и фрукты или ягоды , упавшие на землю. Уберите их источники пищи на улицу, и грызуны будут искать другой район для жизни. Собирайте фрукты и овощи во дворе. Соты могут прокормить сотни мышей всю зиму, поэтому тщательно удалите все ульи в непосредственной близости. Птицы едят грязно, что особенно полезно для грызунов. Поэтому перестаньте кормить птиц на время заражения. Если вы кормите белок; вы также кормите грызунов. Если есть возможность, кормите своих питомцев в помещении. Если вам необходимо покормить своих питомцев на улице, уберите их еду через 30 минут после подачи. В противном случае то, что не съест ваш питомец, съедят грызуны. Поскольку крысы ведут ночной образ жизни, кормите своего питомца на открытом воздухе задолго до наступления темноты.

Храните мусор в контейнерах, желательно из металла, с плотно закрывающимися крышками . Никогда не оставляйте полиэтиленовые пакеты для мусора на улице. Регулярно переворачивайте компостные кучи и не компостируйте мясо, кости, молочные отходы, жиры или масла. Ежедневно убирайте собачьи фекалии со двора.

Коммерческие и сельскохозяйственные постройки

По возможности храните сыпучие продукты в защищенных от грызунов зданиях , комнатах или контейнерах. Складывайте упакованные продукты на поддоны, оставляя достаточно места вокруг и под хранящимися предметами, чтобы можно было проверить их на наличие крыс. Сливные отверстия в мусорных баках должны быть оборудованы съемной аппаратно-тканевой сеткой или же затыкаться после каждой уборки.

Хищники

Хотя кошки, собаки и другие хищники иногда убивают крыс, они не обеспечивают эффективной борьбы с грызунами. Они просто не могут убить крыс достаточно быстро. Крысы часто живут среди кошек и собак. Они используют еду и воду домашних животных, а иногда даже их убежище.

Ловушки

Используйте ловушки только после того, как вы предпримете все санитарные меры, описанные выше . Хотя отлов грызунов является очень важным инструментом борьбы с грызунами, он не может заменить хорошие санитарные условия. Если вы не контролируете их источники пищи и воды, грызуны будут размножаться быстрее, чем вы сможете их поймать . Отлов имеет то преимущество, что

• в нем не используются опасные пестициды;
• пользователь сразу узнает, когда ловушки сработали;
• и пойманных грызунов можно легко утилизировать до того, как они станут источником запаха, как это может произойти при отравлении (т.е. грызуны умирают в недоступных местах вокруг дома).

Ловушки особенно эффективны, если популяция грызунов невелика. Ловушки-защелки, клеевые доски и клетки-ловушки — все работает. Большинство ловушек можно использовать снова и снова. Ловушки на древесной основе недороги и доступны в большинстве хозяйственных магазинов. Большинство ловушек с защелкой предназначены для мышей, но доступны ловушки большего размера, разработанные специально для крыс. Купите достаточно ловушек, чтобы ваши усилия были короткими и решительными.

Ловушки не нуждаются в наживке , просто расположены там, где грызуны будут спотыкаться о спусковой крючок при обычном движении. Если вы хотите приманить ловушки, используйте очень небольшое количество арахисового масла, леденцов, сырого бекона, колбасы или ванильного экстракта (используйте ватный тампон, чтобы нанести ванильный экстракт). Что бы вы ни использовали, не нагромождайте это. Сделайте это, и вы увеличите вероятность заражения насекомыми. Вы также увеличиваете вероятность того, что грызун найдет способ убрать приманку, не будучи пойманным. Вы также можете убить одного грызуна, но накормить нескольких других. Все, что вам действительно нужно, это запах еды. Вы также можете использовать в качестве приманки кусок ватного тампона, так как грызуны любят использовать его для строительства гнезд. Преимущество хлопка в том, что он не привлекает насекомых.

• Располагайте ловушки там, где вы обнаружите признаки активности грызунов, но желательно возле стен. Лучше всего ловушки работают под прямым углом к ​​стене, так чтобы спусковой крючок касался стены. Это связано с тем, что грызуны предпочитают путешествовать по стенам.
• Не забывайте также держать ловушки в недоступном для домашних животных и маленьких детей месте .
• Несколько ловушек должны быть расположены в подозрительных местах. В идеале их следует перемещать в разные места каждый день, и, конечно же, их следует перемещать, если грызунов не ловят.
• Возможно, потребуется отрегулировать спусковой крючок ловушки, чтобы обеспечить легкое освобождение при касании грызуном.
• Поскольку крысы особенно пугливы ко всему новому, может оказаться необходимым оставить ловушку неустановленной до тех пор, пока приманка не будет съедена хотя бы один раз, чтобы снизить вероятность пугливости ловушки.
• Ежедневно проверяйте свои ловушки.

Другой формой ловушки является клеевая доска , имеющая липкую поверхность, которая удерживает любого грызуна, пытающегося пересечь ее. Расположите клейкие доски везде, где вы бы использовали другие ловушки, но помните, что клейкие доски настолько липкие, что они будут проблемой для любых детей, домашнего скота, домашних животных или других диких животных, которые вступят в контакт. Также имейте в виду, что пыль снижает эффективность клеевой доски. Попав на клейкую доску, мышь обычно умирает от остановки сердца. Клеевые доски со временем теряют свою эффективность, поэтому замените их, когда они перестанут быть липкими. Как и в случае с любой другой ловушкой, переместите клеевые доски в другое место, если грызуны не ловятся.

Электронные устройства

Ультразвуковые устройства излучают звуковые волны выше диапазона человеческого слуха, но их эффективность ограничена, поскольку производимые звуковые волны не могут проникать через твердые объекты, например стены. Они также быстро теряют интенсивность с расстоянием. Поскольку грызуны быстро привыкают к повторяющимся звукам, мало доказательств того, что звуковые устройства будут выгонять укоренившихся крыс или мышей из зданий . Точно так же мало доказательств того, что магнитные устройства или вибраторы оказывают какое-либо положительное влияние на грызунов.

Родентициды

Родентициды представляют собой отравленные приманки и фумиганты, используемые в основном профессионалами для борьбы с грызунами. Поскольку фумиганты представляют собой газы, высокотоксичные для человека, домашнего скота и других животных, их нельзя применять в зданиях, где люди могут подвергаться воздействию. Родентициды имеют широкий спектр активных ингредиентов. Это зарегистрированные пестициды, доступные на открытом рынке, но для их безопасного и эффективного применения требуется обучение и опыт. При неправильном применении эти пестициды могут убить или иным образом подвергнуть опасности детей, домашних или других животных , которые могут по ошибке съесть или вдохнуть их. Мы призываем вас не использовать эти материалы самостоятельно . Наймите лицензированного аппликатора пестицидов, хорошо разбирающегося в борьбе с грызунами, чтобы применить их. Иногда родентициды работают слишком хорошо. Он может убить грызуна до того, как тот выберется из дома. В этом случае у вас будут мертвые грызуны в неудобных местах, таких как чердаки, полости в стенах, подполье или за шкафами… они будут вонять в вашем доме и вызывать серьезные проблемы с насекомыми и мухами. Поскольку родентициды являются пестицидами, они также создают серьезные проблемы при хранении и утилизации.

Утилизация грызунов и их помета

Старайтесь не прикасаться к мертвым или умирающим грызунам или их помету . Блохи на грызуне захотят сделать вас своим новым хозяином. Используйте резиновые перчатки или щипцы и утилизируйте грызунов и экскременты грызунов путем захоронения, сжигания или завернув их в полиэтиленовый пакет, прежде чем выбрасывать в плотно закрытый мусорный бак. Раненые или больные грызуны должны быть убиты (проще всего утонуть) перед тем, как избавиться от них. Сухая уборка или уборка пылесосом приведет к попаданию пыли и вирусов в воздух. Следовательно,

• подметайте или пылесосьте помет грызунов только после того, как вы смочите пораженный участок водой с хлорной известью (1-2 чашки хлорной извести на каждый галлон).
• Используйте пульверизатор, чтобы нанести отбеливающую воду.
• Также обработайте те ловушки, в которые попали грызуны, и места, где грызуны были активны.

Вымойте руки с мылом и горячей водой после избавления от грызунов и экскрементов грызунов, даже если вы использовали перчатки.

Измерение успеха

Результаты нельзя измерить, просто подсчитав мертвых крыс и мышей. Заброшенные норы будут пыльными, а отверстия в них затянуты паутиной. Когда нет свежих следов или экскрементов, а живых крыс или мышей больше не видно, результаты настолько хороши, насколько можно ожидать.

Дополнительные ресурсы

Дополнительную информацию о предотвращении заражения грызунами, заболеваниях от грызунов, уборке после грызунов и изображениях крыс и мышей можно получить на веб-сайте Центров по контролю и профилактике заболеваний (CDC).

Увеличение объема островков, но неизменное количество островков у мышей ob/ob | Диабет

Пропустить пункт назначения Nav

Исследования островков| 01 июля 2003 г.

Троэльс Бок;

Бенте Паккенберг;

Карстен Бушард

Адресуйте корреспонденцию и запросы на перепечатку Troels Bock, MD PhD, H:S Bartholin Institute, Copenhagen University Hospital, Bartholinsgade 2, DK-1399 Copenhagen K, Дания. Электронная почта [email protected]

Диабет 2003;52(7):1716–1722

https://doi.org/10.2337/diabetes.52.7.1716

История статьи

Получено:

04 февраля 2003 г.

Принято:

31 марта 2003 г.

• Разделенный экран
• Просмотры
  • Содержание артикула
  • Рисунки и таблицы
  • Видео
  • Аудио
  • Дополнительные данные
  • Экспертная оценка
• PDF
• Делиться
  • MailTo
  • Твиттер
  • LinkedIn

• Иконка Цитировать Цитировать

• Получить разрешения

Citation

Троэльс Бок, Бенте Паккенберг, Карстен Бушар; Увеличение объема островков, но неизменное количество островков у мышей ob/ob . Диабет 1 июля 2003 г.; 52 (7): 1716–1722. https://doi.org/10.2337/diabetes.52.7.1716

Скачать файл цитаты:

• Рис (Зотеро)
• Менеджер ссылок
• EasyBib
• Подставки для книг
• Менделей
• Бумаги
• КонецПримечание
• РефВоркс
• Бибтекс

Расширенный поиск

Для нашего понимания островков поджелудочной железы важно изучить, способны ли новые островки образовываться в интактной поджелудочной железе. Мы разработали новый метод для определения общего числа и среднего объема островков поджелудочной железы и использовали этот метод для изучения расширения массы островков в мышей ob/ob ( n = 8), используя мышей ob /+ ( n = 8) в качестве контроля. Общий объем островков был увеличен в 3,6 раза у мышей ob/ob по сравнению с мышами ob/ob /+, тогда как, что важно, общее количество островков не различалось у мышей ob/ob и мышей ob . /+ мышей (3193 ± 160 островков у мышей ob/ob против 3184 ± 142 островков у мышей ob/ob /+, P = 0,97). Коэффициент вариации распределения островков по объему был одинаковым в обеих группах, что свидетельствует о том, что в ob/ob , существующие островки увеличивают свой объем в той же пропорции без чистого образования новых островков. Мы предлагаем рассматривать панкреатические островки как анатомически настолько сложные структуры, что неогенез островков не происходит спонтанно в интактной поджелудочной железе. Клетки внутри существующих островков, по-видимому, являются наиболее важными источниками гиперплазии островковых клеток во время увеличения общей массы островков.

Фундаментальным и до сих пор оставшимся без ответа вопросом в понимании патогенеза диабета 2 типа является ограничение образования достаточного количества дополнительных β-клеток для поддержания нормогликемии при повышенной потребности в инсулине; даже у людей со значительной резистентностью к инсулину не развивается диабет, если у них есть соответствующее количество функционирующих β-клеток, что подчеркивает патофизиологическое значение общей массы β-клеток.

Мышь ob/ob широко изучалась в качестве модели диабета 2 типа (1). Эти мыши страдают ожирением, у них развивается резистентность к инсулину и диабет из-за наследственной неспособности вырабатывать лептин (2), несмотря на заметное увеличение общей массы панкреатических островков. В литературе утверждается, что как гиперплазия островков, так и гипертрофия островков ответственны за увеличение общей массы островков у мышей ob/ob (3,4), но среди немногих исследований, которые действительно рассматривали этот вопрос с применением методов который теоретически мог бы измерить общее количество островков (5,6), на самом деле результаты расходятся. Ранее мы обнаружили линейную корреляцию между общим объемом островков и средним объемом, взвешенным по объему, у крыс (7). масса при физиологическом росте у крыс обусловлена ​​ростом существующих островков без образования новых островков. Поэтому мы разработали метод, основанный на последних стереологических методах, для определения общего числа и среднего объема островков поджелудочной железы, и мы использовали этот метод для исследования расширения массы островков в ob/ob мышей. Понимание того, способны ли новые островки образовываться в интактной поджелудочной железе, важно для понимания островков как анатомической структуры, и, кроме того, это может быть важно для понимания того, какие клетки в поджелудочной железе важны для расширения всего островка. масса во время физиологических или патологических состояний.

Животные.

Были приобретены восемь самцов мышей C57BL/6JBom- ob/ob и восемь самцов мышей C57BL/6Jbom- ob ​​/+ (M&B, Ry, Дания). Всем мышам было 8 недель. Уровень глюкозы в крови натощак измеряли с помощью глюкометра Elite (Bayer, Леверкузен, Германия) до того, как мышей умерщвляли путем смещения шейных позвонков. Поджелудочную железу немедленно извлекали и фиксировали в 10% забуференном формалине, рН 7,4.

Гистология и забор срезов.

Каждую поджелудочную железу заливали парафином и тщательно разделяли на срезы толщиной 5 мкм. Рисунок 1 иллюстрирует выборку разделов. При случайном начале между первыми 50 секциями отбиралась каждая 50-я секция (первичные секции). Кроме того, для каждого отобранного первичного раздела в качестве эталонного раздела отбирался раздел, расположенный на два впереди. Поскольку каждый срез имел толщину 5 мкм, отсюда следует, что между первичными срезами было 250 мкм и 10 мкм между основным срезом и соответствующим эталонным участком. Все первичные и эталонные срезы окрашивали гематоксилином и эозином (H&E). Для четырех поджелудочных желез в каждой группе дополнительный набор систематически отобранных срезов окрашивали на инсулин путем инкубации с первичными антителами морской свинки к свиному инсулину (разведение 1:50; Dako, Glostrup, Дания) с последующей инкубацией с Envision-AP. (Dako), а затем визуализировали с помощью системы Sigma-FAST Fast Red (Sigma, Vallensbaek, Дания) и контрастировали гематоксилином.

Микроскопы и оборудование.

Срезы исследовали с помощью микроскопа Leica DMLB (Leica, Glostrup, Дания), оснащенного выступающим рычагом для проецирования изображения на стол. Систематическая равномерная случайная выборка в пределах среза была обеспечена с помощью предметного столика микроскопа ECO-Drive (Märzhäuser Wetzlar, Wetzlar, Германия), управляемого компьютером с программным обеспечением WIN-Commander 4.1.3.0 (Märzhäuser). Накладные зонды, используемые для стереологических исследований (сетка для подсчета точек или рамка для подсчета, как описано ниже), закрепляли на столе таким образом, чтобы микроскоп проецировал изображение на сетку. Для подсчета общего числа островков использовали дополнительный идентичный микроскоп с выступающим плечом, но с ручным предметным столиком.

Суммарные объемы островков и поджелудочной железы.

Используя длину шага 900 мкм в направлении x (Δ x ) и 700 мкм в направлении y (Δ y ), все первичные срезы каждой поджелудочной железы систематически исследовали, как показано на рисунке. на рис. 2. Нанесена точечная сетка из 99 точек, 1 из них обведена кружком. Проходя через все первичные срезы поджелудочной железы, как показано на рис. 2, мы подсчитывали, сколько раз 1 из 99 точек попадала в островок. Островок определяли как скопление клеток с минимум тремя видимыми ядрами, демонстрирующими нормальные характеристики островковых эндокринных клеток (бледная цитоплазма с приблизительно сферическими ядрами). Параллельно подсчитывали, сколько раз точка, обведенная кружком, попадала в ткань поджелудочной железы (экзокринную ткань поджелудочной железы, протоки, сосуды, островки и т. д.). Затем были рассчитаны значения общего объема поджелудочной железы и островков Лангерганса на основе принципа Кавальери (8): 9{3}{\times}{\sum}\mathrm{P}(\mathrm{pan})\]

, где V(pan) — общий объем поджелудочной железы, a/p(pan) — площадь на точку (в данном случае Δ x × Δ y , поскольку для подсчета точек, поражающих поджелудочную железу, использовалась только одна точка сетки), N _sect (pp) — количество секций между первичными секциями (50 секций в в данном случае), T _sect — толщина среза (5 мкм), а ΣP(pan) — общее количество точек, попавших в поджелудочную железу.

\[\ mathrm {V} (\ mathrm {isl}) {=} \ mathrm {a}/\ mathrm {p} (\ mathrm {isl}) {\ times} \ mathrm {N} _ {\ mathrm {секта}} (\ mathrm {p} {-} \ mathrm {p}) {\ times} \ mathrm {T} _ {\ mathrm {секта}} {\ times} {\ sum} \ mathrm {P} ( \mathrm{isl}){=}1,59{3}{\times}{\sum}\mathrm{P}(\mathrm{isl})\]

где V(isl) — общий объем островков, a/p(isl) — площадь на точку (в данном случае Δ x × Δ y /99, потому что в сетке использовалось 99 точек для подсчета точек, попадающих в островки), а ΣP(isl) — общее количество точек, попадающих в островки.

Средневзвешенный объем островков.

Для каждой точки, которая попала в островок, мы также измерили расстояние в горизонтальном направлении между точками пересечения горизонтальной линии, проходящей через точку и островок. Подробное теоретическое и практическое описание взвешенного по объему среднего объема островков как стереологического параметра было опубликовано ранее (7). Вкратце, средний объем островков, взвешенный по объему, представляет собой средний объем, если островки взвешены пропорционально их объему. Если все островки не имеют одинаковых объемов, тогда средневзвешенный по объему объем островков выше, чем средневзвешенный объем островков («обычный» средний объем островков). Затем средний объем островков, взвешенный по объему, можно рассчитать в соответствии с: 9{3}}\]

, где v _v — взвешенный по объему средний объем островка, а l ₀ — длина линии между двумя пересечениями островка и горизонтальной линией, проходящей через точку, пересекающую островок.

Общее количество островков.

В другом сеансе выборка в первичных секциях была выполнена, как описано выше и изображено на рис. 2, но теперь к таблице была прикреплена несмещенная рамка подсчета (внизу слева на рис. 2). Правила счетной рамки определяют объекты полностью вне рамки или объекты, которые касаются линий исключения (сплошные линии на рисунке), как находящиеся вне рамки, тогда как объекты, которые полностью находятся внутри рамки или касаются только линий включения (штриховые линии). линии на рисунке) определяются как находящиеся внутри рамки. Мы применили дисекторный принцип (9) для подсчета островков, как показано на рис. 3. Всякий раз, когда профиль островков отбирался счетной рамкой, соответствующее положение в эталонном срезе определялось с помощью другого микроскопа, и мы определяли, был ли островок также виден в эталонном срезе. . Островок считали, если он появлялся в основном отделе, но не в контрольном отделе (островок С на рис. 3). Поскольку выборка секций, а также внутрисекционная выборка выполнялись с известными фракциями выборки, общее количество островков может быть рассчитано по принципу фракционирования (10) из: 9{{-}}(\mathrm{isl})\]

где N(isl) — общее количество островков в поджелудочной железе, N _sect (p-p) — количество секций между первичными секциями, N _sect (p-r) — количество отрезков между основным отрезком и соответствующим эталонным отрезком (в данном случае два), Δ x и Δ y — длины шагов, A(frame) — площадь счетного кадр с поправкой на увеличение (450 736 мкм ² ), а ΣQ ^— (исл) — общее количество островков, подсчитанных в одной поджелудочной железе. 9{{-}}(\mathrm{isl})}\]

, где v _N (isl) — средний объем островка (индекс N должен подчеркнуть, что это «обычный» или средневзвешенный объем ), а остальные сокращения описаны в пунктах выше.

Изменение распределения островков по объему.

Зная как средневзвешенный объем островков, так и средний объем островков, взвешенный по объему, можно рассчитать коэффициент вариации (стандартное отклонение, деленное на среднее) объемного распределения островков поджелудочной железы без предположений о типе распределение (7) по:

\[\mathrm{CV}_{\mathrm{N}}(\mathrm{isl}){=}\sqrt{\frac{\mathrm{v}_{\mathrm{V}}(\mathrm{ isl})}{\mathrm{v}_{N}(\mathrm{isl})}{-}1}\]

, где CV _N (isl) — коэффициент вариации распределения объемов островков .

Количество профилей островков на площадь поджелудочной железы и средняя площадь островков.

При исследовании срезов с помощью счетной рамки, прикрепленной к столу, мы также подсчитывали количество профилей островков, отобранных в счетных рамках (островки B, C и D на рис. {2}{\times}\ \\frac{{\sum}\mathrm{P}(\mathrm{isl} )}{{\sum}\mathrm{N}_{\mathrm{prf}}(\mathrm{isl})}\]

, где _prf (isl) — средняя площадь профиля островка, а остальные коэффициенты определены в предыдущих параграфах.

В некоторых предыдущих исследованиях количество профилей островков на площадь поджелудочной железы рассматривалось как показатель общего числа островков, и параллельно средняя площадь профиля островков рассматривалась как показатель среднего объема островков. . Как показано ниже, ни один из этих подходов не может быть подтвержден теоретически. В предыдущей публикации (7) мы показали, что количество профилей островков на площадь поджелудочной железы и среднюю площадь островков можно, используя формулу, первоначально данную Аберкромби (11), выразить как:

\[\ mathrm {N} _ {\ mathrm {prf, A}} (\ mathrm {isl, pan}) {=} \ \ frac {\ mathrm {N} (\ mathrm {isl}) {\ times } (\ mathrm {h} {+} \ mathrm {T} _ {\ mathrm {секта}})} {\ mathrm {v} (\ mathrm {pan})} \]

\[\ mathrm {a} _ {\ mathrm {prf}} (\ mathrm {isl}) {=} \ \ frac {\ mathrm {v} _ {\ mathrm {N}} (\ mathrm {isl})} {(\ mathrm {h} {+}\mathrm{T}_{\mathrm{sect}}}}\]

, где N _prf,A (isl,pan) — количество профилей островков на площадь поджелудочной железы, N(isl) — общее количество островков в поджелудочной железе, h — средняя протяженность островков, измеренная перпендикулярно направлению разреза (средняя высота островков), T _sect — толщина среза, V(pan) — общий объем поджелудочной железы, a _prf (isl) — средняя площадь профиля островка, а v _N (isl) — средний объем островка.

Уравнение 9 показывает, что количество профилей на площадь поджелудочной железы в одном или нескольких срезах не является надежным отражением изменений общего числа островков, поскольку оно, помимо общего числа островков, также зависит от объема поджелудочной железы, средняя высота островков и толщина среза. Как видно из уравнения 10, средняя площадь профиля островков прямо пропорциональна среднему объему островков, но обратно пропорциональна сумме средней высоты островков и толщины среза. Это дисквалифицирует этот параметр как надежный отражатель абсолютного значения или изменений среднего объема островков. Тем не менее, чтобы можно было сравнить выводы, сделанные с использованием теоретически подтвержденного набора стереологических методов, описанных выше, и выводы, которые были бы сделаны, если бы выводы были основаны на измерении количества профилей на площадь поджелудочной железы и средней площади островков. , мы также измерили последние два параметра в этом исследовании.

Последствие игнорирования отдельных эндокринных клеток.

Сколько эндокринных клеток поджелудочной железы должно быть сгруппировано вместе, прежде чем термин «островок Лангерганса» будет уместным, еще не определено и не имеет значения с клинической точки зрения. В этом исследовании мы использовали окрашивание H&E для идентификации островков и определили профиль островков как скопление эндокринных клеток по крайней мере с тремя видимыми ядрами. Чтобы получить представление о доле β-клеток, проигнорированной из-за выбора метода окрашивания, мы использовали набор окрашенных на инсулин срезов из четырех ob/ob и четыре мыши ob ​​/+. Используя сетку подсчета точек с 99 точками и выборку, как описано выше, мы подсчитали количество точек, которые поражают β-клетки внутри островков в соответствии с определением, используемым для срезов, окрашенных гематоксилин-эозином, и мы подсчитывали количество точек, которые поражают β-клетки. -клетки, не входящие в кластеры, определяемые как островки. Для мышей ob/ob средняя доля точек, поражающих β-клетки вне островков, составила 1,3%, тогда как соответствующее значение для 9 мышей0120 ob ​​ /+ мышей составляла 1,7%, что свидетельствует о том, что β-клетки, не учитываемые в измеренных параметрах в этом исследовании, представляют собой очень небольшую долю от общего объема островков.

Статистика.

Данные на рисунках представлены как среднее значение ± стандартная ошибка. Результаты мышей ob/ob и мышей ob /+ сравнивали с помощью теста Стьюдента t . Все значения P являются двусторонними, и уровень значимости был установлен на P <0,05.

Как и ожидалось, средняя масса тела и средний уровень глюкозы в крови были значительно выше у мышей ob/ob по сравнению с мышами ob/ob /+ (рис. 4А и В), тогда как общий объем поджелудочной железы (рис. 4С) был равен в двух группах. Общий объем островков (рис. 4D) был в 3,67 раза выше у мышей ob/ob (2,09 ± 0,19 мм ³ у мышей ob/ob против 0,57 ± 0,03 мм ³ у мышей ob ​​ /+). мыши, P < 10 ^-5 ). Как видно из рис. 4Е, общее количество островков было поразительно одинаковым в двух группах (3,193 ± 160 у мышей ob/ob и 3184 ± 142 у мышей ob/ob /+, P = 0,97), а 95% ДИ варьировал от +468 до -450 островков у мышей ob/ob по сравнению с мышами ob ​​ /+. Обычный средний объем островков (рис. 4F) составил 6,57 ± 0,52 × 10 ⁵ мкм ³ у ob/ob мышей против 1,81 ± 0,12 × 10 ⁵ мкм ^{/ 3 у мышей ob мыши ( P < 10 -6 ). Так, выраженное увеличение общего объема островков в ob/ob мышей была вызвана исключительно гипертрофией островков без участия чистого образования новых островков.}

Средневзвешенный объем островков (рис. 4G) составлял 2,00 ± 0,25 × 10 ⁷ мкм ³ у мышей ob/ob против 0,52 ± 0,05 × 10 дюймов ⁷ 5 ^{7 мкм 5 ob /+ мышей ( P < 10 -4 ). Другими словами, взвешенный по объему средний объем островков и средневзвешенный по количеству объем островков были увеличены в ob/ob мышей примерно на тот же коэффициент (3,88 для объемно-взвешенного среднего объема островков и 3,63 для среднечисленного средневзвешенного объема островков). Как следствие (уравнение 6), коэффициент вариации в распределении объемов островков (рис. 4H) был сходным в двух группах (5,39 ± 0,29 у мышей ob/ob против 5,27 ± 0,29 у мышей ob ). /+ мыши, P = 0,76). Это показывает, что не только количество островков не изменилось у мышей ob/ob , но и форма распределения объемов островков, по-видимому, идентична в двух группах. Таким образом, стереологическое исследование показало, что увеличенный общий объем островков, обнаруженный в 9Мыши 0120 ob/ob были результатом гипертрофии островков без заметного вклада гиперплазии островков, и гипертрофию островков можно было бы объяснить, как если бы теоретически все островки увеличивали свой объем на один и тот же фактор.}

Число островков на площадь поджелудочной железы (рис. 5А) составило 1,52 ± 0,10 мм ^-1 у мышей ob/ob и 0,82 ± 0,04 мм ^-1 у мышей ob /+ ( P < 10 ^-4 ), тогда как средняя площадь островков (рис. 5В) составила 1,18 ± 0,07 × 10 ⁴ мкм ² у мышей ob/ob против 0,64 ± 0,04 × 10 ⁴ мкм ² у мышей ob /+ ( 605 5 6 < P 0 ). Если бы количество островков на площадь поджелудочной железы и средняя площадь островков интерпретировались как надежные параметры общего числа островков и среднего объема островков соответственно, то (ошибочный) вывод состоял бы в том, что гиперплазия и гипертрофия островков вносят примерно равный вклад. к увеличению общего объема островков, потому что количество островков на площадь поджелудочной железы и средняя площадь островков увеличились примерно в один и тот же раз (1,85 для числа островков на площадь поджелудочной железы и 1,84 для средней площади островков) в 9Мыши 0120 ob/ob по сравнению с мышами ob/ob /+.

На основе стереологических методов, таких как фракционная выборка и подсчет диссекторов (методы, основанные на принципах современной стереологии, основанной на проверенных математических и статистических принципах), мы обнаружили заметное увеличение общего объема островков в ob/ob мышей по сравнению с ob ​​/+ мышами, увеличение, которое было полностью вызвано гипертрофией островков, тогда как общее количество островков было одинаковым в двух группах с достаточно узким доверительным интервалом для различия средних значений.

При определении островка как группы эндокринных клеток, содержащих по крайней мере три видимых ядра, мы обнаружили, что окрашивание H&E предпочтительнее, поскольку 1 ) оно позволяет однозначно идентифицировать островки; 2 ) легко воспроизводим, дает одинаковую интенсивность окрашивания на всех срезах; и 3 ) внешний вид островковых клеток при окрашивании гематоксилин-эозином одинаков у животных с диабетом и без него. Альтернативой может быть использование иммунохимически окрашенных срезов, то есть использование коктейля первичных антител, направленных против островковых гормонов. По сравнению с окрашиванием гематоксилин-эозином это теоретически позволяет установить определение островка только на одной или нескольких эндокринных клетках. С другой стороны, недостатком иммунохимического окрашивания является то, что β-клетки, наиболее часто встречающийся тип клеток в островках, постепенно дегранулируются по мере прогрессирования диабетического состояния, что делает этот подход чувствительным к, по крайней мере, теоретической возможности того, что единичные или небольшие кластеры β-клеток могут не попасть в пробу в поджелудочной железе из ob/ob мышей. Таким образом, хотя как иммунохимическое, так и физико-химическое окрашивание имеют свои преимущества и недостатки, мы посчитали последнее наиболее надежным для методов, применяемых при сравнении лиц с диабетом и без него.

В этом исследовании мы обнаружили очень значительное увеличение числа профилей островков на площадь поджелудочной железы у мышей ob/ob . Этот результат, однако, не противоречит обнаружению неизменного общего числа островков, и это действительно то, чего следует ожидать, поскольку средняя высота островков (h в уравнении 9) увеличивается с увеличением среднего объема островков. Конфликт возникает только в том случае, если увеличенное количество профилей островков на площадь поджелудочной железы приводит к выводу, что общее число островков увеличено, что, как описано, было бы необоснованным заключением. Мы обнаружили, что средняя площадь островков у мышей ob/ob увеличилась в 1,8 раза, тогда как средний объем островков увеличился в 3,6 раза. Таким образом, если бы вывод об увеличении среднего объема островков был основан на измерении средней площади профиля островков, этот вывод был бы правильным в том смысле, что средний объем островков действительно увеличился, хотя впечатление о величине увеличения было бы неправильный.

В литературе указано, что у мышей ob/ob увеличивается как количество, так и размер островков (3,4), со ссылками на более ранние публикации таких авторов, как Bleisch et al. (12), Хеллман и др. (5), а Гептс и соавт. (6). Блейш и др. (12) использовали количество островков на площадь поджелудочной железы и среднюю площадь островков, чтобы сделать вывод, что островки у мышей линии ob/ob были более многочисленными и большими по сравнению с нормальными швейцарскими мышами. Критическое обсуждение этих методов дано выше. Хеллман и др. (5) и Гептс и соавт. (6) оба использовали метод, описанный Wicksell (13,14), который основан на предположении о сферической или эллипсоидальной трехмерной форме островков. В то время, когда проводились эти исследования, этот метод был современным, но теперь он был вытеснен последними достижениями в области стереологии. Хеллман и др. (5) был сосредоточен в первую очередь на распределении островков по размерам (что имеет смысл, поскольку именно в этом заключается сила метода, основанного на Викселле), а общее количество островков не рассчитывалось. Однако из данных, приведенных в статье, ясно, что расчет общего количества островков привел бы к увеличению числа островков в ob/ob мышей. В принципе, Гептс и соавт. (6) использовали тот же метод и, что интересно, обнаружили неизменное общее количество островков у мышей ob/ob по сравнению с однопометниками без ожирения. Однако, не имея возможности объяснить эти явно расходящиеся результаты, следует упомянуть, что основанный на Викселле метод является гораздо более сильным инструментом для описания распределения объектов по размерам, а не для оценки их общего количества.

Ранее мы сообщали о линейной корреляции между взвешенным по объему средним объемом островков и общим объемом островков у крыс (7), наблюдение, которое предполагает, что увеличение общего объема островков во время физиологического роста у крыс старше 30 дней связано с к гипертрофии островков без участия гиперплазии островков, что мы и обнаружили в этом исследовании, используя прямое стереологическое измерение общего числа островков в ob/ob мышей. С другой стороны, ясно, что новые островки развиваются при определенных экспериментальных условиях, например, после частичной панкреатэктомии, где образование новых островков было четко продемонстрировано (15). Однако увеличение массы островков в интактной поджелудочной железе из-за повышенных метаболических потребностей и регенерация поджелудочной железы после частичной панкреатэктомии не могут быть напрямую сопоставимы. Формирование новой ткани поджелудочной железы после резекции поджелудочной железы, по-видимому, повторяет эмбриональное развитие (15) и может включать экспрессию ряда факторов роста, отсутствующих в интактной поджелудочной железе.

Очевидный вопрос, почему новые островки не образуются даже при предположительно максимальном росте общего объема островков, как это происходит у мышей ob/ob . Другие анатомические структуры, такие как почечные клубочки, также лишены способности к гиперплазии и вместо этого становятся гипертрофированными с повышенным спросом, вероятно, из-за очень специфической структуры нервно-сосудистой и канальцевой систем, необходимой для соответствующей функции. Возможно, архитектура (т. е. внутриостровковая сосудистая структура) островков настолько сложна, что позволяет формировать новые островки только во время формирования, роста или регенерации поджелудочной железы как таковой, как это происходит во время внутриутробного развития. или после частичной резекции поджелудочной железы. Однако мы не утверждаем, что новообразование островков как таковое не происходит у мышей, а скорее то, что количество новых островков, в конечном итоге образующихся, одинаково у 9 животных.мышей 0120 ob/ob и мышей ob ​​ /+, несмотря на выраженную разницу в общем объеме островков.

Увеличение общего объема клеточной популяции может быть связано либо с увеличением числа клеток, либо с увеличением среднего клеточного объема, либо с их комбинацией. Однако, учитывая степень общего увеличения массы островков у мышей ob/ob как в предыдущих исследованиях, так и в настоящем исследовании, становится ясно, что подавляющее большинство увеличения массы островков является результатом гиперплазии островковых клеток. Если увеличение общего объема островков полностью вызвано ростом существующих островков, каковы первичные источники новых клеток (в первую очередь β-клеток)? Очевидный ответ — из клеток, уже находящихся внутри островков. Это может быть достигнуто за счет митоза внутри островковых β-клеток, событие, которое определенно происходит на основании наличия митотических фигур во внутриостровковых β-клетках (6,16) и обнаружения включения бромодезоксиуридина (BrdU) в β-клетки. также в нормальных условиях (17), или новые клетки могут быть получены из внутриостровковых стволовых клеток/клеток-предшественников, хотя существование таких клеток все еще обсуждается. Кроме того, важность митоза β-клеток подтверждается наблюдением, что 9Мыши 0120 ob/ob имеют повышенное соотношение BrdU-позитивных ядер β-клеток во время увеличения массы β-клеток (18). Клетки протоков также привлекли большое внимание, поскольку клетки способны дифференцироваться в β-клетки (19–21), и в протоках в условиях с увеличением массы β-клеток (22,23). Однако на основании результатов этого исследования можно утверждать, что эти клетки не имеют первостепенного значения для роста островковой массы в ob/ob мышей, и в отличие от скорости образования клеток протоков, положительных по PDX-1 и инсулину, скорость гибели этих клеток широко не изучалась. Тем не менее, возможность, которую не следует игнорировать, заключается в том, что β-клетки, образующиеся в протоках, могут мигрировать в существующие островки, поскольку большинство островков непосредственно прикрепляются к дереву протоков (24).

Таким образом, увеличение общей массы островков у мышей линии ob/ob полностью вызвано гипертрофией островков без образования дополнительных островков по сравнению с об /+ мыши. Это говорит о том, что делящиеся внутриостровковые β-клетки и, возможно, внутриостровковые прогениторные/стволовые клетки являются первичными источниками новых β-клеток во время адаптации к повышенным метаболическим потребностям. Это также предполагает, что островки Лангерганса с анатомической точки зрения представляют собой еще более уникальные структуры, чем считалось ранее, и что неогенез новых островков возможен только в таких условиях, как во время развития/роста поджелудочной железы или после частичной панкреатэктомии.

РИС. 1.

Посмотреть в большом размереСкачать слайд

На рисунке показан забор гистологических срезов. Поджелудочная железа была тщательно рассечена, и в стереологических исследованиях использовались как срезы, отмеченные как первичные, так и эталонные срезы.

РИС. 1.

Посмотреть в большом размереСкачать слайд

На рисунке показан забор гистологических срезов. Поджелудочная железа была тщательно рассечена, и в стереологических исследованиях использовались как срезы, отмеченные как первичные, так и эталонные срезы.

Режим закрытия

РИС. 2.

Просмотреть в большом размереЗагрузить слайд

Каждая отобранная первичная секция была систематически исследована, как показано в верхней части рисунка. Это было выполнено в два сеанса, во время которых либо рамка для подсчета (внизу слева на рисунке) была прикреплена к столу для подсчета островков, как описано в тексте, либо сетка для подсчета точек (внизу справа на рисунке) была прикреплена к столу. таблицу для подсчета общего объема островков, общего объема поджелудочной железы и средневзвешенного по объему объема островков, как описано в тексте.

РИС. 2.

Просмотреть в большом размереЗагрузить слайд

Каждая отобранная первичная секция была систематически исследована, как показано в верхней части рисунка. Это было выполнено в два сеанса, во время которых либо рамка для подсчета (внизу слева на рисунке) была прикреплена к столу для подсчета островков, как описано в тексте, либо сетка для подсчета точек (внизу справа на рисунке) была прикреплена к столу. таблицу для подсчета общего объема островков, общего объема поджелудочной железы и средневзвешенного по объему объема островков, как описано в тексте.

Режим закрытия

РИС. 3.

Посмотреть в большом размереСкачать слайд

Пример подсчета дисекторов. В первичном разделе островки, обозначенные B, C и D, определяются как находящиеся внутри рамки счета, поскольку они не касаются (полных) линий исключения и либо полностью находятся в пределах рамки, либо касаются (пунктирных) линий включения. Островки, обозначенные A, E и F, определяются как находящиеся вне рамки, поскольку они либо полностью находятся вне рамки, либо касаются линий исключения. В справочном разделе, показанном внизу рисунка, островки B и D все еще присутствуют, и поэтому они не учитываются, тогда как островок C отсутствует, и, следовательно, он учитывается (см. текст для более подробной информации).

РИС. 3.

Посмотреть в большом размереСкачать слайд

Пример подсчета дисекторов. В первичном разделе островки, обозначенные B, C и D, определяются как находящиеся внутри рамки счета, поскольку они не касаются (полных) линий исключения и либо полностью находятся в пределах рамки, либо касаются (пунктирных) линий включения. Островки, обозначенные A, E и F, определяются как находящиеся вне рамки, поскольку они либо полностью находятся вне рамки, либо касаются линий исключения. В справочном разделе, показанном внизу рисунка, островки B и D все еще присутствуют, и поэтому они не учитываются, тогда как островок C отсутствует, и, следовательно, он учитывается (см. текст для более подробной информации).

Режим закрытия

РИС. 4.

Посмотреть в большом размереСкачать слайд

Результаты стереологического исследования поджелудочной железы. Данные представлены в виде групповых средних с планками погрешностей, представляющими SE. A : Масса тела. B : Глюкоза крови натощак. C : Общий объем поджелудочной железы. D : Общий объем островков. E : Общее количество островков. F : Средний объем островков. G : Средний объем островков, взвешенный по объему. H : CV _N (исл.). * Статистически значимое различие между группой ob/ob и группой ob ​​ /+. Фактические значения P приведены в тексте.

РИС. 4.

Посмотреть в большом размереСкачать слайд

Результаты стереологического исследования поджелудочной железы. Данные представлены в виде групповых средних с планками погрешностей, представляющими SE. A : Масса тела. B : Глюкоза крови натощак. С : Общий объем поджелудочной железы. D : Общий объем островков. E : Общее количество островков. F : Средний объем островков. G : Средний объем островков, взвешенный по объему. H : CV _N (исл.). * Статистически значимое различие между группой ob/ob и группой ob ​​ /+. Фактические значения P приведены в тексте.

Закрыть модально

РИС. 5.

Посмотреть в большом размереСкачать слайд

Данные о количестве островков на площадь поджелудочной железы и средней площади островков в срезах. Данные представлены в виде групповых средних с планками погрешностей, представляющими SE. A : Количество островков на область. B : Средняя площадь островка. * Статистически значимое различие между группой ob/ob и группой ob ​​ /+. Фактические значения P приведены в тексте.

РИС. 5.

Просмотреть в большом размереСкачать слайд

Данные о количестве островков на площадь поджелудочной железы и средней площади островков в срезах. Данные представлены в виде групповых средних с планками погрешностей, представляющими SE. A : Количество островков на область. B : Средняя площадь островка. * Статистически значимое различие между группой ob/ob и группой ob ​​ /+. Фактические значения P приведены в тексте.

Close modal

Эта работа была поддержана Датским исследовательским советом, Исследовательским комитетом H:S, Датской диабетической ассоциацией и Фондом Ново Нордиск.

1

Coleman DL: синдромы диабета и ожирения у мышей.

Diabetes

31 (Suppl. 1)

:

1

–6,

1982

2

Halaas JL, Gajiwala KS, Maffei M, Cohen Sl, Show Bti -Bti -Sl, Cowin Bti -Sl, Cowin Bti -Sl, Cowin Bti -Sl, Cowin Bti -Sl, Cowin Btist, S. Лаллоне Р.Л., Берли С.К., Фридман Дж.М. Эффекты снижения веса белков плазмы, кодируемых геном ожирения.

Science

269

:

543

–546,

1995

3

Edvell A, LINDSTROM P: ПРОИЗВОДИТЕЛЬНОСТЬ В МОЛОДОЙ АБСИ -Гиперокемическом Гипер. Гиперогемическом стиле: Эффект.

AM J Physiol

274

:

E1034

-E1039,

1998

4

Edvell A, Lindstrom P: Разработка инсуаловальной функции in in Younge -in -incese. обь ).

Metabolism

44

:

906

–913,

1995

5

Hellman B, Brolin S, Hellerström C, Hellman K: The distribution pattern of the pancreatic islet volume in normal and мыши с гипергликемией.

Acta Endocrin

36

:

609

–616,

1961

6

Gepts W, Christophe J, Mayer J: PancReate Islets in Mice-HeLeg-HeLeGROME-HELEROME-HEGEROME. Эффект карбутамида.

Диабет

:

63

–69,

1960

7

Skau M, Pakkenberg B, Buschard K, Bock T: Linear Corpretation Mass Mass Mass-Mass-Mass-Mass-Arslet Mass-Arm-Islatation. средневзвешенный объем островков.

Диабет

50

:

1763

–1770,

2001

8

Gundersen HJ, Jensen EB: Эффективность систематической SAMPLING в стереологии.

J Microsc

147

:

229

–263,

1987

9

Sterio DC: невыразимая оценка числа и определения арбитральных. Использование DC.

J Microsc

134

:

127

–136,

1984

10

Gundersen HJ: Stereology of arbitrary particles: a review of unbiased number and size estimators and the presentation of some new те, в память об Уильяме Р. Томпсоне.

J Microsc

143

:

3

–45,

1986

11

Abercrombie M: Оценка популяции ядра из микротомических срезов.

ANAT REC

94

:

239

–247,

1946

12

Bleisch VR, Mayer J, Dickie Mmm: Familial MILTEN MICE IN MICE IN MICE IN MICE IN MICE IN MICE IN MICE, Issine IN MICE, Issin гиперплазия островков Лангерганса.

AM J PTATHOL

28

:

369

–385,

1952

13

Wicksell SD.

Biometrica

17

:

84

–99,

1925

14

Wicksell SD: The Corpuscle Проблема: Второй Memoir: Case of Ellipsidal.

Biometrica

18

:

151

–172,

1926

15

Bonner-Weir S, Baxter LA, Schuppin GT, Smith FE: A second pathway for regeneration of adult exocrine and эндокринная поджелудочная железа: возможное повторение эмбрионального развития.

Диабет

42

:

1715

–1720,

1993

16

Bonner-Weir S, Deery D, Leahy Jl, Weir GC: Cecompatory Grost of Panchary of Panchatory of Panchatory of Panchary of BeTATARY of BeTARTATION GSTATO крыс после кратковременной инфузии глюкозы.

Diabetes

38

:

49

–53,

1989

17

Scaglia L, Cahill CJ, Finegood DT, Bonner-Weir S: Apoptosis participates in the remodeling of the endocrine pancreas у новорожденных крыс.

Эндокринология

138

:

1736

–1741,

1997

18

Edvell A, Lindstrom P: Повышенная минимая.

Эндокринология

140

:

778

–783,

1999

19

Bonner-Weir S, Sharma A: Pancreatic Stem Cltle.

Дж. Патол

197

:

519

–526,

2002

20

Поджелудочная железа Петерс Дж., Юргенсен А., Клоппель Г.: дифференцировка эндогенного роста,

Virchows Arch

436

:

527

–538,

2000

21

Rosenberg L: в in vivo -трансформации: недеогензис из Beta Cltracal.

Пересадка клеток

4

:

371

–383,

1995

22

Stoffers DA, Kieffer TJ, Hussain MA, Drucker DJ, Bonner-Weir So, Habener Jf, Eanotrop, Eanotrop, Hussain Jmop, Habener Jf, Hussain Jmop, Hussain Jmop, Hussain Jmop, Hussain Jmop, Hussain Jmop, Hussain Jmop, Hussain Jmop, Hussain MA, Drucer DJ, Bonner-Weir. подобные агонисты пептида 1 стимулируют экспрессию гомеодоменового белка IDX-1 и увеличивают размер островков в поджелудочной железе мышей.

Диабет

49

:

741

–748,

2000

03

23Sharma A, Zangen DH, Reitz P, Taneja M, Lissauer ME, Miller CP, Weir GC, Habener JF, Bonner-Weir S: Гомеодоменовый белок IDX-1 увеличивается после раннего всплеска пролиферации во время регенерации поджелудочной железы.